Este documento resume la etiología, epidemiología, ciclo de vida, manifestaciones clínicas, diagnóstico y tratamiento de la malaria. La malaria es causada por parásitos del género Plasmodium, incluyendo P. falciparum, P. vivax, P. malariae y P. ovale. Se transmite a través de la picadura de mosquitos hembras del género Anopheles. Afecta a 300-500 millones de personas al año y causa 1.1-1.7 millones de muertes. El diagnóst

1. Keyla S. Navarro Ramos MALARIA

2. AGENTE ETIOLÓGICO ORDEN : Eucoccidiida FAMILIA : Plamodiidae GENERO : P l asmodium

3. ESPECIES INFECTANTES PARA EL HOMBRE P. Vivax Falciparum P. Malariae P. Ovale Diferenciación de especies p or preparaciones coloreadas Infectan al hombre con mayor frecuencia

4. EPIDEMIOLOGIA Incidencia de 300 a 500 millones de casos clínicos al año. N° de muertes de 1.1 a 1.7 millones al año. Un millón > 5 años. En colombia: 90.2% área malarica. P. vivax 63.3%. P. falciparum 36.3%. P. Malariae 0.025%. P.ovale 1 caso

5. FORMAS PARASITARIAS EN SANGRE CIRCULANTE Trofozoitos Esquizonte Merozoitos Gametocitos

6. TROFOZOITO Citoplasma: azul Parasitos jóvenes forma de anillo Parasitos adultos amebiode o en banda Núcleo o cromatina: rojo Masa unica compacta Granulación en er i trocitos P. Vivax – ovale : schuffner P. Falciparum : maurer P. Malariae: ziemann

7. ESQUIZONTES Dos ó mas masa s de cromatina Acumulos de merozoitos Roseta Pigmento malarico Eri trocitos Forma y tamaño Presencia ó ausencia de gránulos.

8. MEROZOITO Forma oval Miden 1.5 micras longitud por 1 micra diametro. Membrana posee dos capas.

9. GAMETOCITOS Libres o en todo el eritrocito Citoplasma Azul pigmento malárico Redondeados Cromatina Masa única Difusa

10. Ciclo esporogonico Reproduccion Sexual Mosquito Huesped definitivo Ciclo esquizogonico Reproduccion Asexual Hombre Huesped intermediario CICLO DE VIDA

11. CICLO ESPOROGONICO Hembra Anopheles

12. CICLO ESQUIZOGONICO Pentracion intercapilar de los esporozoitos a traves de la piel. Dos Etapas Etapa Pre – Eritrocitica Etapa Eritrocitica

13. ETAPA PRE – ERITROCITICA Esporozoitos hepatocitos Esquizonte tisular primario Merozoitos tisulares Invaden eritrocitos Numero merozoitos p. Malariae 2000 p. Vivax 10.000 p. Ovale 15.000 p. Falciparum 30.000

14. ETAPA ERITROCITICA Merozoitos eritrocitos trofozoitos hemozoina Divide cromatina esquizonte merozoitos Invaden nuevos eritrocitos Nuevo ciclo

15. Ciclo schizogónico Evolución Etapa pre-eritrocítica Etapa eritrocítica

16. TRANSMISIÓN Vectores Transfusión sanguinea Cóngenita Jeringas

17. PATOLOGIAS Alteracion de eritrocitos Alteraciones posteriores al daño eritrocitario. Alteraciones en los órganos

18. MANIFESTACIONES CLINICAS Depende de : Especie parasito Numero de parasito Estado inmuitario huesped. P. Incubacion: 7 –14 días Cuadro clinico : Escalofríos, fiebre, sudoración, leucopenia, anemia.

