Este documento presenta varias pruebas bioquímicas para la identificación de bacterias. Incluye pruebas rápidas como catalasa, coagulasa y PYR, así como pruebas para cocos Gram positivos como DNasa, manitol salado y CAMP. También describe pruebas de sensibilidad a antibióticos y pruebas para enterobacterias incluyendo oxidasa, TSI, SIM y ureasa. Cada prueba se explica detallando su fundamento, procedimiento e interpretación.
Este documento describe un medio de cultivo selectivo y diferencial utilizado para el aislamiento de Salmonella spp. y Shigella spp. a partir de heces y alimentos. Contiene nutrientes, indicadores de fermentación de azúcares y sales biliares que inhiben la flora gram positiva permitiendo el crecimiento de estas bacterias. Al incubar las placas, Salmonella y Shigella crecen de distintos colores que permiten su identificación.
Este documento presenta información sobre la microbiología de la leche. Explica que la leche es el producto de secreción de la glándula mamaria de vacas bien alimentadas y sanas. Describe su composición incluyendo agua, lactosa, lípidos, proteínas, minerales y vitaminas. También identifica factores que influyen en su composición como la raza, época del año, etapa de lactancia y alimentación. Finalmente, detalla las principales fuentes de contaminación de la leche y los microorganismos patógenos y no pat
Este documento presenta información morfológica y de importancia sobre diversos hongos filamentosos. Describe las características coloniales y microscópicas de especies de Penicillium, Aspergillus, Fusarium, Trichoderma, Paecilomyces, Geotrichum, Scopulariopsis, Neurospora y Trichotecium. Algunas especies son agentes etiológicos de enfermedades en humanos y animales, mientras que otras son comunes en el suelo y vegetación en descomposición.
El documento describe los pasos para aislar microorganismos, incluyendo el uso de medios de cultivo selectivos, condiciones de incubación, e interpretación de resultados. Explica cómo separar físicamente las colonias y utilizar características metabólicas para aislar un solo tipo de microorganismo.
Este documento describe varias pruebas bioquímicas utilizadas para identificar bacterias, incluyendo la prueba TSI, LIA, citrato, ureasa, SIM, MR-VP, catalasa, coagulasa y oxidasa. Explica los principios de cada prueba y cómo interpretar los resultados para determinar las propiedades de las bacterias probadas, como su capacidad para fermentar diferentes azúcares, producir enzimas específicas y utilizar diferentes sustratos como fuente de energía.
Este documento describe diferentes tipos de medios de cultivo y sus usos para identificar microorganismos. Explica la clasificación de los medios de cultivo en sintéticos, complejos, de enriquecimiento, selectivos, diferenciales y de mantenimiento. Luego proporciona detalles sobre algunos medios comunes como el agar nutritivo, la base agar gelosa sangre, EMB agar y MacConkey agar, incluyendo sus fórmulas e instrucciones para prepararlos.
El documento describe la composición y uso del medio de cultivo TSI (Triple Azúcar Hierro Agar). El medio contiene glucosa, lactosa y sacarosa como fuentes de carbono fermentables, así como sales de hierro y tiosulfato de sodio que permiten detectar la producción de ácido sulfhídrico. El medio se usa para diferenciar bacterias según su capacidad de fermentar azúcares y producir ácido sulfhídrico y gas.
1) El documento describe las características y pruebas para identificar las bacterias Streptococcus y Enterococcus. 2) Incluye información sobre su taxonomía, localización en el cuerpo humano, medios de cultivo y pruebas bioquímicas como la bacitracina y la hidrólisis del hipurato. 3) También proporciona detalles sobre pruebas como CAMP y la tolerancia al telurito de potasio para diferenciar especies de Enterococcus.
Este documento describe un medio de cultivo selectivo y diferencial utilizado para el aislamiento de Salmonella spp. y Shigella spp. a partir de heces y alimentos. Contiene nutrientes, indicadores de fermentación de azúcares y sales biliares que inhiben la flora gram positiva permitiendo el crecimiento de estas bacterias. Al incubar las placas, Salmonella y Shigella crecen de distintos colores que permiten su identificación.
Este documento presenta información sobre la microbiología de la leche. Explica que la leche es el producto de secreción de la glándula mamaria de vacas bien alimentadas y sanas. Describe su composición incluyendo agua, lactosa, lípidos, proteínas, minerales y vitaminas. También identifica factores que influyen en su composición como la raza, época del año, etapa de lactancia y alimentación. Finalmente, detalla las principales fuentes de contaminación de la leche y los microorganismos patógenos y no pat
Este documento presenta información morfológica y de importancia sobre diversos hongos filamentosos. Describe las características coloniales y microscópicas de especies de Penicillium, Aspergillus, Fusarium, Trichoderma, Paecilomyces, Geotrichum, Scopulariopsis, Neurospora y Trichotecium. Algunas especies son agentes etiológicos de enfermedades en humanos y animales, mientras que otras son comunes en el suelo y vegetación en descomposición.
El documento describe los pasos para aislar microorganismos, incluyendo el uso de medios de cultivo selectivos, condiciones de incubación, e interpretación de resultados. Explica cómo separar físicamente las colonias y utilizar características metabólicas para aislar un solo tipo de microorganismo.
Este documento describe varias pruebas bioquímicas utilizadas para identificar bacterias, incluyendo la prueba TSI, LIA, citrato, ureasa, SIM, MR-VP, catalasa, coagulasa y oxidasa. Explica los principios de cada prueba y cómo interpretar los resultados para determinar las propiedades de las bacterias probadas, como su capacidad para fermentar diferentes azúcares, producir enzimas específicas y utilizar diferentes sustratos como fuente de energía.
Este documento describe diferentes tipos de medios de cultivo y sus usos para identificar microorganismos. Explica la clasificación de los medios de cultivo en sintéticos, complejos, de enriquecimiento, selectivos, diferenciales y de mantenimiento. Luego proporciona detalles sobre algunos medios comunes como el agar nutritivo, la base agar gelosa sangre, EMB agar y MacConkey agar, incluyendo sus fórmulas e instrucciones para prepararlos.
El documento describe la composición y uso del medio de cultivo TSI (Triple Azúcar Hierro Agar). El medio contiene glucosa, lactosa y sacarosa como fuentes de carbono fermentables, así como sales de hierro y tiosulfato de sodio que permiten detectar la producción de ácido sulfhídrico. El medio se usa para diferenciar bacterias según su capacidad de fermentar azúcares y producir ácido sulfhídrico y gas.
1) El documento describe las características y pruebas para identificar las bacterias Streptococcus y Enterococcus. 2) Incluye información sobre su taxonomía, localización en el cuerpo humano, medios de cultivo y pruebas bioquímicas como la bacitracina y la hidrólisis del hipurato. 3) También proporciona detalles sobre pruebas como CAMP y la tolerancia al telurito de potasio para diferenciar especies de Enterococcus.
Pseudomonas aeruginosa es una bacteria Gram-negativa que puede causar infecciones oportunistas, especialmente en personas inmunocomprometidas. Es un bacilo recto o ligeramente curvado, aerobio estricto, que se reproduce mediante la ruta de Entner-Doudoroff y el ciclo del ácido tricarboxílico. P. aeruginosa causa infecciones pulmonares, de heridas y del tracto urinario, y es difícil de tratar debido a su resistencia frecuente a los antibióticos.
