ONCOGENES
Dra. O. Graciela Scharovsky
Instituto de Genética Experimental
Facultad de Ciencias Médicas, U.N.R.
2006
La
transformación
maligna surge
de la
acumulación de
múltiples daños
en el genoma
1er. Impacto
2do. Impacto
3er. Impacto
Célula
Normal
Daño en
el ADN
Apoptosis
Reparación
Displasia
leve
Displasia
severa
Tumor
invasivo
Patogénesis del cáncer
Cambios en el genoma
de células somáticas
Activación de oncogenes
promotores del crecimiento
Inactivación de genes
supresores de tumores
Expresión de productos de genes alterados
y pérdida de productos génicos regulatorios
CÁNCER
Factores
genéticos
Factores ambientales:
Sustancias químicas,
radiaciones y virus.
Expansión clonal
Mutaciones adicionales
Heterogeneidad
ONCOGENES
Definición
 Genes capaces de inducir cáncer
 Cualquier gen que produce un fenotipo maligno
cuando se introduce en una célula normal
 Un gen íntimamente asociado con una enfermedad
maligna particular. Por ejemplo, un gen quimérico
formado por una translocación cromosómica.
ONCOGENES
Descubrimiento
 Retrovirus transformante RSV (Rous Sarcoma Virus)
Genes: gag, pol, env y src
 Bishop y Varmus (1977)
Secuencias homólogas en células eucariotas
normales libres de virus
Oncogenes virales
ó
v-onc
Proto-oncogenes
ó
c-onc
 Tumores producidos
por extractos acelulares
del sarcoma de Rous
(principios del siglo XX)
Peyton Rous
descubrió
el virus que
causa el
cáncer en los
pollos
Origen celular de los oncogenes
retrovirales
 Número y tamaño de los exones e intrones
 Los c-onc están ligados a los mismos genes
en distintas especies
 Inoculación de virus carentes de v-onc en
células eucariotas
 Todos los v-onc tienen homólogo celular, pero
no todos los c-onc tienen contraparte viral
c-ONC célula
ADN del
hospedador
v-ONC
•LTR-gag-pol-env-LTR
Retrovirus simple
Transducción retroviral de un oncogén
Estructura de un retrovirus
Oncogenes adenovirales
 Oncogenes de virus a ADN (SV40, virus del papiloma)
no tienen homología con los c-onc
 Forman parte del genoma viral necesario para
la replicación del virus
 La mayoría de las células infectadas con virus a
ADN muere, pero algunas sobreviven y son
transformadas
 Las proteínas codificadas por los oncogenes de estos
virus interactúan con proteínas del ciclo celular o
inactivan producto de genes supresores de tumores
Virus Producto génico Blanco celular
Adenovirus
Virus Polioma
SV40
Virus Papiloma
E1A
E1B
Antígeno T grande Rb, p53
Antígeno T mediano Src, PI3K
E7
E6
E5
Rb
p53
Rb
p53
receptor PDGF
Los virus a ADN apuntan a los
genes supresores de tumores
Mecanismos de activación de los proto-oncogenes
ADN
Proto-oncogén
Proteína
normal
CRECIMIENTO
NORMAL
Nuevo promotor
Translocación: el gen
se mueve a otro locus
bajo nuevos controles
Proteína normal
estimulante del
crecimiento,
en exceso
Amplificación génica: múltiples copias del gen
Mutación puntual dentro del gen
Oncogén
Proteína hiperactiva
o resistente a la
degradación
C
Á
N
C
E
R
Translocación cromosómica
myc
Ig
myc
Ig
8 14 8 14
Cromosomas
normales
Linfoma de
Burkitt
Linfoma de Burkitt
abl
bcr
9 22 9 22
Cromosomas
normales
LMC
bcr
abl
Leucemia mieloide crónica
ADN de cáncer de vejiga EJ
Procedencia de H-ras
Poder transformante
sobre NIH.3T3
1
2
3
4
5
6
ADN de placenta humana
ADNs recombinantes:
VAL GLI ALA VAL GLI
GTG GGC GCC GTC GGT
9 10 11 12 13
GTG GGC GCC GGC GGT
VAL GLI ALA GLI GLI
Secuencia
nucleotídica
Secuencia
aminoacídica
Secuenciación de la región
de ADN involucrada
en la transformación
Codón Nro.:
EJ
Placenta
+
+
+
+
-
-
-
-
Mutación
puntual
Amplificación génica
c-myc en neuroblastomas (300)
c-erbB-2/HER-2 en cáncer de mama (30)
Mutagénesis insercional
.
