salud

1. “PROCEDIMIENTOS DE LABORATORIO
PARA LA IDENTIFICACIÓN Y
AISLAMIENTO DE HONGOS”
2019-I
POR: Lic. TM. Yenifer Mirella Zevallos Falcón.
“Año de la lucha contra la corrupción e impunidad”

2. Estudio de Hongos de Importancia Médica
Toma de
muestras
• Consideraciones
Examen
directo
• KOH
Aislamiento • Medios de
cultivo
Identificación

3. 1.Toma de muestras
RECOMENDACIONES
Suspender por 8 días la
aplicación tópica de
sustancias antimicóticas.
Suspender por 15 días la
terapia oral.
Las uñas no deben estar
pintadas, ni cremas, ni
talcos.

4. 1.Toma de muestras
Recomendaciones
SUSPENSION DE TERAPIA
ANTIFUNGICA POR LO MENOS 5
DIAS ANTES DE LA TOMA DE
MUESTRA.
RECOLECCION APROPIADA: FRASCO
ESTERIL DE BOCA ANCHA,
ROTULADO, ETC.
PRONTO ENVIO AL LABORATORIO.
• Lesion característica.
• Raspados del borde activo.
• Pus y exudados: jeringas,
pipetas.
• Cortes de tejidos con
material quirúrgico.

5. 1.Selección y obtención de las muestras
CRITERIOS
1. Seleccionar el sitio anatómico adecuado
del cual se va a tomar la muestra.
2. Evitar la contaminación con flora
endógena.
3. Tomar un volumen suficiente de muestra
que permita la realización de todos los
estudios. Un material insuficiente puede dar
falsos negativos.
4. Rotular la muestra con el nombre del
paciente, número de identificación, origen
de la muestra, fecha y hora de la toma.
5. Utilizar un recipiente para el transporte
que permita la viabilidad del patógeno, que
no pueda sufrir fisuras o roturas y que
cumpla con las normas de bioseguridad
para el transporte y procesamiento.

7. Tipos
de
micosis Micosis superficial: pelos,
escamas y uñas.
Micosis en mucosas: torundas
de algodón.
Micosis subcutáneas: pus y
tejidos.
Micosis sistémicas y
profundas: lesiones ulcerosas,
nódulos linfáticos y órganos.
-SECRECION RESPIRATORIA:
ESPUTO, LAVADO
BRONQUIAL, ASPIRADO
TRAQUEAL Y
TRANSTRAQUEAL Y LAVADO
GASTRICO.
-VIAS GENITO URINARIAS:
ORINA, SECRECION
VAGINAL Y CERVICAL.

8.  Superficiales
 Dermatomicosis
 Piedra negra
 Piedra Blanca
 Pitiriasis
versicolor
 Tiña Nigra
Palmaris
 Dermatofitosis
 Tiñas
 Subcutáneas
 Esporotricosis
 Cromomicosis
 Micetoma
 Lobomicosis
 Rinosporidiomi
cosis
 Basidiomicosis
 Sistémicas
 Histoplasmosis
 Coccidioidomicosis
 Paracoccidioido-
micosis
 Blastomicosis
 Oportunistas
 Candidosis
 Geotricosis
 Criptococcosis
 Tricosporonosis
 Mucormicosis
Aspergilosis
 Neumocistosis

9. 1.Toma de muestras para micosis
superficiales
Sitio más activo y típico de la lesión.
Recipientes estériles, irrompibles, de tamaño adecuado
Conservarlas a temperatura ambiente.