Este documento describe dos especies de la bacteria Proteus, P. vulgaris y P. mirabilis. Ambas son gramnegativas, anaerobias facultativas que habitan el tracto intestinal humano y animal. P. vulgaris causa infecciones urinarias y P. mirabilis causa infecciones urinarias al producir grandes cantidades de ureasa que hidroliza la urea a amoníaco elevando la alcalinidad de la orina y favoreciendo la formación de cristales. Ambas especies suelen ser sensibles a antibióticos como cipro
Digestion de macromoleculas en el laboratorio de microbiologia generalIPN
Este documento describe varios ensayos de degradación de macromoléculas por enzimas microbianas extracelulares. Explica los componentes y procedimientos de pruebas como la hidrólisis de gelatina, almidón y leche descremada, así como la clasificación y funciones de las enzimas involucradas como proteasas, amilasas y lipasas. También presenta resultados de pruebas realizadas con diferentes microorganismos y discute la interpretación de los resultados obtenidos en cada medio de cultivo.
Este documento presenta varias pruebas bioquímicas para la identificación de bacterias. Incluye pruebas rápidas como catalasa, coagulasa y PYR, así como pruebas para cocos Gram positivos como DNasa, manitol salado, biles esculina y CAMP. También describe pruebas de sensibilidad a antibióticos como optoquina, novobiocina y bacitracina. Por último, detalla pruebas para enterobacterias como oxidasa, TSI, SIM, Voges-Proskauer y ONPG.
Preparacion de medios de cultivo para bioquímicasThelma Correa
Este documento describe los procedimientos para identificar grupos bacterianos y realizar pruebas bioquímicas. Explica los principales grupos bacterianos como clamidias, rickettsias, micoplasmas, espiroquetas y bacterias clásicas. También detalla medios de cultivo como agar citrato de Simmons, agar de hierro de Kligler y medio MIO, y cómo realizar pruebas en estos medios para identificar bacterias mediante características como fermentación, producción de gas e indol.
utilizacion de carbohidratos y acidos organicos IPN
Este documento describe una práctica de laboratorio para identificar bacterias mediante la observación de su metabolismo de carbohidratos y ácidos orgánicos como el citrato y el malonato. Se realizaron pruebas en agar citrato de Simmons y caldo malonato para determinar si diferentes bacterias podían metabolizar estas sustancias. Los resultados obtenidos en el laboratorio coincidieron con lo esperado teóricamente para cada bacteria.
Este documento describe los diferentes métodos de esterilización y desinfección utilizados en microbiología, incluyendo la esterilización, la desinfección, la asepsia y el uso de antimicrobianos. También describe los componentes básicos de los medios de cultivo, como nutrientes, factores de crecimiento y suplementos necesarios para el cultivo de microorganismos en el laboratorio. Finalmente, explica los diferentes tipos de medios de cultivo según su consistencia, como líquidos, semisólidos y sólidos.
Mmi pruebas bioquímicas básicas utilizadas en el laboratorio de microbiología...yudyaranguren
El documento describe las pruebas bioquímicas básicas utilizadas en el laboratorio de microbiología para el diagnóstico microbiológico, incluyendo pruebas como la catalasa, la reducción de nitratos a nitritos, la coagulasa, la sensibilidad a antibióticos, la fermentación de carbohidratos, la oxidasa, la movilidad, el indol y el citrato para identificar bacterias Gram positivas y Gram negativas. También describe pruebas para caracterizar especies de los géneros Staphylococcus, Strept
Este documento presenta información sobre dos pruebas de laboratorio (TSI y LIA) utilizadas para identificar dos bacterias importantes: E. coli y Salmonella typhi. En la prueba TSI, E. coli da resultados de K/A, H2S-, CO2+ mientras que Salmonella typhi da A/A, H2S-, CO2+. Ambas bacterias dan resultados positivos en la prueba LIA. El documento también proporciona detalles sobre las características y patogenicidad de estas dos bacterias.
El documento presenta información sobre diferentes pruebas bioquímicas utilizadas para caracterizar bacterias. Describe pruebas para analizar el metabolismo de carbohidratos, proteínas, lípidos y otras moléculas, incluyendo pruebas como TSI, VP, RM, citrato, ureasa y reducción de nitratos. Explica los principios de cada prueba y cómo interpretar sus resultados.
El test de CAMP se utiliza para identificar la producción del factor CAMP por estreptococos del grupo B. El factor CAMP interactúa con la ß-hemolisina producida por Staphylococcus aureus causando una hemólisis en forma de flecha que indica la presencia del factor. El procedimiento implica sembrar cepas de S. aureus y estreptococos de forma perpendicular en una placa con sangre ovina e incubar para observar la hemólisis en forma de flecha.
Este documento proporciona información sobre las pruebas bioquímicas utilizadas para la identificación bacteriana. Explica conceptos clave como la morfología, estructura, nutrición y reproducción bacteriana. Luego describe diferentes tipos de medios de cultivo y técnicas de inoculación. Finalmente, detalla las bases, procedimientos, interpretación y aplicaciones de pruebas bioquímicas individuales como la fermentación de carbohidratos, prueba de citrato, licuefacción de gelatina y otras. El documento es una gu
utilizacion de carbohidratos y ácidos orgánicosIPN
Este documento presenta información sobre las rutas metabólicas de los carbohidratos y pruebas bioquímicas para su identificación. Explica procesos como la glicólisis, fermentación y ciclo de Krebs, e incluye detalles sobre pruebas de Durham, Kligler, Rojo de Metilo y Voges-Proskauer para determinar la fermentación de azúcares. También cubre pruebas de Simmons y caldo malonato para evaluar el uso de ácidos orgánicos. El objetivo es proporcionar fundament
Este documento describe varias pruebas bioquímicas utilizadas para identificar bacterias, incluyendo las pruebas IMVIC (indol, rojo de metilo, Voges-Proskauer y citrato), la prueba de TSI, y la prueba de ureasa. Explica los fundamentos bioquímicos, protocolos e interpretación de los resultados de cada prueba.
El documento proporciona información sobre Clostridium botulinum, la bacteria que produce la toxina botulínica. Describe las características de C. botulinum, incluyendo su morfología, hábitat y mecanismo de transmisión. También explica los procedimientos para el aislamiento e identificación de la bacteria a través de pruebas bioquímicas y la detección de toxinas mediante la inoculación en ratones.
El documento presenta los resultados del Reporte de Práctica #4 sobre pruebas bioquímicas y medios de cultivo realizado por un equipo de estudiantes de microbiología. Describe diversas pruebas bioquímicas como Indol, Rojo de Metilo, Voges Proskauer y Citrato para identificar características metabólicas de microorganismos. También explica el uso de medios de cultivo como TSI, SIM y LIA para estudiar la capacidad de fermentación, producción de ácido sulfhídrico e hidrólisis de
Aislamiento e identiicacion de bacillus cereus.Froylan Avila
En la práctica se intentó determinar la presencia de Bacillus cereus en una muestra de harina de arroz mediante técnicas de aislamiento e identificación. Sin embargo, las pruebas bioquímicas no mostraron crecimiento, por lo que no fue posible identificar Bacillus cereus u otros microorganismos en la muestra.