 El proceso activa el gen Wnt-1 y produce cáncer de mama en el
ratón infectado con el MMTV.
 Sitios de integración de MMTV observados en 19 tumores
diferentes (flechas).
 Las inserciones pueden activar la transcripción de Wnt-1
desde distancias de más de 10.000 pares de nucleótidos de
cada lado del gen.
 Este efecto se atribuye a una secuencia de ADN exacerbadora
potente que está presente en las repeticiones terminales del
genoma de MMTV.
En cada célula existen dos copias o alelos de cada
gen, que en condiciones normales se denomina
proto-oncogén
La mutación de un alelo convierte al proto-oncogén
normal en un oncogén activado que contribuye al
proceso carcinogénico
El oncogén es dominante sobre el proto-oncogén y
resulta en un producto desrregulado o activado
constitutivamente
La conversión oncogénica es una mutación de
ganancia de función
Conversión oncogénica
 Virus tumorales
Virus a ARN
Virus a ADN
Identificación de oncogenes
 Reordenamientos genómicos
Translocaciones
Inversiones
Amplificaciones/Doble diminutos
 Ensayos funcionales
Transfecciones de ADN tumoral
Transfecciones de bibliotecas de ADNc
HPV (human papilloma virus)
Activación de la proliferación por virus a ADN
PROLIFERACIÓN CELULAR
BLOQUEADA
PROLIFERACIÓN CELULAR
ACTIVADA POR VIRUS DE ADN
Las proteínas E6 y E7 codificadas por el virus del papiloma, secuestran
tanto Rb como p53; otros virus a ADN relacionados, como SV40, usan una
proteína viral llamada antígeno grande T, que cumple ambos propósitos
Papiloma E5 imita al ligando de PDGF
dominio de unión
del ligando
dominio de
quinasa
Papiloma E5 imita al ligando de PDGFR
dominio de unión
del ligando
dominio de
quinasa
dimerización de PDGFR
mediada por PDGF
Dimerización ligando-
independiente mediada por
BPV E5
Activación de la proliferación por virus a ARN
La proliferación puede ser estimulada por:
 virus portador de un v-onc
 virus sin v-onc, pero se integra cerca de un proto-oncogén
 virus que se inserta en un gen supresor tumoral y lo inactiva
Detección de
oncogenes
en tumores
humanos
Transfección
de ADN
Clonado de genes transformantes
Mecanismos que conducen a
la proliferación celular
 Unión de un factor de crecimiento (primer mensajero)
a su receptor específico de membrana
 Activación de moléculas transductoras de señales
intracelulares asociadas a los receptores celulares
 Transmisión de la señal desde el citosol al núcleo a
través de segundos mensajeros
 Transcripción del ADN y división celular
Productos de los oncogenes y sus funciones
 Clase 1
FACTORES DE CRECIMIENTO
I. FACTORES DE
CRECIMIENTO
II. RECEPTORES DE FACTORES
DE CRECIMIENTO
III. TRANSDUCTORES
DE SEÑALES
PROTEÍNAS
G
TIROSINAS
QUINASAS NO
ASOCIADAS A
MEMBRANA
TIROSINAS
QUINASAS
ASOCIADAS A
MEMBRANA
TREONINAS/SERINAS
QUINASAS
IV. PROTEÍNAS
REGULADORAS DE
LA TRANSCRIPCIÓN
NUCLEAR
NÚCLEO
CITOPLASMA
MEMBRANA CELULAR
REGIÓN EXTRACELULAR
 Clase 2
RECEPTORES DE FACTORES
DE CRECIMIENTO
 Clase 3
TRANSDUCTORES DE SEÑALES
 Clase 4
PROTEÍNAS REGULADORAS DE
LA TRANSCRIPCIÓN NUCLEAR
fgf-5
Factor de crecimiento relacionado a FGF (factor de crecimiento fibroblástico)
hst
Factor de crecimiento relacionado a bFGF
int-1
Factor de crecimiento embrionario
int-2
Factor de crecimiento relacionado a bFGF
sis
Factor de crecimiento derivado de plaquetas (PDGF)
Clase 1. FACTORES DE CRECIMIENTO
