Este documento presenta una introducción a la histología y las técnicas histológicas básicas. Explica que la histología estudia los tejidos a nivel microscópico, incluyendo las células, órganos y sistemas. Describe los componentes de los tejidos, los pasos para preparar muestras para el microscopio, diferentes técnicas como tinción e inmunocitoquímica, y diferentes tipos de microscopía como electrónica. Finalmente, presenta diferentes tipos de epitelios y sus caracter

1. INTRODUCCION A LA
HISTOLOGIA
Y
TECNICAS HISTOLOGICAS
BASICAS

2. HISTOLOGIA
La histología es la parte de la Biología que
se encarga del estudio de los tejidos. En su
aspecto mas amplio. El termino histología
se utiliza como si fuera sinónimo de
anatomía microscópica del tejido, porque
su material abarca no solo a la estructura
microscópica del tejido, sino también la de
las células, los órganos y los sistemas
orgánicos. La palabra deriva del griego
histos que significa “tejido”.

3. TEJIDO
Es una colección funcional de células y
material intercelular asociado, que se
especializa en llevar a cabo una función
especifica. Es también un conjunto de
células que poseen características
morfológicas comunes y un mismo
origen.

4. COMPONENTES
1.Células.
2.Sustancia intercelular
o intersticial

5. PREPARACION DE LOS TEJIDOS:
Los pasos necesario para la preparación de
tejidos para microscopia de luz incluyen:
1. Obtención de la muestra.
2. Fijación.
3. Deshidratación y aclaramiento.
4. Inclusión.
5. Corte.
6. Coloración.
7. Montaje.

6. 1. Obtención de la muestra: La muestra
biológica es una parte o porción del ser vivo
que es tomada para su estudio. La muestra
puede ser liquida o sólida.

7. 2. Fijación:
Es un método para la preservación de la
morfología y la composición química de las
células y los tejidos. Consiste en producir la
muerte de las células, de manera tal, que sus
estructuras se conserven con un mínimo de
modificaciones. Asimismo, algunos métodos
tratan de conservar intacta su composición
química. El fijador más utilizado es el formol al
10% y el fijador de Bouin

8. 3. Deshidratación y aclaramiento: Debido a
que en gran parte del tejido esta constituida
por agua, se aplica una serie gradual de
baños de alcohol iniciando con alcohol de 50%
y alcanzando de manera paulatina el alcohol
al 100% para eliminar el agua.
A continuación, el tejido se trata con xileno
una sustancia química que es miscible con
parafina fundida. Este proceso se conoce
como aclaramiento, ya que el tejido se torna
transparente en xileno.

9. 4. Inclusión: Con objeto de distinguir entre si las
células superpuestas en un tejido y la matriz
extracelular, el histólogo debe incluir los
tejidos en un medio apropiado y a
continuación seccionarlos en cortes delgados.
Para la microscopía de luz, el medio habitual
de inclusión es la parafina. Se coloca el tejido
en un recipiente adecuado con parafina
fundida hasta que se infiltra por completo.
Una vez que se impregna el tejido con
parafina, se coloca en un receptáculo pequeño
recubierto con parafina fundida y se deja
endurecer para formar un bloque de parafina
que incluya al tejido.

10. 5. Corte:
Una vez que se rebajan los bloques de tejido
para eliminar el material de inclusión
redundante, se montan para seccionarlo. Esta
labor se lleva a cabo mediante un
micrótomo, un aparato equipado con una hoja
y un brazo que desciende en el bloque de
tejido en incrementos específicos iguales.
Para la microscopia de luz, el grosor de cada
corte fluctúa entre 5 y 10 um.

11. 6. Coloración: Los cortes de parafina se montan
(colocan) en portaobjetos de vidrio y a
continuación se tiñen mediante colorantes
hidrosolubles que permiten diferenciar los
diversos componentes celulares.
En consecuencia, primero es necesario
eliminar la parafina del corte, después de lo
cual se rehidrata y tiñe el tejido. Una vez
teñido, se deshidrata el corte de nueva cuenta
de tal manera que pueda fijarse de modo
permanente el cubreobjeto con un medio
adecuado para el montaje.