Este documento describe varias enterobacterias como E. coli, Shigella, Salmonella y Klebsiella. Detalla las características y pruebas bioquímicas de identificación de E. coli, incluyendo sus diferentes cepas patógenas como EPEC, ETEC, EAEC, ECAD y EHEC. También cubre brevemente a E. albertii, una especie recién descrita aislada en heces diarreicas.
AISLAMIENTO Y RECUENTO DE BACTERIAS ANAEROBIAS IPN
Este documento describe técnicas para el aislamiento y cultivo de bacterias anaerobias, incluyendo el uso de medios de cultivo especiales como el agar tioglicolato y sistemas como el Gas Pak que generan condiciones anaerobias. También compara el crecimiento de tres bacterias (Clostridium sp, Escherichia coli y Bacillus subtilis) en medios con diferentes potenciales redox y estima la población de Clostridium sp. en muestras fecales mediante el método del número más probable.
Este documento describe varios métodos para la identificación bacteriana, incluyendo métodos basados en criterios morfológicos, tinción diferencial, pruebas bioquímicas, tipificación con fagos, pruebas serológicas y biología molecular. Se enfoca específicamente en describir las pruebas bioquímicas de citrato, ureasa y Voges-Proskauer, que son útiles para identificar enterobacterias.
Actualización bibliográfica en S. aureus (Journal Watch): Diciembre 2013PROANTIBIOTICOS
El documento resume información sobre Staphylococcus aureus resistente o con sensibilidad reducida a la vancomicina (VISA, hVISA). Se discuten factores pronósticos en bacteriemia por S. aureus, el diagnóstico de hVISA y VISA, y los tratamientos combinados con vancomicina y betalactámicos. Se analizan estudios sobre la relación entre la CMI de vancomicina y los resultados clínicos, y la eficacia de combinaciones antibióticas frente a VISA y hVISA.
Pseudomonas aeruginosa es una bacteria Gram-negativa que puede causar infecciones oportunistas, especialmente en personas inmunocomprometidas. Es un bacilo recto o ligeramente curvado, aerobio estricto, que se reproduce mediante la ruta de Entner-Doudoroff y el ciclo del ácido tricarboxílico. P. aeruginosa causa infecciones pulmonares, de heridas y del tracto urinario, y es difícil de tratar debido a su resistencia frecuente a los antibióticos.
Este documento describe dos especies de la bacteria Proteus, P. vulgaris y P. mirabilis. Ambas son gramnegativas, anaerobias facultativas que habitan el tracto intestinal humano y animal. P. vulgaris causa infecciones urinarias y P. mirabilis causa infecciones urinarias al producir grandes cantidades de ureasa que hidroliza la urea a amoníaco elevando la alcalinidad de la orina y favoreciendo la formación de cristales. Ambas especies suelen ser sensibles a antibióticos como cipro
Digestion de macromoleculas en el laboratorio de microbiologia generalIPN
Este documento describe varios ensayos de degradación de macromoléculas por enzimas microbianas extracelulares. Explica los componentes y procedimientos de pruebas como la hidrólisis de gelatina, almidón y leche descremada, así como la clasificación y funciones de las enzimas involucradas como proteasas, amilasas y lipasas. También presenta resultados de pruebas realizadas con diferentes microorganismos y discute la interpretación de los resultados obtenidos en cada medio de cultivo.
Este documento presenta varias pruebas bioquímicas para la identificación de bacterias. Incluye pruebas rápidas como catalasa, coagulasa y PYR, así como pruebas para cocos Gram positivos como DNasa, manitol salado, biles esculina y CAMP. También describe pruebas de sensibilidad a antibióticos como optoquina, novobiocina y bacitracina. Por último, detalla pruebas para enterobacterias como oxidasa, TSI, SIM, Voges-Proskauer y ONPG.
Preparacion de medios de cultivo para bioquímicasThelma Correa
Este documento describe los procedimientos para identificar grupos bacterianos y realizar pruebas bioquímicas. Explica los principales grupos bacterianos como clamidias, rickettsias, micoplasmas, espiroquetas y bacterias clásicas. También detalla medios de cultivo como agar citrato de Simmons, agar de hierro de Kligler y medio MIO, y cómo realizar pruebas en estos medios para identificar bacterias mediante características como fermentación, producción de gas e indol.
utilizacion de carbohidratos y acidos organicos IPN
Este documento describe una práctica de laboratorio para identificar bacterias mediante la observación de su metabolismo de carbohidratos y ácidos orgánicos como el citrato y el malonato. Se realizaron pruebas en agar citrato de Simmons y caldo malonato para determinar si diferentes bacterias podían metabolizar estas sustancias. Los resultados obtenidos en el laboratorio coincidieron con lo esperado teóricamente para cada bacteria.
Este documento describe los diferentes métodos de esterilización y desinfección utilizados en microbiología, incluyendo la esterilización, la desinfección, la asepsia y el uso de antimicrobianos. También describe los componentes básicos de los medios de cultivo, como nutrientes, factores de crecimiento y suplementos necesarios para el cultivo de microorganismos en el laboratorio. Finalmente, explica los diferentes tipos de medios de cultivo según su consistencia, como líquidos, semisólidos y sólidos.
Mmi pruebas bioquímicas básicas utilizadas en el laboratorio de microbiología...yudyaranguren
El documento describe las pruebas bioquímicas básicas utilizadas en el laboratorio de microbiología para el diagnóstico microbiológico, incluyendo pruebas como la catalasa, la reducción de nitratos a nitritos, la coagulasa, la sensibilidad a antibióticos, la fermentación de carbohidratos, la oxidasa, la movilidad, el indol y el citrato para identificar bacterias Gram positivas y Gram negativas. También describe pruebas para caracterizar especies de los géneros Staphylococcus, Strept
Este documento presenta información sobre dos pruebas de laboratorio (TSI y LIA) utilizadas para identificar dos bacterias importantes: E. coli y Salmonella typhi. En la prueba TSI, E. coli da resultados de K/A, H2S-, CO2+ mientras que Salmonella typhi da A/A, H2S-, CO2+. Ambas bacterias dan resultados positivos en la prueba LIA. El documento también proporciona detalles sobre las características y patogenicidad de estas dos bacterias.
El documento presenta información sobre diferentes pruebas bioquímicas utilizadas para caracterizar bacterias. Describe pruebas para analizar el metabolismo de carbohidratos, proteínas, lípidos y otras moléculas, incluyendo pruebas como TSI, VP, RM, citrato, ureasa y reducción de nitratos. Explica los principios de cada prueba y cómo interpretar sus resultados.
El test de CAMP se utiliza para identificar la producción del factor CAMP por estreptococos del grupo B. El factor CAMP interactúa con la ß-hemolisina producida por Staphylococcus aureus causando una hemólisis en forma de flecha que indica la presencia del factor. El procedimiento implica sembrar cepas de S. aureus y estreptococos de forma perpendicular en una placa con sangre ovina e incubar para observar la hemólisis en forma de flecha.