 Son proteínas extracelulares de bajo PM que actúan a
través de sus receptores específicos
Clase 1. FACTORES DE CRECIMIENTO
 El oncogén v-sis de SSV (virus del sarcoma de simios)
codifica para una proteína homóloga a la cadena B del
PDGF
 v-sis transforma in vitro células que expresan PDGFR,
lo que sugirió la teoría autocrina del cáncer
 La activación de los oncogenes int-2, hst y ks-3 lleva
a la síntesis aumentada de proteínas que funcionan
como bFGF
Clase 2. RECEPTORES DE FACTORES DE CRECIMIENTO
erbB
Receptor de EGF (EGFR) truncado con actividad tirosina quinasa
kit
Receptor de células troncales (stem cells) con actividad tirosina quinasa
mas
Receptor de angiotensina
met
Receptor afín a EGFR truncado con actividad tirosina quinasa
neu
Proteína afín a EGFR con actividad tirosina quinasa (ligando desconocido)
 El producto del oncogén c-erbB2/HER-2/neu es un receptor
de membrana de 185 kDa con ligando desconocido.
 Su amplificación génica resulta en la sobreexpresión de la
proteína, que correlaciona con una supervivencia libre de
enfermedad menor y una supervivencia acortada en pacientes
con ganglio axilar (+)
c- erbB2/HER- 2/neu
La heterodimerización con otros
receptores activa a HER-2
Unión de
EGF a EGFr
asociación y
dimerización
con HER-2
Fosforilación
EGFr HER-2/neu
EGF/EGFr HER-2
EGF/EGFr HER-2
Célula
cancerosa
La activación del receptor HER-2 transmite
señales hacia el núcleo, controlando el
crecimiento celular
Trastuzumab (Herceptin)
 Primer anticuerpo monoclonal aprobado por la FDA
para el tratamiento del cáncer de mama
 Anticuerpo monoclonal humanizado derivado de ADN
recombinante que reconoce con alta afinidad el dominio
extracelular de HER-2
 Mejora el resultado del tratamiento de pacientes con
cáncer de mama avanzado HER-2+ (1/3 de pacientes)
 Se proponen tres mecanismos de acción: potenciación
de la citotoxicidad por quimioterapia, inhibición de la
proliferación tumoral por inducción de inhibidores
endógenos del ciclo celular (p27kip), facilitación de la
función inmune
Clase 3. TRANSDUCTORES DE SEÑALES
abl
Tirosina quinasa citoplasmática o nuclear
fes
Tirosina quinasa citoplasmática
Mos
Treonina/serina quinasa citoplasmática
raf
Treonina/serina quinasa citoplasmática
ras
Proteína G asociada a membrana con actividad GTPasa
src
Tirosina quinasa asociada a membrana
yes
Tirosina quinasa asociada a membrana
 Quinasas citoplasmáticas
a) actividad de tirosina-quinasa asociada a membrana
src
b) actividad de tirosina-quinasa no asociada a membrana
abl: su producto se localiza en citoplasma y núcleo y se activa por
translocación o inserción de retrovirus
c) actividad de serina/treonina-quinasa
raf: mutaciones en la zona amino terminal producen activación
constitutiva de la quinasa
mos: su poder transformante estaría dado por aumento de la
producción de la proteína
Clase 3. TRANSDUCTORES DE SEÑALES
 Proteínas G: ras
Quinasas citoplasmáticas
a) actividad de tirosina-quinasa asociada a membrana
src
b) actividad de tirosina-quinasa no asociada a membrana
abl: su producto se localiza en citoplasma y núcleo y se activa por
translocación o inserción de retrovirus
c) actividad de serina/treonina-quinasa
raf: mutaciones en la zona amino terminal producen activación
constitutiva de la quinasa
mos: su poder transformante estaría dado por aumento de la
producción de la proteína
