modulacion de una funcoion celular por señales quimicas

1. PRACTICA NO. 7
MODULACIÓN DE UNA FUNCIÓN
CELULAR POR SEÑALES QUÍMICAS
Integrantes:
•Clemente López Katia.
•Cruz Pérez Jennifer Elena
•Niedzwiecki Muñoz Stanley Raúl
•Pasondo Gonzalez Luis Eduardo.

2.  Las actividades de las células, tejidos,
órganos del cpo están coordinadas por la
interacción de diferentes sistemas de
comunicación:
Sist de
Comunicación
Nervioso Endócrino Neuroendócrino Parácrino Autócrino

3. SINANPSIS
 Región donde se
produce la
comunicación
entre dos
neuronas o entre
una neurona y una
célula diana (entre
neurona motora y
fibra muscular). FiguraNo.1 : Anatomía fisiológica de
la sinápsis.

4. TIPOS DE SINANPSIS
 Química: Esta es la más
utilizada en el SNC para
transmitir señales.
 Secreción de neurotransmisor.
 Conducción unidireccional.
De n. presináptica a n.
postsináptica.
 Existe el potencial
postsináptico (producido por
la c. postsináptica)
Figura No.2: Sinapsis química

5.  Eléctrica: El PA pasa directamente de la c. presináptica a la c.
postsináptica. A través de uniones comunicantes o hendidura.
 Conducción bidireccional.
 Ventajas: comunicación más rápida y sincronización.
 Menos frecuente.
Figura No.3: Sinapsis eléctrica.

6. Figura No. 4: Potencial Postsináptico
Exitador PPSE
Figura No. 5: Potencial Postsináptico
Inhibidor PPSI

7. NEUROTRANSMISOR
 Sustancias químicas (biomolécula) que
estimulan la formación de PA en células
postsinápticas.
 Algunos se unen a receptores específicos y
actúan rápidamente.
 Otros actúan lentamente a través de
segundos mensajeros .
 Como resultado está la excitación o
inhibición de neuronas postsinápticas.

8. HORMONA
 Sustancia químicas que influyen en la
función de células localizadas en otras
regiones del organismo.
Tipos
Proteínas y
polipéptidos
Secretadas por la
hipófisis,
neurohipósis y
páncreas
Esteroides
Secretadas por la
corteza
suprarrenal
Derivados del a.a.
tirosina
Secretadas por la
glándula tiroidea.

9.  La acción de una hormona inicia con su
unión a un receptor específico de la célula
diana.
 Tipos de receptores:
• Sobre la superficie de membrana.
• En el citoplasma celular.
• En el núcleo celular.
* La regulación de los receptores puede ser a
la alza o la baja.

10. OXITOCINA
 Hormona neurohipofisiaria peptídica.
 Afecta principalmente al músculo liso uterino.
 Estimula la frecuencia y la fuerza de las contracciones
uterinas.
 El estrógeno la acción de la oxitocina al el
potencial de membrana de las células de músc. liso,
el umbral de excitación.
 Es inhibida por la progesterona in vitro
 Participa en el parto y la lactancia.
 La oxitocina exógena puede iniciar contracciones o
aumentarlas.
 Antagonista: Atosibán

11. FISIOLOGÍA DE LA OXITOCINA
 Actúa por medio de
receptores de
membrana
acoplados a
proteína G
(metabotrópico)
 Utiliza el sistema de
2º mensajero
fosfolipasa C para
su control celular. Figura No. 6: Sistema de 2º mensajero de los
fosfolípidos de la membrana celular.

13. VÍA DE SEÑALIZACIÓN DE OXCITOCINA
La activación del receptor de
oxitocina conduce a tres
mecanismos diferentes de unión
a las proteínas GTP. El
mecanismo principal está
mediado por el camino de ida
Gq /PLC/InsP3 . Cuando la
oxitocina se une a receptores
específicos de oxitocina, se
activa Gαq /11 y luego
fosfolipasa C (PLC), que induce
la escisión de PIP2 a
inositotrifosfato (InsP3 ) y
diacilglicerol (DAG). InsP3
induce la liberación de Ca2+ de
los depósitos de Ca2+ a través
de InsP3 R.
Fig. No. 7. Representación esquemática de las
vías de señalización de receptores específicos
de oxitocina.