Este documento proporciona información sobre las pruebas bioquímicas utilizadas para la identificación bacteriana. Explica conceptos clave como la morfología, estructura, nutrición y reproducción bacteriana. Luego describe diferentes tipos de medios de cultivo y técnicas de inoculación. Finalmente, detalla las bases, procedimientos, interpretación y aplicaciones de pruebas bioquímicas individuales como la fermentación de carbohidratos, prueba de citrato, licuefacción de gelatina y otras. El documento es una gu
utilizacion de carbohidratos y ácidos orgánicosIPN
Este documento presenta información sobre las rutas metabólicas de los carbohidratos y pruebas bioquímicas para su identificación. Explica procesos como la glicólisis, fermentación y ciclo de Krebs, e incluye detalles sobre pruebas de Durham, Kligler, Rojo de Metilo y Voges-Proskauer para determinar la fermentación de azúcares. También cubre pruebas de Simmons y caldo malonato para evaluar el uso de ácidos orgánicos. El objetivo es proporcionar fundament
Este documento describe varias pruebas bioquímicas utilizadas para identificar bacterias, incluyendo las pruebas IMVIC (indol, rojo de metilo, Voges-Proskauer y citrato), la prueba de TSI, y la prueba de ureasa. Explica los fundamentos bioquímicos, protocolos e interpretación de los resultados de cada prueba.
El documento proporciona información sobre Clostridium botulinum, la bacteria que produce la toxina botulínica. Describe las características de C. botulinum, incluyendo su morfología, hábitat y mecanismo de transmisión. También explica los procedimientos para el aislamiento e identificación de la bacteria a través de pruebas bioquímicas y la detección de toxinas mediante la inoculación en ratones.
El documento presenta los resultados del Reporte de Práctica #4 sobre pruebas bioquímicas y medios de cultivo realizado por un equipo de estudiantes de microbiología. Describe diversas pruebas bioquímicas como Indol, Rojo de Metilo, Voges Proskauer y Citrato para identificar características metabólicas de microorganismos. También explica el uso de medios de cultivo como TSI, SIM y LIA para estudiar la capacidad de fermentación, producción de ácido sulfhídrico e hidrólisis de
Aislamiento e identiicacion de bacillus cereus.Froylan Avila
En la práctica se intentó determinar la presencia de Bacillus cereus en una muestra de harina de arroz mediante técnicas de aislamiento e identificación. Sin embargo, las pruebas bioquímicas no mostraron crecimiento, por lo que no fue posible identificar Bacillus cereus u otros microorganismos en la muestra.
Este documento describe varias enterobacterias como E. coli, Shigella, Salmonella y Klebsiella. Detalla las características y pruebas bioquímicas de identificación de E. coli, incluyendo sus diferentes cepas patógenas como EPEC, ETEC, EAEC, ECAD y EHEC. También cubre brevemente a E. albertii, una especie recién descrita aislada en heces diarreicas.
AISLAMIENTO Y RECUENTO DE BACTERIAS ANAEROBIAS IPN
Este documento describe técnicas para el aislamiento y cultivo de bacterias anaerobias, incluyendo el uso de medios de cultivo especiales como el agar tioglicolato y sistemas como el Gas Pak que generan condiciones anaerobias. También compara el crecimiento de tres bacterias (Clostridium sp, Escherichia coli y Bacillus subtilis) en medios con diferentes potenciales redox y estima la población de Clostridium sp. en muestras fecales mediante el método del número más probable.
Este documento describe varios métodos para la identificación bacteriana, incluyendo métodos basados en criterios morfológicos, tinción diferencial, pruebas bioquímicas, tipificación con fagos, pruebas serológicas y biología molecular. Se enfoca específicamente en describir las pruebas bioquímicas de citrato, ureasa y Voges-Proskauer, que son útiles para identificar enterobacterias.
Actualización bibliográfica en S. aureus (Journal Watch): Diciembre 2013PROANTIBIOTICOS
El documento resume información sobre Staphylococcus aureus resistente o con sensibilidad reducida a la vancomicina (VISA, hVISA). Se discuten factores pronósticos en bacteriemia por S. aureus, el diagnóstico de hVISA y VISA, y los tratamientos combinados con vancomicina y betalactámicos. Se analizan estudios sobre la relación entre la CMI de vancomicina y los resultados clínicos, y la eficacia de combinaciones antibióticas frente a VISA y hVISA.
Este documento presenta varias pruebas bioquímicas para la identificación de bacterias. Incluye pruebas rápidas como catalasa, coagulasa y PYR, así como pruebas para cocos Gram positivos como DNasa, manitol salado, biles esculina y CAMP. También describe pruebas de sensibilidad a antibióticos como optoquina, novobiocina y bacitracina. Por último, detalla pruebas para enterobacterias como oxidasa, TSI, SIM, Voges-Proskauer y ONPG.
Este documento describe la taxonomía, morfología, factores de virulencia, hábitat, patologías asociadas y métodos de diagnóstico del género Staphylococcus. Pertenece al dominio de las bacterias, filo Firmicutes, y contiene especies como S. aureus y S. epidermidis que son comunes en la piel y mucosas humanas y animales. Produce diversas enzimas y toxinas que contribuyen a infecciones como forúnculos, celulitis e impétigo.
Este documento describe las características de Staphylococcus aureus, incluyendo su morfología, condiciones de crecimiento, estructuras como la cápsula y biofilme. También detalla diversas toxinas producidas como la enterotoxina y toxina del síndrome de shock tóxico, así como enzimas como la coagulasa y catalasa. Explica métodos para identificar S. aureus como la prueba de la coagulasa, sensibilidad a la novobiocina y presencia de ADNasa. Finalmente, aborda la resistencia a metic
La prueba de la catalasa comprueba la presencia de la enzima catalasa, que descompone el peróxido de hidrógeno en bacterias aerobias y anaerobias facultativas. La prueba se realiza añadiendo peróxido de hidrógeno a una colonia bacteriana y observando si se forman burbujas, lo que indicaría un resultado positivo. La prueba de la coagulasa prueba la capacidad de coagular el plasma mediante la enzima coagulasa. Se añade plasma a una colonia bacteriana y se incuba,
Nitroimidazoles y nitrofuranos residencia enfermeriamysz2000
El documento describe las propiedades y efectos de varios fármacos nitroimidazoles y nitrofuranoides como el metronidazol, nitrofurantoína y nifurtimox. Explica que estos fármacos actúan generando metabolitos reducidos o radicales libres que dañan el ADN bacteriano, causando efectos bactericidas o bacteriostáticos. También detalla sus mecanismos de acción, espectros, efectos adversos e interacciones más comunes.
Las bacterias gram positivas carecen de una membrana externa protectora y tienen un grueso peptidoglicano en su superficie que las hace teñirse de azul oscuro con la tinción de Gram. El Staphylococcus aureus puede causar enfermedades como forúnculos e impétigo y puede matar por insuficiencia cardíaca debido a una endocarditis bacteriana. El Streptococcus pneumoniae es una causa común de neumonía.
Este documento presenta un resumen de 10 pruebas bioquímicas comúnmente utilizadas para identificar bacterias, incluyendo las pruebas de oxidasa, catalasa, coagulasa, TSI, LIA, IMViC, indol, rojo metilo y sus procedimientos. El objetivo es que los estudiantes aprendan a identificar bacterias aplicando estas pruebas y comparando sus resultados.