Clase 3. TRANSDUCTORES DE SEÑALES
 Proteínas G: ras
GTP
p21ras
p21ras
GAP
P
Ras activado
Ras inactivo
Hidrólisis de GTP
bloqueada cuando
ras está mutado
GEF
GDP
GDP
p21ras
GTP
GAP
ras
Vía de activación de ras
Ras
R
T
K
R
T
K
GDP
MEK
ERK
Vía de activación de ras
Ras
R
T
K
R
T
K
Grb SOS
GDP
MEK
ERK
Vía de activación de ras
Ras
R
T
K
Raf
Cyclin D
R
T
K
Grb SOS
GTP
MEK
ERK
posición del amino ácido
gen Ras 12 59 61 Tumor
c-ras (H, K, N) Gly Ala Gln células normales
H-ras Gly Ala Leu carcinoma de pulmón
Val Ala Gln carcinoma de vejiga
K-ras Cys Ala Gln carcinoma de pulmón
Arg Ala Gln carcinoma de pulmón
Val Ala Gln carcinoma de colon
N-ras Gly Ala Lys neuroblastoma
Gly Ala Arg carcinoma de pulmón
Virus del sarcoma murino
H-ras Arg Thr Gln cepa Harvey
K-ras Ser Thr Gln cepa Kirsten
Substituciones de aminoácidos en la familia de proteínas Ras
Efectores de Ras
Inhibición terapéutica de ras
 Inhibición de síntesis de grupos farnesilo
con estatinas (lovastatin, pravastatin, etc.)
 Inhibición de la farnesiltransferasa:
SAM 486A (inhibidor de la síntesis de poliaminas)
MMI270B (inhibidor de metaloproteasas de matriz)
CAAX peptidomimetics
SCH 66336
 Proteínas G: ras
 Quinasas citoplasmáticas
a) actividad de tirosina-quinasa asociada a membrana
src
b) actividad de tirosina-quinasa no asociada a membrana
abl: su producto se localiza en citoplasma y núcleo y se activa
translocación o inserción de retrovirus
c) actividad de serina/treonina-quinasa
raf: mutaciones en la zona amino terminal producen activación
constitutiva de la quinasa
mos: su poder transformante estaría dado por aumento de la
producción de la proteína
Clase 3. TRANSDUCTORES DE SEÑALES
N
CP
tir 527
tir 416
pp60 c-src inactiva
SH3 SH2
Dominio
catalítico
N C
tir 527tir 416
P
pp60 c-src activa
SH3 SH2
Dominio
catalítico
src
Lodish et al. Fig. 24-17
La deleción del extremo C-terminal
conduce a la activación de v-Src
 La tirosina quinasa de pp60c-src tiene acción sobre:
Motilidad celular
Invasión: rompe unión cadherina E
Crecimiento
Supervivencia celular
src
 La proteína pp60c-src se asocia a la cara citosólica de
la membrana, para lo cual depende de la unión de
ácido mirístico al extremo amino terminal
Blancos moleculares poco conocidos FH1ST, PLD
membrana celular
citoesqueleto
catenina
Cadherina E
src
P
P
P
P
P
 Proteínas G: ras
 Quinasa citoplasmáticas
a) actividad de tirosina-quinasa asociada a membrana
src
b) actividad de tirosina-quinasa no asociada a membrana
abl: su producto se localiza en citoplasma y núcleo y se activa
translocación o inserción de retrovirus
c) actividad de serina/treonina-quinasa
raf: mutaciones en la zona amino terminal producen activación
constitutiva de la quinasa
mos: su poder transformante estaría dado por aumento de la
producción de la proteína
Clase 3. TRANSDUCTORES DE SEÑALES
22
bcr
abl
Ph
bcr-abl
9 9+
abl
Tratamiento para inhibir la quinasa Bcr-Abl
proteína sustrato
proteína sustrato señal para
proliferación
y sobrevida
LEUCEMIA
BCR-ABL BLOQUEADO CON GLEEVEC (STI-571)
sin señal NO LEUCEMIA
BCR-ABL activa
 Proteínas G: ras
 Quinasa citoplasmáticas
a) actividad de tirosina-quinasa asociada a membrana
src
b) actividad de tirosina-quinasa no asociada a membrana
abl: su producto se localiza en citoplasma y núcleo y se activa
translocación o inserción de retrovirus