14. La activación de Gq también provoca la despolarización
de la membrana, que, a su vez, activa canales de
calcio y luego da la entrada de calcio.
Así, el aumento de calcio citosólico estimula CaMK
después de la unión a la proteína de unión de calcio
Calmodulina. El complejo Ca²/CaM activa entonces
CaMK y provoca diversas respuestas celulares, tales
como las contracciones del músculo liso, o induce la
activación de varios tipos de enzimas, tales como NOS
o de PI3K. DAG causa la activación de la proteína
cinasa C (PKC) y también diversas respuestas
celulares.

15. OBJETIVOS
 Determinar los niveles de control que
pueden modular una función celular, en este
caso la contractibilidad uterina en la rata.
 Evaluar las variaciones de contractibilidad en
función de cambios en la concentración y en
la densidad de receptores de una señal
específica: oxitocina.

16. FUNDAMENTO
 Se administro estradiol una semana antes de la
practica debido a que presenta un mecanismo tipo
II de los receptores nucleares en donde sus efectos
se dan en horas pero perduran por días.
 Se utilizo el estradiol para favorecer la contracción
debido a que genera la maquinaria necesaria para
la contracción, es por ello del útero mas grande en
las ratas tratas.
Figura 8.- estructura
del estradiol

17. SOLUCION FISIOLÓGICA GARCIA JALON
 Ringer hipocálcico o "solución de Jalón", líquido
nutricio para las preparaciones aisladas de útero de
rata o cobayo
 pH aproximado: 6,0
 Solución transparente e incolora, sin partículas
visibles, estéril y apirógena.
Cada 100 ml de solución contienen:
 Cloruro sódico 600 mg
 Lactato sódico 312 mg
 Cloruro potásico 40 mg
 Cloruro cálcico dihidrato 27 mg

18. USOS
 Reposición hidroelectrolítica del fluido
extracelular, como en estados de
deshidratación con pérdida de electrolitos o
en intervenciones quirúrgicas.
 Vehículo para la administración de
medicamentos compatibles.
Se utiliza para estudiar a los receptores:
 Adrenoceptores beta(2),
 histamina H(2),
 bradikinina B(2)

19. RESULTADOS-
RATA CONTROL
Figura 9.-Registro
basal

20. Fuerza
1.3088
gramos
Duración
46
segundos
Figura 10.- Registro de la contracción
muscular de la rata control al aplicar
0.2 ml de oxitónica de concentración
50 nm
Fuerza 2.93
gramos
Figura 11.- Registro de la contracción
muscular de la rata tratada al aplicar
0.2 ml de oxitónica de concentración
50 nm
Duración
42
segundos

21. Figura 12.-Registro de la contracción
muscular de la rata control al aplicar
0.2 ml de oxitónica de concentración
100 nm
Fuerza 2.65
gramos
Duración 73
segundos
Figura 13.-Registro de la contracción
muscular de la rata tratada al aplicar
0.2 ml de oxitónica de concentración
100 nm
Fuerza 2.17
gramos
Duración 85
segundos

22. Figura 14.-Registro de la contracción
muscular de la rata tratada al aplicar
0.2 ml de oxitócina de concentración
200 nm
Fuerza 3.04
gramos
Fuerza 2.65
gramos
Duración 73
segundos
Figura 15.-Registro de la contracción
muscular de la rata control al aplicar
0.2 ml de oxitónica de concentración
200 nm
Duración 71
segundos

23. Fuerza 2.66
gramos
Duración 63
segundos
Figura 16.-Registro de la contracción
muscular de la rata control al aplicar
0.2 ml de oxitócina concentración 500
nm
Figura 17.- Registro de la contracción
muscular de la rata tratada al aplicar
0.2 ml de oxitónica de concentración
500 nm
Fuerza 1.94
gramos
Duración 79
segundos

24. y = 41.338x + 6.9399
R² = 0.9184
y = 32.279x - 0.2184
R² = 0.9837
-20
0
20
40
60
80
100
120
140
0 0.5 1 1.5 2 2.5 3
%efecto
contráctil
de
utero
de
rata
Log [Oxitocina]
Grafica 1.-logartirmo de la concentración de oxitocina
en función del % de efecto contráctil del útero de rata

25. y = 34.636x + 4.2967
R² = 0.8676
y = 39.754x + 0.9631
R² = 0.8674
0
20
40
60
80
100
120
0 0.5 1 1.5 2 2.5 3
%
duracion
de
la
contraccion
de
utero
de
rata
Log [oxitocina]
Ratas control Ratas tratadas
Grafica 2.-logartirmo de la concentración de oxitocina en
función del % de duración de la contracción del utero de rata