Microbiología de Alimentos II: PRUEBAS BIOQUIMICAS DE IDENTIFICACIONAndré Román
Este documento describe las pruebas bioquímicas API y sus usos para identificar bacterias. Incluye una tabla con las pruebas incluidas en el sistema API 20E y sus colores positivos y negativos. El objetivo del laboratorio era identificar una cepa de Salmonella spp. aislada de un huevo usando pruebas bioquímicas como el medio urea agar y las pruebas oxidasa y catalasa.
Principales pruebas bioquímicas para la identificación de bacteriaspajitacoxito
Este documento describe las principales pruebas bioquímicas y fisiológicas utilizadas para identificar bacterias, incluyendo pruebas como TSI, LIA y MIO para bacilos gram negativos, y pruebas como catalasa, coagulasa y hemólisis para cocos gram positivos.
Nuevo vídeo en mi canal de YouTube
Hola a todos
Hoy quiero presentarles en mi canal, la última parte dela saga: La microbiología de los alimentos.
Esta serie de vídeos, pretenden convertirse en una base real y consistente para el profesional que recién comienza a transitar por el laboratorio de alimentos, o transformarse en una herramienta de consulta para el bagaje intelectual del especialista.
Esperando sea del agrado y de la utilidad de todos ustedes, les sugiero que se suscriban y que me dejen sus críticas y sus comentarios.
Muchas gracias y buena jornada.
https://youtu.be/9p0zWYL-2oI
Este documento describe varias pruebas bioquímicas utilizadas para identificar bacterias. Las pruebas incluyen catalasa, oxidasa, coagulasa, PYR, y medios de cultivo diferenciales que detectan la fermentación de azúcares y la producción de enzimas. Estas pruebas permiten diferenciar bacterias basadas en la presencia o ausencia de enzimas específicas.
Este documento describe 10 pruebas bioquímicas comúnmente utilizadas para identificar bacterias, incluyendo pruebas de oxidasa, catalasa, coagulasa, MIO, TSI, LIA, citrato, indol, rojo metilo y Voges Proskauer. Estas pruebas detectan la presencia de enzimas específicas o miden la capacidad de las bacterias para fermentar diferentes sustratos y producir ácidos o gases. Los resultados de las pruebas pueden ayudar a identificar el género o la especie bacteriana.
Este documento presenta una guía de laboratorio para la identificación de cocos Gram positivos a través de pruebas morfológicas y bioquímicas. Describe los objetivos, materiales, procedimientos y resultados esperados para pruebas como la tinción de Gram, catalasa, coagulasa, hemólisis, sensibilidad a antibióticos y prueba de PYR para diferenciar especies de Staphylococcus y Streptococcus.
El documento describe varias pruebas bioquímicas de identificación para bacterias Gram positivas. Incluye pruebas rápidas como catalasa y coagulasa, así como pruebas para identificar especies de cocos Gram positivos como DNasa, manitol salado, bilis esculina, CAMP y hidrólisis del hipurato. También describe pruebas de sensibilidad a antibióticos.
Este documento presenta un resumen de 15 prácticas de microbiología realizadas durante el segundo trimestre. Las prácticas incluyen siembras de anaerobios, pruebas como RPR-carbón y TPHA para diagnóstico de sífilis, antibiogramas, urocultivo, coprocultivo, pruebas para rotavirus y adenovirus, siembra de mohos, test de filamentación para Candida albicans y serodiagnóstico de toxoplasmosis. Para cada práctica se describe el fundamento, materiales, muestra y proced
El documento describe un experimento para detectar mercurio en las vísceras de un pollo mediante reacciones químicas. Se administró nitrato de mercurio a las vísceras y luego se realizaron seis reacciones para identificar la presencia de mercurio. Todas las reacciones mostraron resultados positivos, lo que indica que se detectó mercurio en las vísceras del pollo.
Este documento presenta el protocolo para realizar pruebas bioquímicas para la identificación de bacterias. Se detallan los materiales y procedimientos para realizar pruebas como Agar MacConkey, catalasa, oxidasa, SIM, TSI, citrato y RMVP. Los resultados de estas pruebas permiten identificar bacterias como Escherichia coli y Salmonella.
Microbiología general pruebas bioquimicas para bacteriasYamilee Farro
Este documento presenta las pruebas bioquímicas utilizadas para la identificación de bacterias, incluyendo pruebas como la producción de indol, hidrólisis de urea, descarboxilación de lisina, producción de sulfuro de hidrógeno, hidrólisis de gelatina y reducción de nitratos. Explica los fundamentos, materiales y procedimientos para cada prueba, con el objetivo de identificar bacterias a nivel de género y especie. También incluye un cuestionario sobre los fundamentos de los procesos desc
Este documento describe procedimientos para la detección y enumeración de Bacillus cereus y Clostridium perfringens en alimentos. Incluye instrucciones para el cultivo de muestras en medios selectivos, la confirmación de colonias sospechosas mediante pruebas bioquímicas y la identificación de los patógenos. El objetivo es implementar técnicas para detectar estos microorganismos debido a su importancia en salud pública como causantes de intoxicaciones alimentarias.
Este documento resume varias prácticas de laboratorio para la identificación de azúcares, almidón, digestión enzimática, observación microscópica de células, actividad enzimática, mitosis, cariotipo humano, cultivo de microorganismos y tinción de Gram. Las prácticas incluyen procedimientos detallados y sus fundamentos teóricos.
Este documento describe un experimento en el que se administró plomo a una rata por vía intraperitoneal para inducir intoxicación por plomo. La rata mostró síntomas como convulsiones, náuseas y vómitos antes de morir nueve minutos después. El experimento buscó identificar la presencia de plomo en los órganos a través de reacciones químicas como la de cromato de potasio, yoduro de potasio y difenil tio carbazina. El documento concluye que la sobredosis de plo
El documento describe la investigación sobre la decoloración rosa en los frescos de la Capilla de San Brizio en la Catedral de Orvieto, Italia. Los análisis microbiológicos y bioquímicos indican que las cianobacterias son el principal agente causante de la decoloración, debido a su habilidad para crecer en la oscuridad utilizando compuestos orgánicos. El biocida Metatin 5810-101 fue el más efectivo para reducir la decoloración según las pruebas de ATP.
Discusión Practica 5 ORGANISMOS COLIFORMES TOTALES Y FECALES Eq5.pptxGarciaUrsulaErickOma
El documento describe un experimento para determinar la presencia de coliformes totales y fecales en una muestra de agua de fresa. Se realizó la metodología del número más probable usando caldos selectivos y tablas de resultados. La prueba presuntiva mostró un posible coliforme en la dilución 10-3, pero se requiere la prueba confirmatoria para determinar los coliformes totales y fecales presentes.
1. El documento describe diversas pruebas bioquímicas para identificar bacterias, incluyendo pruebas de metabolismo de carbohidratos, aminoácidos y producción de enzimas.
2. Algunas de las pruebas discutidas incluyen citrato de Simons, agar de hierro triple azúcar, Voges-Proskauer, rojo de metilo, agar de hierro y lisina, y medio de movilidad, indol y ornitina.
3. Los resultados de las pruebas pueden ayudar a diferenciar géneros y
1. El documento describe varias pruebas bioquímicas utilizadas para identificar bacterias, incluyendo pruebas de metabolismo de carbohidratos, aminoácidos y producción de enzimas.