c) actividad de serina/treonina-quinasa
raf: mutaciones en la zona amino terminal producen activación
constitutiva de la quinasa
mos: su poder transformante estaría dado por aumento de la
producción de la proteína (acción sobre tubulina de microtúbulos)
Clase 3. TRANSDUCTORES DE SEÑALES
Clase 4. PROTEÍNAS REGULADORAS DE LA
TRANSCRIPCIÓN NUCLEAR
erbA
Receptor nuclear de la hormona tiroidea
ets-1
Proteína de asociación a secuencias específicas del ADN
fos/jun
Conjuntamente forman el factor de transcripción AP-1
myb
Proteína de asociación a secuencias específicas del ADN
myc
Proteína de asociación a secuencias específicas del ADN
rel
Proteína relacionada con NF-κB
A
NH2
COOH
Dominio
hélice-bucle-hélice
Cierre de
leucinas
Región básica
de unión al ADN
Región de activación
de la transcripción
Proteína Myc
myc
Max-Myc Max-Max
Quiescencia
Proliferación
c-myc es translocado al locus IgG, lo
que resulta en su expresión activada
bcr-abl fusion protein is produced,
which results in a constitutively active abl kinase
bcr-abl
bcr
abl
c-myc IgGexacerbador IgG
c-myc es activado por el
exacerbador
IgG en los linfocitos
Oncogene Amplificación Tipo de tumor
c-myc ~20 veces leucemia y ca. de pulmón
N-myc 5-1,000 veces neuroblastoma
retinoblastoma
L-myc 10-20 veces SCLC
c-myc puede estar amplificado
Myc: esencial para el desarrollo embrionario normal;
su ausencia es letal
c- myc
mRNA
tiempo1 h
Myc
Max
myc: inducible
por FC
max: expresión
constitutiva
Factores de crecimiento Myc Detención en G1
Myc + Factores de crecimiento Apoptosis
Factores de crecimiento Myc Proliferación
Blancos génicos de myc
α –Protimosina Función desconocida
ODC Biosíntesis de poliaminas
Cdc25A Ciclo celular
Ciclina D1 Ciclo celular
eIF-2 Síntesis de proteínas
eIF4E Síntesis de proteínas
ARF o p19 Apoptosis/Checkpoint
Cdc2 Ciclo celular
Ciclina A Ciclo celular
Ciclina E Ciclo celular
Modelo de
cáncer
colorectal
de
Bert
Vogelstein
Efecto
acumulativo
Progresión tumoral
Complementación entre oncogenes
myc y ras
REF
rat embryo
fibroblast
Immortalizada
myc ras
Transformada
myc + ras
Tumorigénica
XX
Complementación entre oncogenes
Transformación
(citoplasma)
ras
Inmortalización
(núcleo)
myc
src
abl
myb
p53
Complementación entre oncogenes
CÁNCER
Complementación entre oncogenes
E1A y E1B
Oncogenes de Adenovirus
REF
Immortalizada
E1A E1B
Normal
E1A + E1B
Transformada
XX
• Diagnóstico:
a) LMC (Ph-) donde hay rearreglos bcr/abl (5-10% casos) (PCR, Sb o Nb)
b) Linfoma no-Hodgkin: t(14;18) en <1% de las células que involucra
bcl-2 (PCR y Sb)
Importancia Clínica de los Oncogenes
• Pronóstico:
a) Neuroblastomas: ∼38% myc amplificado hasta 300 veces ⇒ mal
pronóstico (Sb, Hibrid. in situ, citogenética HSR o DMS)
b) Cáncer de mama axila (-): Her2/neu amplificado (hasta 30 veces)
probable mal pronóstico (IHQ)
a) Terapia contra factores de crecimiento y sus receptores:
trastuzumab: anti HER-2/NEU
erlotinib y gefitinib: inhiben la TK de EGFR
bevasizumab: anti VEGFR
b) Inhibidores de farnesilación:
estatinas: inhiben farnesilación p21ras
inhibidores de la farnesiltransferasa
c) Inhibidores de kinasas citoplasmáticas:
Imatinib: inhibe la TK de la proteína BCR-ABL
d) Terapia contra factores de transcripción:
Moléculas antisentido para MYC
Péptidos y moléculas pequeñas inhibidoras de MYC
Importancia Clínica de los Oncogenes

Oncogenes

  • 1.