10. 1.Elección del método de toma de
muestras para micosis superficiales
MATERIAL LESIÓN SOSPECHA TOMA DE MUESTRA
PIEL Múltiples manchas descamativas color pardo o más claras que
el color de la piel normal. Generalmente localizadas en el
tronco, raramente en cara, cuello, brazos, axilas o Muslos.
Pitiriasis
versicolor
Cinta adhesiva
transparente.
PIEL Lesiones húmedas, con alteración de la epidermis, que
provocan prurito y ardor, localizadas preferentemente en
pequeños y grandes pliegues.
Candidiasis Raspado y/o hisopado
PIEL Manchas negras o pardas, únicas o no, localizadas
especialmente en la palma de las manos, planta de los pies y
raramente en otras zonas del cuerpo.
Tiña negra Raspado
PIEL Lesiones inflamatorias con alteraciones de la epidermis
(vesículas, descamación) y/o de la dermis (eritema, edema,
supuración); generalmente bordes bien definidos, anulares o
policíclicos elevados, con área central escamosa y periferia
eritematosa que avanza activamente, con o sin vesículas o
vesiculopústulas, localizadas en cualquier área del cuerpo o de
la cara.
Tinea
corporis
Tinea cruris
(dermatofit
osis)
Raspado del borde
activo. Si se observa
inflamación de los
folículos pilosos se
tomará muestra del
vello por depilación.

13. 1.Elección del método de toma de
muestras para micosis superficiales
MATERIAL LESIÓN SOSPECHA MÉTODO
PIEL Lesiones localizadas en los pliegues interdigitales, en
la planta y/o dorso del pie, consistentes en fisuras de
la membrana interdigital de color rojo y bordes
blancos, o lesiones hiperqueratósicas
pápuloescamosas con escamas furfuráceas que
asientan sobre una base engrosada y eritematosa de
planta o dorso del pie, con o sin vesículas o pústulas.
Tiña pedis Raspado de la
periferia de la
lesión.
UÑAS Uñas endurecidas, engrosadas o no, con surcos, con o
sin cambio de color pero con brillo. Sin formación de
residuos epidérmicos entre la uña y su lecho.
Habitualmente con Perionixis inflamatoria, rojiza y
dolorosa.
Onixis por
levaduras.
Raspado. No
descontaminar con
alcohol antes de
recolectar material
para el cultivo.
UÑAS Uñas endurecidas, engrosadas, con o sin surcos, pero
siempre friables y quebradizas, con pérdida del color
y brillo natural. Hay formación de detritos
epidérmicos caseosos entre la uña y su lecho. La
infección generalmente comienza por el borde lateral
o distal de la uña. No hay perionixis.
Tinea unguium
(dermatofitosi
s)
Raspado, recoger
el material
caseoso.

16. ¿Cómo se toman las muestras?

17. •MUESTRAS CUTÁNEAS: PIEL, PELO, UÑA
•Limpiar con alcohol 70%
•Atracción electrostáticas, no recipientes de plástico.
•PLACAS PETRI DE VIDRIO ESTÉRILES
•Piel
•Bisturí nº 23, portaobjetos
•CURETA DÉRMICA
•Adicionalmente, cinta scoth, piel de niños (98.3%)
•Uñas
•Pelo
•Examen con lámpara de Wood (fluorescencia)
•Verde clara, tiña microspórica
•Verde oscura, tiña fávica
•Sin fluorescencia, tiña endotrhix, microide o megaspórica
•Tapiz, alfombra o cepillos estériles (portadores asintomáticos, mascotas)
1.Toma de muestras para micosis
superficiales

18. 1.Toma de muestras para micosis
superficiales

19. CUERO CABELLUDO O
ÁREAS PILOSAS
PIEDRA BLANCA
Nódulos blancos o blanco-
amarillentos, blandos, que
rodean el pelo de la región
axilar, facial, genital o del
cuero cabelludo.
Barba y bigote.
PIEDRA NEGRA
Nódulos oscuros, duros, de
aspecto pétreo, que rodean
el tallo del pelo del cuero
cabelludo o más raramente
el vello púbico o axilar.
TIÑA CAPITIS
Lesiones escamosas,
eritematosas, con pérdida
parcial del pelo del cuero
cabelludo, con o sin
supuración y prurito
o lesiones elevadas,
fluctuantes y supurativas
(Querion) con pérdida de
cabello.
1.Toma de muestras para micosis
superficiales

21. 1.Toma de muestras: Materiales

22. Métodos de toma de muestras para micosis
superficiales
Cinta adhesiva transparente

23. Raspado
Métodos de toma de muestras para micosis
superficiales

24. Depilación
Métodos de toma de muestras para micosis
superficiales

25. 1.Toma de muestras: ¿Cómo?