2. Algunas de las pruebas discutidas incluyen Citrato de Simons, Kligler, TSI, Voges-Proskauer, Rojo de Metilo, LIA, MIO y SIM.
3. Los resultados de las pruebas pueden ayudar a diferenciar géneros y especies bacterianas basados en su capacidad para fer
1) El análisis microbiológico del agua determina los microorganismos presentes y es importante para evaluar la calidad del agua y detectar posibles patógenos.
2) Los factores que afectan la flora bacteriana del agua incluyen la acidez, materia orgánica, oxígeno disuelto, sales, temperatura, y turbidez.
3) Los análisis comunes incluyen determinar bacterias coliformes totales y fecales, enterococos fecales, y Clostridium perfringens, usando métodos
Este documento describe varias pruebas bioquímicas utilizadas para identificar bacterias, incluyendo pruebas para determinar la capacidad de las bacterias para utilizar diferentes azúcares, producir enzimas como la catalasa y coagulasa, y hidrolizar compuestos como la esculina, ADN, arginina y hipurato. Explica los fundamentos, técnicas e interpretación de los resultados de cada prueba.
Este documento proporciona una guía para realizar un coprocultivo para identificar posibles patógenos gastrointestinales a través de pruebas de cultivo y bioquímicas de muestras de heces. Describe los pasos para recolectar y procesar las muestras, realizar cultivos en varios medios selectivos, y pruebas bioquímicas como KIA y Christensen para identificar bacterias como E. coli y descartar patógenos. El resumen concluye que los microorganismos encontrados en la muestra analizada son parte de la
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3. Pruebas de Identificación para
Cocos Gram +
1.
2.
3.
4.
5.
6.
DNasa
Prueba del manitol salado
Bilis esculina
CAMP
Hidrólisis del hipurato
Voges –Proskauer
Pruebas de sensibilidad a ATB
1.
2.
3.
Disco de Optoquina
Disco de novobiocina
Disco de Bacitracina
5. Prueba de la catalasa
Fundamento: Detecta la presencia de la enzima
catalasa.
Procedimiento: En portaobjetos colocar sobre una
colonia unas gotas de H202 3 %.
H202 H20 + 02
Liberación de burbujas rápida y sostenida indica
la producción de oxígeno molecular = prueba (+)
Consideraciones:
No Agar sangre (peroxidasa en los eritrocitos).
7. Prueba de la coagulasa
Fundamento: Detecta un factor de agregación “clumping
factor” en la superficie de la bacteriana.
Procedimiento: se coloca una colonia sospechosa de
pertenecer a una especie de Staphylococcus y se
emulsifica en una gota de plasma de conejo.
Interpretación: “arracimamiento” bacteriano en 1 minuto =
prueba (+).
Si el resultado es negativo ensayar la producción de
coagulasa en tubo.
Consideraciones:
Utilizar plasma con EDTA y no citratado, ya
que organismos capaces de metabolizar el citrato
(Enterococcus spp.) pueden dar resultados falsos (+).
Las pruebas (-) luego de 4 hs de incubación
a 35ºC, dejar a temperatura ambiente y leer luego de 1824 hs a fin de evitar la fibrinólisis que producen algunas
cepas al ser incubadas en forma prolongada a 35ºC.
9. Prueba del PYR:
Fundamento: detecta la enzima pirrolidonil arilamidasa se utiliza
como sustrato el reactivo L-pirrolidonil- beta-naftilamida (PYR), para
la identificación rápida de enterococos.
Procedimiento: Realizar un alto inóculo (2 MacFarland) e introducir
un disco de PYR.
Tiempo y Tº de incubación: 30 minutos a 35º C.
Tiempo de lectura: 5 minutos.
Interpretación:
Disco rosado o rojo (+)
Disco y/o solución amarillo a incoloro (-).
Consideraciones: Algunas especies de Staphylococcus y los
estreptococos del grupo A dan, también, una prueba positiva.
11. Prueba de la DNAsa
Fundamento: El S. aureus produce una DNAasa
termoestable que hidroliza DNA. La producción de
DNAsa puede determinarse incorporando ácido
desoxirribonucleico (DNA) en agar nutritivo .
Procedimiento: Se inocula el microorganismo en
manchas densas sobre agar DNA y después de 18 a 24
hs de incubación. Revelar con HCl al 1%, que precipita
el DNA nativo del medio.
Interpretación: colonias rodeadas por una zona clara
donde el ADN ha sido despolimerizado e hidrolizado =
prueba (+)
13. Agar Manitol salado
Fundamento: el medio contiene manitol (1%), cloruro de sodio (7,5
%), rojo de fenol y peptonas.
Procedimiento: Sembrar la cepa e incubar 18 a 24 hs a 35ºC.
Interpretación:
Crecimiento y viraje
S. aureus
Crecimiento sin viraje.
S. epidermidis
Consideraciones:
La alta concentración de sal inhibe otros microorganismos excepto
enterococos (por lo tanto usar la placa para identificación, no para
aislamiento).
15. Prueba de la bilis-esculina:
Fundamento: Se basa en la capacidad de ciertas bacterias
(estreptococos del grupo D) para hidrolizar la esculina en presencia
de 1-4% de sales biliares.
Procedimiento: Se inocula el microorganismo en la superficie de
un pico de flauta. Incubar 24 hs.
Interpretación: La beta glucosidasa escinde la esculina en glucosa
y esculetina. Esta ultima es soluble en el medio y forma un
complejo de color negro con Fe 3+ .La hidrólisis de esculina se
observa como un oscurecimiento del medio (color negro) en 24 hs
de incubación a 35ºC, raramente se requieren 48 hs de incubación
hasta que la hidrólisis sea aparente.
Consideraciones: Es importante que el medio contenga 40% de
bilis, ya que algunos productos contienen menos cantidad lo que
lleva a confundir algunos estreptococos viridans con enterococos
16. Prueba de CAMP
Fundamento: Los estreptococos grupo B secretan el factor CAMP
que interactúa con la ß-hemolisina secretada por una cepa ßhemolítica de S. aureus (ATCC 25923) lo que causa un
acrecentamiento o sinergismo de la hemólisis.
Procedimiento: En placa de agar sangre sembrar una estría de la
cepa de S. aureus y perpendicularmente a ésta (lo más cerca
posible, sin llegar a tocarla) sembrar la cepa de estreptococo en
estudio.
Tiempo y Tº de incubación: Incubar 24 hs a 35ºC en aerobiosis
(en CO2 aumentan los falsos positivos).
Interpretación: El sinergismo se observa como un área de ßHemólisis en forma de “punta de flecha” en la zona
de desarrollo más cercana a ambas estrías.
18. Prueba del hipurato de sodio
Fundamento: Ciertas cepas son capaces de hidrolizar el hipurato
de sodio. La producción de hipuricasa resulta en la hidrólisis del
hipurato de sodio con la formación de benzoato de sodio y glicina.
Procedimiento:
Inocular un tubo con medio hipurato de sodio con el
microorganismo. Incubar 24 hs a 35ºC. Centrifugar. Pipetear 0.8 ml
el sobrenadante. Agregar 0.2 ml de cloruro férrico 7%.
Inocular un tubo con 0.4 ml de medio hipurato de sodio con el
microorganismo. Incubar 2 hs a 35ºC. Agregar 0.2 ml de Ninhidrina.