    ONCOGENES Dra. O. GracielaScharovsky Instituto de Genética Experimental Facultad de Ciencias Médicas, U.N.R. 2006
  • 2.
    La transformación maligna surge de la acumulaciónde múltiples daños en el genoma 1er. Impacto 2do. Impacto 3er. Impacto Célula Normal Daño en el ADN Apoptosis Reparación Displasia leve Displasia severa Tumor invasivo
  • 3.
    Patogénesis del cáncer Cambiosen el genoma de células somáticas Activación de oncogenes promotores del crecimiento Inactivación de genes supresores de tumores Expresión de productos de genes alterados y pérdida de productos génicos regulatorios CÁNCER Factores genéticos Factores ambientales: Sustancias químicas, radiaciones y virus. Expansión clonal Mutaciones adicionales Heterogeneidad
  • 4.
    ONCOGENES Definición  Genes capacesde inducir cáncer  Cualquier gen que produce un fenotipo maligno cuando se introduce en una célula normal  Un gen íntimamente asociado con una enfermedad maligna particular. Por ejemplo, un gen quimérico formado por una translocación cromosómica.
  • 5.
    ONCOGENES Descubrimiento  Retrovirus transformanteRSV (Rous Sarcoma Virus) Genes: gag, pol, env y src  Bishop y Varmus (1977) Secuencias homólogas en células eucariotas normales libres de virus Oncogenes virales ó v-onc Proto-oncogenes ó c-onc  Tumores producidos por extractos acelulares del sarcoma de Rous (principios del siglo XX) Peyton Rous descubrió el virus que causa el cáncer en los pollos
  • 6.
    Origen celular delos oncogenes retrovirales  Número y tamaño de los exones e intrones  Los c-onc están ligados a los mismos genes en distintas especies  Inoculación de virus carentes de v-onc en células eucariotas  Todos los v-onc tienen homólogo celular, pero no todos los c-onc tienen contraparte viral
  • 7.
    c-ONC célula ADN del hospedador v-ONC •LTR-gag-pol-env-LTR Retrovirussimple Transducción retroviral de un oncogén Estructura de un retrovirus
  • 8.
    Oncogenes adenovirales  Oncogenesde virus a ADN (SV40, virus del papiloma) no tienen homología con los c-onc  Forman parte del genoma viral necesario para la replicación del virus  La mayoría de las células infectadas con virus a ADN muere, pero algunas sobreviven y son transformadas  Las proteínas codificadas por los oncogenes de estos virus interactúan con proteínas del ciclo celular o inactivan producto de genes supresores de tumores
  • 9.
    Virus Producto génicoBlanco celular Adenovirus Virus Polioma SV40 Virus Papiloma E1A E1B Antígeno T grande Rb, p53 Antígeno T mediano Src, PI3K E7 E6 E5 Rb p53 Rb p53 receptor PDGF Los virus a ADN apuntan a los genes supresores de tumores
  • 10.
    Mecanismos de activaciónde los proto-oncogenes ADN Proto-oncogén Proteína normal CRECIMIENTO NORMAL Nuevo promotor Translocación: el gen se mueve a otro locus bajo nuevos controles Proteína normal estimulante del crecimiento, en exceso Amplificación génica: múltiples copias del gen Mutación puntual dentro del gen Oncogén Proteína hiperactiva o resistente a la degradación C Á N C E R
  • 11.
    Translocación cromosómica myc Ig myc Ig 8 148 14 Cromosomas normales Linfoma de Burkitt Linfoma de Burkitt abl bcr 9 22 9 22 Cromosomas normales LMC bcr abl Leucemia mieloide crónica
  • 12.
    ADN de cáncerde vejiga EJ Procedencia de H-ras Poder transformante sobre NIH.3T3 1 2 3 4 5 6 ADN de placenta humana ADNs recombinantes: VAL GLI ALA VAL GLI GTG GGC GCC GTC GGT 9 10 11 12 13 GTG GGC GCC GGC GGT VAL GLI ALA GLI GLI Secuencia nucleotídica Secuencia aminoacídica Secuenciación de la región de ADN involucrada en la transformación Codón Nro.: EJ Placenta + + + + - - - - Mutación puntual
  • 13.
