Revisión sobre la prevención y tratamiento de las infecciones relacionadas con catéter central periférica

1. BACTERIEMIA RELACIONADA CON CATÉTER
Paqui Massó Ferrer
6/03/2018
Hospital General
Universitario Alicante

2. EPIDEMIOLOGÍA
• 1ª causa de bacteriemia intrahospitalaria.
• 3ª causa infección nosocomial (Unidades de
críticos ) tras Neumonia e IIA.
• Mortalidad atribuible 12- 25%.

3. FACTORES DE RIESGO
• DEPENDIENTES DEL PACIENTE:
– ENFERMEDAD CRONICA
– TRASPLANTE MÉDULA OSEA
– NEUTROPENIA
– MALNUTRICION
– NUTRICION PARENTERAL
– EDADES EXTREMAS
– QUEMADOS, PERDIDA INTEGRIDAD CUTANEA
• DEPENDIENTES DEL CATÉTER:
– CVC VS cateter periférico (< 0.2%)
– LOCALIZACIÓN DEL CATETER (FEMORAL>YUGULAR>SUBCLAVIA)
– DURACIÓN
– MATERIAL
– CONDICIONES DE INSERCIÓN
– USO (NPT, HEMODIALISIS)
– CUIDADOS
– - OTROS: TROMBOSIS CATÉTER, MANIPULACIÓN CATETER, FOCO SEPTICO DE OTRA
LOCALIZACIÓN.

4. PATOGENIA

6. ETIOLOGÍA
• Estafilococos coagulasa negativos (S.
epidermidis). 31%
• S. Aureus 20%
• Cándida spp. 9%
• Bacilos gram negativos (E.Coli, Klebsiella spp,
Pseudomona spp, Enterobacter spp, Serratia sp, Acinetobacter
baumanni)
– Neutropénicos, inmunodeprimidos,
c.femorales, infusiones contaminadas.

7. DIAGNÓSTICO
Sospecha clínica
+
Datos microbiológicos

8. ¿QUÉ PEDIMOS?

9. .• Hemocultivos x2/3
– Punción periférica (frasco aerobio y anaerobio)
– Dos o tres luces diferentes CVC (desechar los
primeros 10 ml)
– Crecimiento diferencial
• UFC cvc 3-5 veces>sangre periferica.
• Diferencia de al menos 2 horas entre el
crecimiento cvc y las sangre periferica.
• Cultivo punta catéter
– No rutinario
– 5 cm distales
– > 15 UFC métodos semicuantitativos (Maki)
– > 100 UFC métodos cuantitativos

10. DIAGNÓSTICO CERTEZA
Cultivo punta catéter +
+
≥ 1 hemocultivo positivo
sangre periférica

11. DIAGNÓSTICO SIN RETIRADA CVC
• Cultivos piel, exudado purulento,
conexiones. Tinción GRAM.
• Crecimiento diferencial hemocultivos
(catéter – vía periférica).(AII)
– UFC/ml 3-5 veces > CVC-sangre periférica
– Crecimiento mas rápido CVC- sangre
periférica. (AII)

12. ¿ CUÁNDO PUEDO
DEJAR EL CATÉTER?

13. • NO HAY EVIDENCIA RETIRADA
SISTEMATICA CVC .
• HEMODINÁMICAMENTE ESTABLES, SIN
INFECCION DOCUMENTADA.
• NO MATERIAL PROTÉSICO
ENDOVASCULAR.

14. CAMBIO A TRAVÉS DE GUÍA
–No sepsis.
–Riesgo de complicaciones de
carácter mecánico o sangrado
durante la inserción.
–Estudios no controlados, con
muestras pequeñas.

15. ¿ CUÁNDO DEBO
RETIRARLO?

16. INDICACIONES RETIRADA DE CATÉTER
• Shock séptico.
• Endocarditis o evidencia de infección metastásica.
• Tromboflebitis supurada.
• Persistencia de bacteriemia tras 72 horas de tto
antibiotico correcto.
• Infecciones por S.Aureus, enterococo, bacilos gram
negativos, hongos y micobacterias.
• Microorganismos poco virulentos pero difíciles de
erradicar (Bacillus spp, Micrococcus spp,
Propionibacterium) si se descarta contaminación.

17. COMPLICACIONES
• TROMBOFLEBITIS SUPURADA

18. • METÁSTASIS SÉPTICAS PULMONARES
• ENDOCARDITIS
• OSTEOMIELITIS

19. TRATAMIENTO EMPÍRICO
• NO INDICADO:
–Punta catéter positiva sin signos
clínicos de infección.
–Hemocultivos cvc positivos y
negativos en sangre periférica.
–Flebitis en ausencia de infección.

20. TRATAMIENTO EMPÍRICO
• BACILOS GRAM POSITIVOS
– Vancomicina (15 mgr/Kg cda 12 h)
– Daptomicina (≥ 6 mgr/Kg)
• Alta prevalencia SAMR, CMI > 2 ug/ml
– Linezolid
• Insuficiencia renal
• Imposibilidad acceso iv
• Metástasis sépticas pulmonares
– Otros: tedizolid, ceftarolina

21. • BACILOS GRAM NEGATIVOS
– Carbapenemes
– Cefalosporinas 4ª generación (cefepime)
– Betalactámicos/inhibidores
betalactamasas ± Aminoglucósidos
• CÁNDIDA
– Equinocandinas:
• Tratamiento 3 meses previos con azoles
• Cándida Krusei o glabrata
• Inestabilidad hemodinámica

22. • INFECCIÓN
COMPLICADA
– 4-6 semanas
– 6-8 semanas
(Osteomielitis)
• INFECCIÓN NO
COMPLICADA
– S. Coagulasa
negativos: 5-7 días +
retirada catéter.
– S. Aureus/S.
Lugdunensis: 14 días.
• ECOCARDIOGRAFIA
TRANSESOFÁFICA.
– Enterococo y BGN: 14
días
– Cándida spp. 14 días
tras el primer cultivo
negativo

23. PREVENCIÓN
• Lavado manos + técnicas asépticas durante la
inserción.
• Elección sitio apropiado.
• Cuidado postinserción:
– Lavados clorhexidina > 0.5%
– Apósitos transparentes transpirables
– Disminuir manipulación
– Nº llaves conectadas
• Retirada precoz.
• No se recomienda recambio sistemático.
• Check list (Bacteriemia zero).

25. • Complicación grave. Mortalidad elevada.
• Principales implicados: S. coagulasa negativos,
S.Aureus, BGN, Cándida.
• Diagnóstico certeza
• Crecimiento diferencial en casos de no retirada.
• Tratamiento empírico después extracción de
hemocultivos.
• Prevención

27. Synger, M et al. The Third
International Consensus
Definitions for Sepsis and Septic
Shock. JAMA, 2016; 315 (8): 801-
810

29. SEPSIS:
–Disfunción grave de órganos debida
a respuesta anormal del organismo a
la infección. Mortalidad hospitalaria
> 10%.
• qSofa≥ 2 (pacientes
hospitalizados fuera Ucríticos).
• SOFA ≥2 (pacientes en Ucríticos)

32. Shock séptico:
– Compromiso hemodinámico debido a
infección y acompañado de
hipoperfusión, de suficiente entidad
como para aumentar la mortalidad
debida a sepsis.
– Hipoperfusión persistente que requiere
de vasopresores para PAM ≥ 65 mmHg.
– Hiperlactacidemia > 2 mmol/L, a pesar
de resucitación adecuada con fluidos.