12. 7. Montaje:
El montaje se adhiere con adhesivo
transparente: el bálsamo de Canadá, lo que
permite conseguir el montaje definitivo y
permanente. Quedando la muestra de esta
manera, lista para su observación en el
microscopio.

13. REACTIVO RESULTADO
HEMATOXILINA
AZUL: Núcleo; regiones acidas del citoplasma; matriz
de cartílago.
EOSINA
ROSA: Regiones básicas del citoplasma, fibras de
colágeno.
TRICRÓMICA DE MASSON
AZUL OSCURO: Núcleo; ROJO: musculo, queratina y
citoplasma.
AZUL CLARO: Mucinógeno, colágeno.
ORCEÍNA PARDO: Fibras elásticas.
WEIGERT AZUL: Fibras elásticas
ARGÉNTICA NEGRO: Fibras reticulares.
HEMATOXILINA FÉRRICA NEGRO: Estriación de musculo, núcleos, eritrocitos.
ACIDO PERYODICO DE
SCHIFF
MAGENTA: Moléculas ricas en glucógeno y
carbohidratos.
WRIGHT Y GIEMSA
Se utiliza para tinciones diferenciales de células
hemáticas.
ROSA: Eritrocitos, gránulos de eosinófilos.
PURPURA: Núcleos de leucocitos, gránulos basófilas.
AZUL: Citoplasma de monocitos y linfocitos

20. PROCEDIMIENTOS AVANZADOS DE
OBSERVACION

21. HISTOQUIMICA:
La histoquímica es un método de tinción de
tejidos que proporciona información sobre
la presencia y localización de
macromoléculas intracelulares y
extracelulares.
Estos métodos aprovechan la actividad
enzimática, reactividad química y otros
factores fisicoquímicos relacionados con el
elemento en cuestión.

22. HISTOQUIMICA:
Las reacciones de interés se tornan
evidentes mediante la formación de un
precipitado insoluble que toma cierto color.
Con frecuencia, la histoquímica se efectúa
en tejidos congelados y puede aplicarse
tanto en la microscopia de luz como en la
electrónica.
En una reacción histoquímica se utiliza el
reactivo PAS, que forma un precipitado de
color magenta con moléculas ricas en
glucógeno y carbohidratos.

23. INMUNOCITOQUIMICA:
Aunque los procedimientos histoquímicos
permiten ubicar relativamente bien ciertas
enzimas y macromoléculas en células y
tejidos, es posible obtener una localización
mas exacta con la inmunocitoquímica.
Este procedimiento exige desarrollar un
anticuerpo contra la macromolécula
particular a localizar y marcas el anticuerpo
con un colorante fluorescente (fluoresceína
o rodamina.

26. AUTORRADIOGRAFIA:
Es un método en el que se incorporan
isótopos radiactivos en
macromoléculas, que a continuación se
observan con el uso de una película de
emulsión superpuesta.

28. MICROSCOPIA ELECTRONICA:
El uso de electrones como fuente de luz en
la microscopia electrónica permite lograr
una amplificación y resolución mucho
mayores que las obtenidas con la
microscopia de luz.

29. MICROSCOPIA ELECTRONICA DE
TRANSMISION:
En la microscopía electrónica de
transmisión se utilizan cortes mucho mas
delgados, en comparación con los de la
microscopia de luz, para teñir los tejidos y
se requieren técnicas de precipitado de
metales pesados en lugar de colorantes
hidrosolubles.

30. MICROSCOPIA ELECTRONICA DE
TRANSMISION:
La preparación de especímenes incluye las
mismas etapas básicas que las de la
microscopia de luz. Se han desarrollado
fijadores especiales, ya que el poder de
resolución mayor del microscopio
electrónico requiere enlaces cruzados de
proteínas mas finos y específicos. Estos
fijadores de
glutaraldeido, paraformaldehido, tetroxido
de osmio y permanganato de potasio

32. MICROSCOPIA ELECTRONICA DE
BARRIDO:
La microscopia electrónica de barrido
proporciona una imagen tridimensional del
espécimen.
Por lo general, el objeto que se observa se
prepara en una forma especial que permite
depositar en la superficie del espécimen
una capa delgada de un metal
pesado, como oro o paladio.