    Amplificación génica c-myc enneuroblastomas (300) c-erbB-2/HER-2 en cáncer de mama (30)
  • 14.
    Mutagénesis insercional .  Elproceso activa el gen Wnt-1 y produce cáncer de mama en el ratón infectado con el MMTV.  Sitios de integración de MMTV observados en 19 tumores diferentes (flechas).  Las inserciones pueden activar la transcripción de Wnt-1 desde distancias de más de 10.000 pares de nucleótidos de cada lado del gen.  Este efecto se atribuye a una secuencia de ADN exacerbadora potente que está presente en las repeticiones terminales del genoma de MMTV.
  • 15.
    En cada célulaexisten dos copias o alelos de cada gen, que en condiciones normales se denomina proto-oncogén La mutación de un alelo convierte al proto-oncogén normal en un oncogén activado que contribuye al proceso carcinogénico El oncogén es dominante sobre el proto-oncogén y resulta en un producto desrregulado o activado constitutivamente La conversión oncogénica es una mutación de ganancia de función Conversión oncogénica
  • 16.
     Virus tumorales Virusa ARN Virus a ADN Identificación de oncogenes  Reordenamientos genómicos Translocaciones Inversiones Amplificaciones/Doble diminutos  Ensayos funcionales Transfecciones de ADN tumoral Transfecciones de bibliotecas de ADNc
  • 17.
    HPV (human papillomavirus) Activación de la proliferación por virus a ADN PROLIFERACIÓN CELULAR BLOQUEADA PROLIFERACIÓN CELULAR ACTIVADA POR VIRUS DE ADN Las proteínas E6 y E7 codificadas por el virus del papiloma, secuestran tanto Rb como p53; otros virus a ADN relacionados, como SV40, usan una proteína viral llamada antígeno grande T, que cumple ambos propósitos
  • 18.
    Papiloma E5 imitaal ligando de PDGF dominio de unión del ligando dominio de quinasa
  • 19.
    Papiloma E5 imitaal ligando de PDGFR dominio de unión del ligando dominio de quinasa dimerización de PDGFR mediada por PDGF Dimerización ligando- independiente mediada por BPV E5
  • 20.
    Activación de laproliferación por virus a ARN La proliferación puede ser estimulada por:  virus portador de un v-onc  virus sin v-onc, pero se integra cerca de un proto-oncogén  virus que se inserta en un gen supresor tumoral y lo inactiva
  • 21.
  • 22.
    Clonado de genestransformantes
  • 23.
    Mecanismos que conducena la proliferación celular  Unión de un factor de crecimiento (primer mensajero) a su receptor específico de membrana  Activación de moléculas transductoras de señales intracelulares asociadas a los receptores celulares  Transmisión de la señal desde el citosol al núcleo a través de segundos mensajeros  Transcripción del ADN y división celular
  • 24.
    Productos de losoncogenes y sus funciones  Clase 1 FACTORES DE CRECIMIENTO I. FACTORES DE CRECIMIENTO II. RECEPTORES DE FACTORES DE CRECIMIENTO III. TRANSDUCTORES DE SEÑALES PROTEÍNAS G TIROSINAS QUINASAS NO ASOCIADAS A MEMBRANA TIROSINAS QUINASAS ASOCIADAS A MEMBRANA TREONINAS/SERINAS QUINASAS IV. PROTEÍNAS REGULADORAS DE LA TRANSCRIPCIÓN NUCLEAR NÚCLEO CITOPLASMA MEMBRANA CELULAR REGIÓN EXTRACELULAR  Clase 2 RECEPTORES DE FACTORES DE CRECIMIENTO  Clase 3 TRANSDUCTORES DE SEÑALES  Clase 4 PROTEÍNAS REGULADORAS DE LA TRANSCRIPCIÓN NUCLEAR
  • 25.
    fgf-5 Factor de crecimientorelacionado a FGF (factor de crecimiento fibroblástico) hst Factor de crecimiento relacionado a bFGF int-1 Factor de crecimiento embrionario int-2 Factor de crecimiento relacionado a bFGF sis Factor de crecimiento derivado de plaquetas (PDGF) Clase 1. FACTORES DE CRECIMIENTO
  • 26.
