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MALARIA
RUIZ COTRINA JORGE
MEDICO PATOLOGO CLINICO HNASS
• La malaria es una enfermedad causada por parásitos del género Plasmodium, siendo
cuatro las especies que pueden parasitar al hombre: Plasmodium falciparum,
Plasmodium vivax, Plasmodium ovale y Plasmodium malariae.
• En el Perú, la malaria es ocasionada por P. falciparum, P. vivax y, ocasionalmente,
por P. malariae. No se ha reportado infecciones por P. ovale.
• En el Perú, la malaria por P. falciparum es principalmente endémica en Loreto, Piura
y Tumbes ; en cambio, la malaria por P. vivax se distribuye en todo el país.
• Reservorio: El hombre infectado es el único reservorio conocido.
• Modo de transmisión: Se transmite a través de la picadura de una hembra del
mosquito del género Anopheles infectada con las formas de Plasmodium
infectantes para el hombre (esporozoitos).
• También se transmite de madre a feto a través de la placenta y por
transfusión sanguínea.
• La infección por una especie no protege de la infección de las demás.
• El período de incubación: 8 a 30 días según la especie de Plasmodio.
• El mosquito permanece infectante durante toda su vida (30 a 45 días, aproximadamente).
• El parásito puede permanecer infectante durante un mes en el contenido de las bolsas de los
bancos de sangre
• Luego de este período, los síntomas se presentan bruscamente con escalofríos intensos, fiebre y
sudoración profusa; estos se presentan como accesos intermitentes cada 48 ó 72 horas que
corresponden a la ruptura de los esquizontes, aunque también se pueden presentar todos los días
sin intermitencia.
• En el caso de P. falciparum los síntomas no son tan característicos durante los primeros días,
pudiendo confundirse con una infección viral con febrícula, escalofríos, dolor de huesos y dolor
de cabeza.
DIAGNÓSTICO DE LABORATORIO
• EXAMEN DE MUESTRAS DE
SANGRE PERIFÉRICA
• La toma de muestra se realiza
mediante la punción con una
lanceta estéril, normalmente en la
yema del dedo. Se recoge una gota
de sangre en un portaobjetos y con
otro se realiza la extensión en capa
fina.
DIAGNÓSTICO PARASITOLÓGICO
• GOTA GRUESA:
• Es una técnica de rutina y consiste en una muestra de una gota de sangre conformada por
numerosas capas en su mayoría de glóbulos rojos, los que son deshemoglobinizados
durante la coloración con giemsa.
• La gota gruesa permite analizar una mayor cantidad de sangre, facilitando la
detección de parasitemias bajas.
• FROTIS:
• Es una capa delgada, única de células sanguíneas, fijadas con metanol y coloreadas con
giemsa, que facilitan la observación de las características morfológicas de los parásitos
presentes en los glóbulos rojos.
LA TINCIÓN DE GIEMSA
• Es la técnica diagnóstica de
referencia.
• Este coloración sirve tanto para la
gota gruesa como para el frotis.
• Tiene buena sensibilidad (92-98%)
y especificidad (85-99%).
DIAGNÓSTICO INMUNOLÓGICO
• Abarca métodos inmunoserológicos que evalúan la inmunidad humoral y
celular del huésped.
• La metodología es suficientemente sensible y específica para detectar las
infecciones cuando la parasitemia es baja, además de ayudar a diferenciar
infecciones pasadas de la actual.
• Entre las técnicas que se encuentran para el inmunodiagnóstico de malaria
tenemos: inmunofluorescencia indirecta (IFI), ELISA, pruebas
inmunocromatográficas , hemaglutinación, radioinmunoensayo, etc.
DETECCIÓN DE ANTÍGENOS
PARASITARIOS
• Detección del HRP-2: La proteína-2 rica en histidina (HRP-2) se secreta
por P. falciparum a la sangre, lo que permite su detección mediante la
captura antigénica con anticuerpos específicos y técnicas de
inmunocromatrografía.
• Tienen una sensibilidad del 90-92% y una especificidad del 96-98%. Para P.
vivax son inferiores, del 75% y 95% respectivamente.
• Desventaja : no detectan parasitemias bajas.
TÉCNICAS MOLECULARES
• Se utiliza una técnica de PCR que permite la detección del DNA genómico
de las cuatro especies parasitarias.
• La amplificación por PCR permite incluso la detección de 3-4 parásitos/µ l
así como la determinación de infecciones mixtas.
• Al ser una técnica potencialmente cuantitativa, permite controlar la
eficacia del tratamiento, prediciendo las resistencias a los
antipalúdicos.
• Altísima sensibilidad y especificidad.