Interpretación:
La formación de un precipitado denso y persistente por 10 minutos
= prueba (+) Benzoato de sodio
La aparición de un color púrpura profundo = prueba (+) glicina.
20. Prueba de la susceptibilidad a
la Novobiocina
Fundamento: Se basa en que ciertas bacterias son sensibles a la
novobiocina.
Procedimiento: Se inocula el microorganismo en agar Mueller
Hinton según técnica de Kirby-Bauer, utilizando discos de
Novobiocina (5 µg).
Interpretación: Sensible: inhibición del desarrollo con un diámetro
mayor o igual a 16 mm
Staphylococcus
R
Micrococcus
S
Consideraciones:
Kirby Bauer (Difusión en disco)
Inoculo sin incubación previa
Tiempo de lectura: 24 hs.
Tº de incubación: 33º a 35º
21. Prueba de la Bacitracina:
Fundamento: Se basa en que ciertas bacterias son sensibles a la
bacitracina.
Procedimiento: Se inocula el microorganismo en AS según técnica
de Kirby-Bauer utilizando discos de Bacitracina (0.04 U).
Interpretación: Sensible: Cualquier zona de inhibición del
desarrollo.
Consideraciones: Kirby Bauer (Difusión en disco)
Inoculo sin incubación previa
Tiempo de lectura: 18 a 24 hs.
Tº de incubación: 33º a 35º en CO2
Recordar que el uso de discos de Bacitracina en forma directa en
las placas primarias de cultivo puede dar como resultado un 40% a
50% de falsos negativos.
24. Pruebas de Identificación para
enterobacterias
1. Prueba OF
2. Prueba de la oxidasa o citocromooxidasa
3. TSI
4. SIM (Sulfhídrico- Indol- Movilidad)
5. Rojo de metilo - Voges –Proskauer
6. ONPG (O-nitrofenil-b-galactopiranosido)
7. Citrato
8. Ureasa
9. Fenil-alanina-desaminasa
10.Descarboxilasas
26. CITOCROMOOXIDASA O
PRUEBA DE LA OXIDASA
Fundamento: El sistema citocromooxidasa, se halla en
microorganismo aerobios, microaerófilos y anaerobios facultativos.
Procedimiento: Hacer una suspensión del microorganismo con
solución fisiológica (inóculo) en un tubo de vidrio, agregar un disco
(disco comercial de papel impregnado de tetrametil-paradifenilamina) se agita y antes de los 2 minutos se debe leer.
Interpretación: Un cambio de color del disco a rosado o violeta =
prueba (+). Si no hay cambio de color el microorganismo es oxidasa
negativo.
Consideraciones Esta prueba no puede realizarse con colonias
que provengan de medios de cultivo que contenga hidratos de
carbono ni indicadores, por lo que si se la va a realizar se debe
incubar los microorganismos en un placa de AS o bien un TSA
(tripteina-soya-agar)
28. PRUEBA DE OXIDACIÓN
FERMENTACIÓN (O-F)
Fundamento: Determinan el metabolismo oxidativo o fermentativo
de un hidrato de carbono o su falta de utilización. Se usa el medio
O-F de Hugh y Leifson que contiene peptonas e hidratos de
carbono en una relación 1:5. Al ser menor la concentración de
peptonas, hay menor producción de productos de oxidación a partir
de los AA que tienden a elevar el pH y pueden neutralizar los
ácidos débiles producidos por los microorganismos no
fermentadores.
Procedimiento: Se utilizan 2 tubos con el medio O-F, se hace la
siembra con ansa de punta hasta el fondo de los dos tubos. Uno de
los tubos queda expuesto al aire, y el otro se cubre con vaselina
estéril.
Interpretación:
Microorganismos oxidativo: producen ácido solo en el tubo
abierto, expuesto al O2 atmosférico. Por lo que solamente el tubo
expuesto al aire atmosférico cambia su color original a amarillo.
Microorganismos fermentadores: producen ácido en los 2 tubos.
O sea que los dos tubos viran del verde al amarillo.
Bacterias sacarolíticas: son inertes a este medio que conserva su
pH alcalino después de la incubación, conservando su color
original.
30. TSI (TRIPLE AZÚCAR HIERRO
AGAR)
Fundamento: Sirve para detectar la
fermentación de hidratos de carbono. El medio
contiene: glucosa al 0.1%, lactosa 1%, sacarosa
al 1% y peptonas; también tiene un indicador
rojo de fenol y sulfato de hierro para evidenciar
la formación de SH2.
Procedimiento: El medio se fracciona en picos
de flauta con una capa basal profunda (2 cm.
por lo menos). Con el ansa en punta se siembra
por punción y estría.
El medio no inoculado es anaranjado-rojizo o
rojo pálido. Incubar 24 hs a 35º C.
31. TSI (TRIPLE AZÚCAR HIERRO
AGAR)
Interpretación:
Fermentación de la glucosa (alcalino/ácido)
Primero los microorganismos empiezan a fermentar la glucosa, produciendo
ácidos y virando totalmente el medio a color amarillo. Como solamente
utilizan la glucosa, no pueden usar la sacarosa ni la lactosa, cuando la
glucosa que se halla en baja concentración se consume (antes de las 24hs)
los microorganismos comienzan a utilizar la peptonas con producción de
amoníaco que alcaliniza el medio dando un color rojo, pero solamente en el
pico, quedando el fondo ácido.
Fermentación de glucosa, lactosa y sacarosa (ácido/ácido)
Como la lactosa y sacarosa están en una proporción 10 veces mayor que la
glucosa, en un período de 24hs., la lactosa y sacarosa, aún no se
consumen quedando ácido el medio o sea totalmente amarillo.
3) No fermentación de lactosa, sacarosa ni glucosa (alcalino/alcalino). Un
microorganismo incapaz de obtener sus nutrientes de los hidratos de
carbono, lo obtiene de las peptonas. Cuando las peptonas son degradadas
libran amoníaco y alcalinizan el medio. Produciéndose entonces
intensificación del color.
32.
33. Consideraciones del TSI
Es importante respetar el tiempo de lectura, porque si el caso 1 se
lee antes de las 24hs. se va a interpretar como ac/ac y no lo es. Si
el 2 se lee después de las 24hs, los microorganismo ya se quedan
sin hidratos de carbono, entonces comienzan a utilizar las peptonas
y se alcaliniza el medio.
Con respecto al sulfhídrico pueden presentarse distintas
modalidades:
Pico rojo, fondo amarillo con precipitado negro y formación de gas,
esto se puede dar en Salmonella, se lee: alc/ac (SH2) (gas)
También se puede ver totalmente amarillo y el fondo negro: se lee:
ac/ac (SH2).
Además se puede visualizar en el tubo la producción de gas por
parte del microorganismo, entonces en el medio se observan
burbujas, resquebrajamiento, o si no todo el medio de cultivo
aparece levantado.
35. SIM (SULFHÍDRICO – INDOL –
MOVILIDAD)
Fundamento: Es un medio semi-sólido transparente que pone en
evidencia la movilidad, la producción de triptofanasa y de SH2. Contiene:
Triptofano: la enzima triptofanasa, lo desdobla, produce indol, que se pone
de manifiesto con el reactivo de Erlich o Kovac
Citrato de hierro y amonio: los microorganismos productores de SH2
ennegrecen el medio de cultivo
Si los microorganismos son móviles, al ser éste un medio semi-sólido se
produce enturbiamiento del medio de cultivo, caso contrario solo crece en la
punción.