34. ORGANOLOGÍA
Msc. Blgo. George Vasquez B.

35. Cavidad abdominal (pared)

38. Tubo digestivo: intestino delgado

39. Membranas
Serosas
1.Pleura.
2.Peritoneo.
3.Pericardio.

41. Tubo urinario (uretra)

42. Epitelio de transición (polimorfo)

43. Tubo respiratorio: tráquea

45. Tubo reproductor: útero (matriz)

46. Tubo reproductor: útero (matriz)

47. Tubo cardiovascular: capilares

48. Tubo cardiovascular: arterias

53. HISTOLOGÍA

55. 3ra semana de desarrollo embrionario

56. Membranas
Germinativas
Tejido
Epitelial
Tejido
Conectivo
(tejido cartilaginoso,
óseo, sanguíneo, etc)
Tejido
Nervioso
Tejido
Muscular
Ectodermo X X
Mesodermo X X X
Endodermo X

57. POTENCIACIÓN Y DIFERENCIACIÓN
Potencia: Capacidad de cumplir muchas
funciones.
Diferenciación: Grado de especialización.
Tejidos
totipotenciales
Epitelial
Conectivo
Tejidos
diferenciados
Muscular
Nervioso

58. TEJIDO EPITELIAL
• El tejido más simple
• Células poco diferenciadas
• Origen múltiple.

59. Características
• Escasa o nula sustancia intercelular.
• Avascular (excepto: retina y órgano de Corti)
• Células poliédricas (planas, cúbica, cilíndricas, esféricas, etc)
• Uniones celulares: -Zonas de oclusión (Z.O).- Zonas de
adherencia (Z.A) -Desmosomas.
• Nutrición: por difusión, (del tejido conectivo) imbibición.
• Borde externo: glucocálix ( reconocimiento celular)
• Membrana basal (glucoproteínas y fibras reticulares).
• Exfoliación: descamación de células.
• Renovación (se reproducen constantemente)
• Terminaciones nerviosas libres de tipo sensitivo y vegetativo.
• Cubre superficies, reviste cavidades o puede formar
glándulas.

61. Origen de los epitelios
• Ectodermo:
Piel (epidermis), mucosas (oral, nasal, vaginal y anal);
médula
suprarrenal, neurohipófisis, retina, epífisis, oído
medio, glándulas
lacrimales, sudoríparas, mamarias, parótidas y
sebáceas.
• Mesodermo:
Endotelios (cardiaco y vascular), glomérulo
nefronal, uréter, pelvis renal, mesotelios
(peritoneo, pleuras, pericardio), útero, ovarios, trompa
s de Falopio, testículos.
• Endodermo:
Epitelio respiratorio y digestivo, vejiga

62. Funciones
• Protectora: epitelio de revestimiento y cubierta
• Germinativa: Corteza del ovario, túbos seminíferos (maduran en
gametos).
• Sensorial: neuronas modificadas (reciben estímulos) Ejm: retina,
epitelio olfatorio, gustativo y auditivo.
• Absorción: tubo digestivo, túbulos renales.
• Secreción: glándulas (liberan moco, hormonas, enzimas, etc.)
• Difusión: Pasaje de sustancias o gases. Ejm: Alveolos pulmonares y
nefrón.
• Contráctil: Ejm: células mioepiteliales (eliminación de la secreción
de adenómero) en las glándulas sudoríparas, mamarias y salivales.
• Excreción: Ejm: orina, sudor.
• Lubricación: superficies expuestas al roce: Ejm: las serosas y
mucosas
• Anti-fricción visceral: las vísceras que están en constante
movimiento. Membranas serosas (con mesotelios).

63. Clasificación
Epitelios de revestimiento y cubierta:
Tapizan.
Epitelios glandulares: Secretan
I.II.
1
Epitelios de revestimiento y cubierta:
Tapizan, cubren.
2
Epitelios glandulares: Secretan
(fabrican).

