2. • DRA. ARLENA OSORIO PÉREZ
• ESPECIALISTA EN MEDICINA DE URGENCIAS
• CERTIFICADA POR EL CONSEJO MEXICANO DE
URGENCIAS
• UABJO/UQROO
• HGR 17 IMSS
• ROTACIONES: IMSS LA RAZA, CMN SIGLO XXI,
MAGADALENA DE LAS SALINAS, CMNO, HGR 46,
HOSPITAL CIVIL GUADALAJARA.
• DIPLOMADO EN URGENCIAS PEDIATRICAS
• DIPLOMADO ECOGRAFIA CRITICA
• ACTUALMENTE CURSANDO EL DIPLOMADO DE CUIDADOS
CRITICOS Y TERAPIA INTENSIVA
• ADSCRITA AL HGZ# IMSS OAXACA, AREA DE URGENCIAS.
• arlenaosorioperez@gmail.com
3. EVALUACION
PRIMER PARCIAL SEGUNDO
PARCIAL
TERCER PARCIAL ORDINARIO
TEMA 1,2,3,4 TEMA 5, 6,7 TEMA 8,9,10 PROMEDIO
MINIMO DE 7
EXAMEN
ESCRITO
EXAMEN 60% EXAMEN 60% EXAMEN 60%
EXPOSICION 20% EXPOSICION
20%
EXPOSICION 20%
TAREAS 10% TAREAS
10%
TAREAS 10%
PARTICIPACION
5%
PARTICIPACION
5%
PARTICIPACION 5%
ASISTENCIA 5% ASISTENCIA 5% ASISTENCIA 5%
100% 100% 100%
6. DEFINICION.
Estudio de los tejidos del cuerpo y de
las células que los componen.
También llamada anatomía
microscópica.
Estudio científico de las estructuras
microscópicas de los tejidos y los
órganos del cuerpo.
Incluye aspectos biología molecular y
celular
7. Obtención de la muestra.
• Mediante la biopsia: (del griego bios = vida y opsis
= visión), consiste en la toma de un fragmento de
tejido u órgano de un ser vivo.
• Puede ser obtenida por biopsia:
Incisional
Excisional
Sacabocados
Punción y absorción
Raspado
Trepanación
8. Microscopia optica
• Fijación
Detiene el metabolismo celular
Detener la degradación enzimática
Destrucción de patógenos
Endurecer el tejido
El fijador mas habitual es la
formalina(formadelhído al 37%)
• Solución de Bouin
Crean enlaces cruzados en proteínas,
preservando una imagen similar al tejido
celular vivo
9. Deshidratacion y
aclarado
• Baños con alcohol al 50% y
posterior al 100%
• Eliminan el agua del tejido
• Posteriormente se aplica
Xileno
o hace que el tejido se vuelva
transparente
10. Inclusion.
• Tejidos se incluyen en medio adecuado.
• El medio mas habitual es la parafina
fundida
• Posteriormente se cortan en cortes finos a
través del microtomo.
• En microscopia óptica el corte de 5 a 10
micrómetros.
12. Montaje.
• En microscopia convencional, los
cortes se montan:
• Portaobjeto de vidrio
• Medio de montaje.
o Solución que endure y mantiene la
muestra unida al vidrio.
o Se utilizan resinas sintéticas
derivadas del tolueno, bálsamo de
Canada
15. HISTOQUIMICA
Método de tinción que
identifica macromoléculas
intracelulares y
extracelulares
Se basan en actividad
enzimática y reactividad
química
Utilizada en muestras
congeladas
Acido periódico de schiff
Forma precipitado morada
en moléculas de
glucógeno e hidratos de
carbono.
17. DIRECTA. Anticuerpo que se dirige a una
macromolecula
INDIRECTA. Anticuerpo secundario
marcado regularmente con fluorescencia
contra el anticuerpo primario no unido
19. HIBRIDACION
• Método donde se localiza ARN
mensajero (ARNm) o ADN.
• Hibridación: capacidad de
moléculas monocatenarias de
ARN O ADN para interactuar
con secuencias
complementarias.
23. Microscopia de
expansión.
• Mejora la microscopia óptica a través
de método de expansión de muestra.
• A través de polímero expansibles
• Hidrogel.
Técnica
Fijación- anclaje- gelificación -
homogenización mecánica- expansión.
24. Método.
• Fijación. Misma técnica para microscopia óptica.
• Anclaje. Sonda molecular(anticuerpos con tinción
de fluoresceína, proteínas fluorescentes).
• Gelificación. Muestra se infiltra monómeros de gel
(acrilato de sodio), se polimerizan dentro de las
células los cuales se anclan moléculas celulares
• Homogenización mecánica. rompe la célula, a
través de desnaturalización de moléculas
estructurales.
• Expansión. Se agrega un solvente(agua) la
muestra se expande mas de 100 veces su volumen.