26. 1.Toma de muestras: ¿Cómo?

27. • SANGRE.
•FLUIDOS CORPORALES ESTERILES: L.C.R., L.
PERITONEAL, LIQUIDO PERICARDICO Y
LIQUIDO SINOVIAL, HUMOR VITREO.
•RASPADOS DE OJO EXTERNO.
1.Toma de muestras:
MICOSIS SISTÉMICAS
ELECCIÓNDE LA
MUESTRA
SÍNDROME DEL
PACIENTE
PULMONAR
SANGRE ESTUDIO SEROLÓGICO
ESPUTO
INDUCIDO, ASPIRADO,
LAVADO
MUCOCUTÁNEO
RASPADO DE LA
LESIÓN
EXUDADO
PUS
BIOPSIA DE TEJIDOS
MENINGOENCEFÁLICO LCR
SÉPTICO HEMOCUTLIVOS
LOCALIZACIÓNDE LA
AFECCION
SITIOS MÁS
ACCESIBLES

29. 1.Toma de muestras: Abscesos
Abscesos cerrados
• Punción
• Recipiente estéril
• Envío inmediato y refrigerado
Abscesos fistulizados
• Drenar el pus
• Recipiente estéril en el borde de la lesión.
• Envío inmediato y refrigerado
ASPIRADO DE ABSCESO CEREBRAL Y ÓRGANOS
INTERNOS
• Cirugía
• Recipiente estéril
• Agregar 0.5 a 1 ml de SF si el material es escaso.

30. 1.Toma de muestras: Biopsias
Bp. piel (Bp.punch 3-4
mm)
Bp. transbronquial
Bp. material óseo
Bp. esofágica (cepillado
esofágico para
Esofagitis Candidiásica)

31. Consideraciones: Biopsias
CONSERVACIÓN
• 2 frascos
• Solución salina
estéril para
estudio
micológico.
• Formol 10%
para
Histopatología
PROCESAMIENTO
• De inmediato
• Refrigeración 2-
4 horas.

32. 1.Toma de muestras: Catéteres y material
protésico
C. intravasculares
C.Diálisis peritoneal
Infecciones asociadas a catéter tomar tbien otras muestras
• Hemocultivos
• Cultivo de piel
• Cultivo de flebitis
• Líquido de infusión
• Conexión del catéter con el sistema de infusión.

33. 1.Toma de muestras: Esputo y secreciones
respiratorias
ESPUTO
• Tres muestras
seriadas
• Días sucesivos
• Envío inmediato
• No muestra
nasal ni salival.
• Esputo
expectorado
• Esputo inducido
Secreciones
bronquiales
• Lavado
broncoalveolar
• Aspirado
bronquial
• Cepillado
bronquial no
recomendado
Punción Pleural
Procesar inmediatamente o en su defecto refrigerar hasta
6 horas.

35. 1.Toma de muestras: Liquido cefalorraquídeo
• Max.24 horas
No refrigerar
• L4-L5
• Vol min 5 ml
Punción lumbar

36. 1.Toma de muestras: Médula ósea
Heparina es el anticoagulante
Tubo estéril
Refrigerado

37. 1.Toma de muestras:
Tejidos
• Cirugía
• Bp.percutánea
• Autopsia
Tejidos fijados
• Formol, parafina
• Temperatura ambiente

38. 1.Toma de muestras: Orina
Punción suprapúbica
Por cateterización

39. Recolección
adecuada
Higiene
adecuada
Frasco estéril
Chorro
medio
matinal
1.Toma de muestras: Orina

40. Toma de muestras de sangre
HEMOCULTIVO
Medidas de asepsia
ADULTOS
2 a 3 muestras 8 -9 ml
diferentes punciones
separadas por 30 min
a 1 hora.
NIÑOS 1-5 ml
LACTANTES 1-2 ml
NEONATOS 0.5-1 ml
Inocular
inmediatamente

41. Macroscópicamente: selección apropiada porción.
Microscópicamente: alerta a médico de posible agente y
al tecnólogo para usar técnicas de inoculación y medios
apropiados.
Especimenes no dermatológicos.
2. Examen de los especímenes