64. I: Epitelios simples o monoestratificados
°Alveolos °Endotelios °Mesotelios
°Endocardio °Nefrón (cápsula de Bowman,
rama delgada: asa de Henle). °Córnea °Oído
medio °Epitelio mesenquimal” (espacios
meningeos). °Espacios perilinfáticos (oído
interno). °Cámara anterior y posterior del globo
ocular.

66. Microvellodiades
Simple Cilíndrico con microvellosidades
Cilíndrico con chapa estriada:
Poseen microvellosidades y células productoras de moco (caliciformes).

67. Epitelio Simple Cilíndrico (no modificado)
- Estómago, intestino grueso
- endocérvix
- vesícula biliar
- conductos excretores (glándulas exocrinas).

68. Simple cilíndrico ciliado

71. Epitelio simple cúbico
– No modificado:
Ejm: ovarios (superficie), testículos, retina (epitelio
pigmentario), cristalino (epitelio subcapsular externo, no hay interno),
nefrones (rama gruesa del asa, tubo distal), etc.
– Modificado: con microvellosidades.
Ejm: nefrones (túbulos contorneados proximales), folículos de la
tiroides, plexos coroideos (elaboran LCR), etc
• Nota: Las microvellosidades se llaman en conjunto “ribete en cepillo”
o “chapa estriada”

72. Epitelio Pseudo-estratificado Cilíndrico Ciliado

73. Pseudo-estratificado cilíndrico no
modificado

74. Semen: mezcla de la secreción de la próstata, vesículas
seminales, etc.

76. pseudo-estratificado cilíndrico con
estereocilios

77. II: epitelios estratificados

79. Epitelio embrionario
esófago fetal

80. conjuntiva ocular
uretra masculina
conductos excretores (glándulas exocrinas)

82. Transición de epitelios (cambio de epitelio)

85. GLÁNDULA
MIXTA (anficrina)
PRODUCTO
EXOCRINO
PRODUCTO
ENDOCRINO
Páncreas Jugo
pancreático
Glucagón Insulina
Somatomedina
Hígado Bilis Somatomedina C
Riñones Orina Eritropoyetina

86. Por el número de células: glándulas unicelulares

87. Por la secreción que elaboran
1. Serosas: enzimas. Ejemplo:
parótidas, lagrimales, páncreas
2. Mucosas: glicoproteína llamada mucina, que al
combinarse con el agua forma el mucus (moco). Ejem:
Brunner, Cowper, Bartholin, sublinguales, células
caliciformes
3. Seromucosas (mixtas): ejemplo: submaxilares

88. Por la forma de eliminar la secreción

89. Por la forma del Adenomero
1. TUBULARES:
Ejemplo: sudoríparas, brunner, lieberkhun, endometriales
2. ALVEOLARES O ACINOSAS:
Ejemplo: páncreas
3. TUBULO – ALVEOLARES:
Mamarias, lagrimales, cowper, parótidas, bowman

90. Por su conducto excretor
SIMPLES:
ejem: sudoríparas, sebáceas, gástricas, lieberkhun, endometriales
COMPUESTAS:
Ejemplo: mamarias, páncreas, brunner

92. Glándulas endocrinas
(sistema endocrino)

93. Estructura de una glándula
• Parénquima: epitelial (unidades secretoras y
conductos)
• Estroma: conectiva, sostiene al parénquima y
proporciona capilares que entran en contacto
con las unidades secretoras

94. Glándulas exocrinas
• Secreción externa: vierten sus productos en el
exterior del cuerpo o en el interior de un órgano
tubular.
• Secreciones: sudor, saliva, sebo, leche, etc.
• Acino o adenómero (adeno: glándula, mero:
unidad): es la porción productora o secretora.
• Conducto excretor: es la porción excretora
• Algunas, células mioepiteliales, expulsión de
secreciones mediante contraccíón. Ejm: glándulas
mamarias, lacrimales, salivales, sudoríparas
porción exocrina del páncreas, etc.