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Malaria TEORIA

  • 1. MALARIA RUIZ COTRINA JORGE MEDICO PATOLOGO CLINICO HNASS
  • 2. • La malaria es una enfermedad causada por parásitos del género Plasmodium, siendo cuatro las especies que pueden parasitar al hombre: Plasmodium falciparum, Plasmodium vivax, Plasmodium ovale y Plasmodium malariae. • En el Perú, la malaria es ocasionada por P. falciparum, P. vivax y, ocasionalmente, por P. malariae. No se ha reportado infecciones por P. ovale. • En el Perú, la malaria por P. falciparum es principalmente endémica en Loreto, Piura y Tumbes ; en cambio, la malaria por P. vivax se distribuye en todo el país.
  • 3. • Reservorio: El hombre infectado es el único reservorio conocido. • Modo de transmisión: Se transmite a través de la picadura de una hembra del mosquito del género Anopheles infectada con las formas de Plasmodium infectantes para el hombre (esporozoitos). • También se transmite de madre a feto a través de la placenta y por transfusión sanguínea. • La infección por una especie no protege de la infección de las demás.
  • 4. • El período de incubación: 8 a 30 días según la especie de Plasmodio. • El mosquito permanece infectante durante toda su vida (30 a 45 días, aproximadamente). • El parásito puede permanecer infectante durante un mes en el contenido de las bolsas de los bancos de sangre • Luego de este período, los síntomas se presentan bruscamente con escalofríos intensos, fiebre y sudoración profusa; estos se presentan como accesos intermitentes cada 48 ó 72 horas que corresponden a la ruptura de los esquizontes, aunque también se pueden presentar todos los días sin intermitencia. • En el caso de P. falciparum los síntomas no son tan característicos durante los primeros días, pudiendo confundirse con una infección viral con febrícula, escalofríos, dolor de huesos y dolor de cabeza.
  • 5.
  • 6. DIAGNÓSTICO DE LABORATORIO • EXAMEN DE MUESTRAS DE SANGRE PERIFÉRICA • La toma de muestra se realiza mediante la punción con una lanceta estéril, normalmente en la yema del dedo. Se recoge una gota de sangre en un portaobjetos y con otro se realiza la extensión en capa fina.
  • 7. DIAGNÓSTICO PARASITOLÓGICO • GOTA GRUESA: • Es una técnica de rutina y consiste en una muestra de una gota de sangre conformada por numerosas capas en su mayoría de glóbulos rojos, los que son deshemoglobinizados durante la coloración con giemsa. • La gota gruesa permite analizar una mayor cantidad de sangre, facilitando la detección de parasitemias bajas. • FROTIS: • Es una capa delgada, única de células sanguíneas, fijadas con metanol y coloreadas con giemsa, que facilitan la observación de las características morfológicas de los parásitos presentes en los glóbulos rojos.
  • 8. LA TINCIÓN DE GIEMSA • Es la técnica diagnóstica de referencia. • Este coloración sirve tanto para la gota gruesa como para el frotis. • Tiene buena sensibilidad (92-98%) y especificidad (85-99%).
  • 9. DIAGNÓSTICO INMUNOLÓGICO • Abarca métodos inmunoserológicos que evalúan la inmunidad humoral y celular del huésped. • La metodología es suficientemente sensible y específica para detectar las infecciones cuando la parasitemia es baja, además de ayudar a diferenciar infecciones pasadas de la actual. • Entre las técnicas que se encuentran para el inmunodiagnóstico de malaria tenemos: inmunofluorescencia indirecta (IFI), ELISA, pruebas inmunocromatográficas , hemaglutinación, radioinmunoensayo, etc.
  • 10. DETECCIÓN DE ANTÍGENOS PARASITARIOS • Detección del HRP-2: La proteína-2 rica en histidina (HRP-2) se secreta por P. falciparum a la sangre, lo que permite su detección mediante la captura antigénica con anticuerpos específicos y técnicas de inmunocromatrografía. • Tienen una sensibilidad del 90-92% y una especificidad del 96-98%. Para P. vivax son inferiores, del 75% y 95% respectivamente. • Desventaja : no detectan parasitemias bajas.
  • 11. TÉCNICAS MOLECULARES • Se utiliza una técnica de PCR que permite la detección del DNA genómico de las cuatro especies parasitarias. • La amplificación por PCR permite incluso la detección de 3-4 parásitos/µ l así como la determinación de infecciones mixtas. • Al ser una técnica potencialmente cuantitativa, permite controlar la eficacia del tratamiento, prediciendo las resistencias a los antipalúdicos. • Altísima sensibilidad y especificidad.