19. Malaria RECRUDESCENCIA Resistencia a antimalaricos 30 días - P. falciparum RECAIDA Persistencia (Hipnozoitos) 30 días . P. vivax - P malarie REINFECCIÓN Nueva infección

20. MALARIA P. FALCIPARUM Fiebre terciana maligna o perniciosa Mas severa P. Incubacion 11-14 dias Infeccion Aguda No Complicada Malaria Severa y Complicada

21. Malaria cerebral: mas frecuente Insuficiencia renal F. Bilosa hemoglobunurica Hemorragia Anema severa Ictericia y daño hepático Cambios de temperatura Hipoglucemia Sintomas gastrointestinales

22. MALARIA P. VIVAX y P. OVALE Fiebre terciana benigna P. Incubación: 5-15 días Tiende a ser cronica Escalofrios Fiebre alta Sudoracion Esplenomegalia

23. PALUDISMO POR P.malariae Fiebre cuartana Sintomatologia mas benigna, mas cronica. Recrudescencias despues de muchos años. P. De incubacion mas prolongado. Malaria cronica.

24. DIAGNOSTICO Se basa en la observación e identificación de parásitos plasmodium en muestras de sangre. Puede confundirse con otras enfermedades febriles: fiebre amarilla, tifoide, paratifoidea, acceso hepatico, hepatitis, fiebre recurrente, pielonefritis, brucelosis, tuberculosis, dengue, leishmaniasis visceral y procesos septicos. Confirmacion: hallazgo de los parásitos .

25. METODOS UTILIZADOS Gota gruesa Extendido de sangre periférica Pruebas de DX rapido PCR RX inmunologicas Examenes complementarios

26. INDICACIONES DE LA TOMA DE MUESTRA A todo paciente febril sospechoso por demanda de atención. A todo paciente remitido para confirmación del DX. A todo paciente con recaida.

27. TOMA DE MUESTRA Toma de datos completos del paciente Tomar muestra. Marcar 3 laminas, dos para gota gruesa y una para el extendido para sangre periférica.

28. GOTA GRUESA Con el borde de un cubreobjetos se extiende la gota de sangre con movimientos en N, para formar un cuadrado de 1 x 1 cm. Luego se coloca otra gota de sangre a una distancia de 0.5-1 cm de la otra. Se repite el procedimiento en otra lamina. Dejar secar a temp ambiente .

29. Importante : Se realiza gota gruesa seriada a todo paciente con fuerte evidencia epidemiologica de padecer malaria y con gota gruesa negativa inicial. A todo paciente que se ha automedicado. En casos complicados o con parasitemias altas (<50000 parasitos/uL), se realiza control de parasitemia cada 8 a 12 horas.

30. COLORACIÓN precoloración coloración Preservar células sanguíneas. inicio de deshemoglobinización Diferenciar estructuras parasitarias completación de la deshemoglobinización

31. Valoracion de la coloración de gota gruesa Macroscópica Se observa como un cuadrado continuo de color azul claro. Microscópica deshemoglobinización completa Plaquetas: rosadas Leucocitos: intensamente coloreados Granulaciones de schuffner y maurer Citoplasma y cromatina del parasito: intensamente coloreados.

33. RECUENTO PARASITARIO Recuento parasitario en gota gruesa: # de parásitos x 8000 leucocitos / ul = 100 leucocitos Parasitemias altas: 500 parásitos x 8000 leucocitos / ul = # de leucocitos contados # de parasitos/ul de sangre # de parasitos/ul de sangre

34. EXTENDIDO DE SANGRE PERIFERICA Con el borde de un cubreobjetos se extiende la gota de sangre con movimientos en N, para formar un cuadrado de 1 x 1 cm. Dejar secar a temp ambiente. Coloración.

35. Valoracion de la coloración de un extendido de sangre periférica Macroscópica pelicula fina y uniforme. No debe llegar a los bordes. Disminucion progresiva y tenue Microscópica Eritrocitos: neutra o violeta. Leucocitos: núcleo azul oscuro o violeta. Citoplasma: azul claro (linfocitos), gris (monocitos), rosado tenue (neutrofilos). Granulaciones: azul o rosado (neutrofilos), naranja (eosinofilos). Plaquetas: rosadas a violeta. Parasitos: citoplasma azul, cromatina roja intensa o violeta, granulaciones rosado o rojo.