Procedimiento: se inocula el microorganismo por punción con ansa de
punta. Se deja incubar a 35ºC durante 24hs. y luego de este tiempo se
agregan unas gotas del reactivo de Erlich o Kovac dejándolo resbalar por
las paredes del tubo.
Interpretación:
Triptófano (+): observar la interfase, la aparición de un color rojo fucsia
brillante por la formación de un complejo entre el indol y el pdimetilaminobenzaldehido.
M (+) / SH2 (-) enturbiamiento del medio
M (+) / SH2 (+), se ennegrece todo el medio
M (-) / SH2 (-) se observa crecimiento solamente en la estría
M (-) / SH2 (+), se observa precipitado negro alrededor de la estría (pero no
ennegreciendo de todo el medio).
38. ROJO DE METILO – VOGES
PROSKAUER:
Fundamento: El acido pirúvico, un compuesto fundamental formado en la
fermentación de la glucosa, es metabolizado aún mas a través de cierto
numero de vías metabólicas. Una de ellas da como resultado la producción
de acetoína (acetil-metil-carbinol) un producto final de reacción neutra. En
presencia de oxigeno e KOH al 40%, la acetoína es convertida en diacetilo
y el α naftol sirve como catalizador para producir un complejo de color rojo.
Procedimiento: Se usa el mismo caldo de enriquecimiento para las dos
pruebas (2ml), se hace la inoculación del microorganismo, y se lleva a
incubar a 35ºC durante como mínimo 24-72hs..
Luego se lo divide en dos partes, una para la prueba de RM y otra para la
de VP.
Rojo de metilo: se agregan 3 gotas del reactivo de metilo, si en la
superficie del medio aparece un color rojo intenso es RM (+) =
microorganismos que utilizan la glucosa fermentándola hasta llegar a un pH
menor a 4,4.
VP: Se agrega 0.6 ml de alfa-naftol seguidos de 0,2 ml de KOH al 40%. Es
esencial que los reactivos se agreguen en este orden. El tubo se sacude
suavemente y luego se deja quieto de 10 a 15 min. La aparición de color
rojo = prueba (+) (presencia de acetil-metil-carbinol).
40. ONPG (O-NITROFENIL-βGALACTOPIRANÓSIDO)
Fundamento: Lo microorganismos lactosa (+) tienen β-galactosidasa y
permeasa, dos enzimas necesarias para la formación de ácidos a partir de
la lactosa
La permeasa es necesaria para que la molécula de lactosa ingrese en la
célula bacteriana.
Hay algunos microorganismo que son falsos lactosa (-) por carecer de
permeasa, pero sí tienen β-galactosidasa, en realidad son lactosas (+).
Esta prueba se hace con los microorganismo que dan lactosa (-)
Procedimiento: Hacer un inóculo con SF estéril, agregar un disco de papel
comercial, se agita y antes de los 2 minutos se debe leer.
Interpretación: Un color amarillo intenso nos indica que el microorganismo
es productor de β-galactosidasa= prueba (+).
Consideraciones
Se hace un inóculo del microorganismo en solución fisiológica estéril, se
agrega un disco de papel. Se lleva a incubar a 37ºC durante 24hs.
42. CITRATO
Fundamento: Sirve para poner de manifiesto aquellos
microorganismos que utilizan el citrato como única
fuente de carbono, el indicador es azul de bromo timol.
Procedimiento: El color original del medio es verde, y
se encuentra fraccionado en pico de flauta, la siembra
se hace por estría, se incuba 24-72hs a 35ºC.
Interpretación: Si el microorganismo utiliza citrato, se
produce alcalinización del medio de cultivo pasando éste
a color azul intenso, lo cual indica prueba positiva para
el citrato.
44. UREA:
Fundamento: Sirve para poner de manifiesto aquellos
microorganismo que poseen la enzima ureasa.
Procedimiento: El medio fraccionado en pico de flauta
contiene urea y rojo de fenol como indicador, el color
original del medio es amarillo (o sea ácido) La siembra
se realiza con ansa de punta tanto en profundidad como
en la superficie. Se deja incubar 24 hs a 35º C.
Interpretación: Si el microorganismo es productor de
ureasa, desdobla la urea produciendo amoníaco,
consecuentemente produce alcalinidad que se
manifiesta porque el medio toma un color fucsia.
46. FENIL-ALANINA-DESAMINASA:
Fundamento: Sirve para poner de manifiesto aquellos
microorganismo que poseen la enzima FENILALANINA-DESAMINASA. El medio se prepara con un
pico de flauta largo, pues la lectura se hace sobre la
superficie del medio de cultivo.
Procedimiento: Se siembra sobre la superficie del
medio solamente, se incuba 24 hs a 35º C, se revela
con cloruro férrico.
Interpretación: El color original es amarillo, si el
microorganismo es productor de la enzima, al agregar
sobre el medio cloruro férrico, ésta se pone de
manifiesto, dando a la superficie un color verde intenso.
48. AMINOÁCIDOS:
DESCARBOXILASAS:
Fundamento: Las descarboxilasas son enzimas sustratoespecíficas (presentes o no en los microorganismos) capaces de
reaccionar con la porción carboxilo (COOH) de AA formando
aminas de reacción alcalina. Esta reacción, conocida como
descarboxilación, forma C02 como producto secundario. Cada
descarboxilasa es específica para un aminoácido.
Lisina, arginina y ornitina son los aminoácidos evaluados de rutina
en la identificación de enterobacterias.
El medio Moeller es la base (semi-sólida) que se emplea con más
frecuencia. El aminoácido se agrega a la base. El color original es
lila.
Procedimiento: Se inoculan por punción 2 tubos y se sellan con
aceite mineral. Uno de los tubos contiene el AA y el otro no.
Interpretación: Si el aminoácido es descarboxilado, se forman
aminas alcalinas y el medio pasa a violeta más intenso. Si no es
descarboxilado pero fermenta la glucosa, vira al amarillo por la
formación de ácidos
50. LIA:
Agar de ensayo para la demostración simultánea de lisina decarboxilasa
(LD) y de la formación de hidrogeno sulfurado (H2S) para la identificación
de enterobacterias.
► La lisina puede ser descarboxilada por microorganismos LD positivas
que la transforman en la amina cadaverina. Esto produce un viraje al
violeta del indicador de pH púrpura de bromocresol,puesto que la
descarboxilación sólo tiene lugar en medio ácido (pH inferior a
6.0). Es necesario que se produzca previamente la acidificación del medio
decultivo, por fermentación de la glucosa. Este medio de cultivo solo
puede utilizarse para la diferenciación de bacterias que fermentan
glucosa.
► Los microorganismos LD negativos, pero fermentadores de la glucosa,
producen un viraje al amarillo de la totalidad del medio de cultivo. La
incubación prolongada puede ocasionar alcalinización en la zona de la
superficie del medio de cultivo y en consecuencia, se produce un viraje al
violeta. La formación de H2S produce una coloración negra debido al
sulfuro de hierro producido.