36. Forma: Trofozoitos Forma: Schizonte Forma: Gametocito Plasmodium falciparum

37. Forma: Trofozoitos Forma: Schizonte Forma: Gametocito Plasmodium vivax

38. Forma: Trofozoitos Forma: Gametocito Forma: Schizonte Plasmodium ovale

39. Forma: Trofozoitos Forma: Schizonte Forma: Gametocito Plasmodium malariae

40. Recuento parásitario en extendido de sangre periferica. sangre # de parasitos x # de eritrocitos/uL de = 10000 eritrocitos # de parásitos x hematocrito x 100000 = 10000 eritrocitos # de parasitos/ul de sangre # de parasitos/ul de sangre

41. Cálculo de la parasitemia en porcentaje 10000 glóbulos rojos 20 trofozoitos 100 glóbulos rojos X Recuento semicuantitativo Informar especie de plasmodium que ocasiona la infección. Informar el numero aprox. de formas parasitarias encontrados en la gota gruesa. Rango de parásitos encontrados Equivalencia en cruces 1 – 10 en 100 campos microscópicos .....................................+ 11 – 100 en 100 campos microscópicos..................................++ 1 – 10 por campo microscópico...............................................+++ > 10 por campo microscópico................................................++++

42. PRUEBAS DE DX RAPIDO Inmunocromatografia

43. RX INMUNOLÓGICAS IFD ELISA FAST-ELISA HEMAGLUTINACIÓN INDIRECTA. EXAMENES COMPLEMENTARIOS HB ANEMIA HTO

44. COMPARACIÓN DE LOS MÉTODOS DE DIAGNÓSTICO MÉTO-DOS TIPOS DE TÉCNICA VENTAJAS INCONVENIEN-TES Extensión Fina Tinción de Giemsa Fácil realización Bajo coste Diferencia especies Cuantitativa No detecta parasitemias bajas Gota Gruesa Tinción de Giemsa Fácil realización Bajo costo Solo indica (+) Detecta parasitemias bajas No puede detectar la especie Kit Reacción antigeno-anticuerpo Fácil realización Rápida Alto costo No detecta la especie

45. INFORME DE RESULTADO Especie presente. Recuento parasitario. asexuadas P. falciparum recuento sexuadas En infecciones mixtas: Recuento de cada especie de manera independiente. Reportar especie predominante en 1° lugar y subordinada en 2° lugar Gota gruesa: termino hemopárasito o gota gruesa. Extendido: solo termino hemopárasito.

46. PREVENCION Y CONTROL Tratamiento y aislamiento del enfermo. Uso de mosquitero. Construcción, modificación y protección de las viviendas. Ordenamiento del medio ambiente. Control quimico. Control biológico. Cambio en el comportamiento humano .

47. TRATAMIENTO 1. ESQUIZONTICIDAS ERITROCITICOS: 4-aminoquinoleinas Hidroximetilquinoleinas Diaminopirimidinas Sulfonamidas 2. ESQUIZONTICIDAS TISULARES: 8-aminoquinoleinas

48. ¡¡¡ GRACIAS!!!

49. Nombre del paciente. Numero consecutivo. Fecha. Periodo epidemiológico. Identificación. En casos complicados o con parasitemias altas (<50000 parásitos/uL). Coger la hora de la toma de la muestra.

50. Se limpia el dedo índice o el del medio del paciente. Tomar la muestra de un área limpia . En niños se puede tomar del talón ó del lóbulo de la oreja Secar la zona Se punciona con una lanceta estéril desechable, en el borde lateral del dedo entre la yema y la uña.

51. Se limpia la 1° gota de sangre, se presiona el dedo y se coloca la siguiente gota a 1 cm de la identificación en la lámina.