     Son proteínasextracelulares de bajo PM que actúan a través de sus receptores específicos Clase 1. FACTORES DE CRECIMIENTO  El oncogén v-sis de SSV (virus del sarcoma de simios) codifica para una proteína homóloga a la cadena B del PDGF  v-sis transforma in vitro células que expresan PDGFR, lo que sugirió la teoría autocrina del cáncer  La activación de los oncogenes int-2, hst y ks-3 lleva a la síntesis aumentada de proteínas que funcionan como bFGF
  • 27.
    Clase 2. RECEPTORESDE FACTORES DE CRECIMIENTO erbB Receptor de EGF (EGFR) truncado con actividad tirosina quinasa kit Receptor de células troncales (stem cells) con actividad tirosina quinasa mas Receptor de angiotensina met Receptor afín a EGFR truncado con actividad tirosina quinasa neu Proteína afín a EGFR con actividad tirosina quinasa (ligando desconocido)
  • 28.
     El productodel oncogén c-erbB2/HER-2/neu es un receptor de membrana de 185 kDa con ligando desconocido.  Su amplificación génica resulta en la sobreexpresión de la proteína, que correlaciona con una supervivencia libre de enfermedad menor y una supervivencia acortada en pacientes con ganglio axilar (+) c- erbB2/HER- 2/neu
  • 29.
    La heterodimerización conotros receptores activa a HER-2 Unión de EGF a EGFr asociación y dimerización con HER-2 Fosforilación EGFr HER-2/neu EGF/EGFr HER-2 EGF/EGFr HER-2
  • 30.
    Célula cancerosa La activación delreceptor HER-2 transmite señales hacia el núcleo, controlando el crecimiento celular
  • 31.
    Trastuzumab (Herceptin)  Primeranticuerpo monoclonal aprobado por la FDA para el tratamiento del cáncer de mama  Anticuerpo monoclonal humanizado derivado de ADN recombinante que reconoce con alta afinidad el dominio extracelular de HER-2  Mejora el resultado del tratamiento de pacientes con cáncer de mama avanzado HER-2+ (1/3 de pacientes)  Se proponen tres mecanismos de acción: potenciación de la citotoxicidad por quimioterapia, inhibición de la proliferación tumoral por inducción de inhibidores endógenos del ciclo celular (p27kip), facilitación de la función inmune
  • 32.
    Clase 3. TRANSDUCTORESDE SEÑALES abl Tirosina quinasa citoplasmática o nuclear fes Tirosina quinasa citoplasmática Mos Treonina/serina quinasa citoplasmática raf Treonina/serina quinasa citoplasmática ras Proteína G asociada a membrana con actividad GTPasa src Tirosina quinasa asociada a membrana yes Tirosina quinasa asociada a membrana
  • 33.
     Quinasas citoplasmáticas a)actividad de tirosina-quinasa asociada a membrana src b) actividad de tirosina-quinasa no asociada a membrana abl: su producto se localiza en citoplasma y núcleo y se activa por translocación o inserción de retrovirus c) actividad de serina/treonina-quinasa raf: mutaciones en la zona amino terminal producen activación constitutiva de la quinasa mos: su poder transformante estaría dado por aumento de la producción de la proteína Clase 3. TRANSDUCTORES DE SEÑALES  Proteínas G: ras
  • 34.
    Quinasas citoplasmáticas a) actividadde tirosina-quinasa asociada a membrana src b) actividad de tirosina-quinasa no asociada a membrana abl: su producto se localiza en citoplasma y núcleo y se activa por translocación o inserción de retrovirus c) actividad de serina/treonina-quinasa raf: mutaciones en la zona amino terminal producen activación constitutiva de la quinasa mos: su poder transformante estaría dado por aumento de la producción de la proteína Clase 3. TRANSDUCTORES DE SEÑALES  Proteínas G: ras
  • 35.
    GTP p21ras p21ras GAP P Ras activado Ras inactivo Hidrólisisde GTP bloqueada cuando ras está mutado GEF GDP GDP p21ras GTP GAP ras
  • 36.
    Vía de activaciónde ras Ras R T K R T K GDP MEK ERK
  • 37.
    Vía de activaciónde ras Ras R T K R T K Grb SOS GDP MEK ERK
  • 38.
    Vía de activaciónde ras Ras R T K Raf Cyclin D R T K Grb SOS GTP MEK ERK
  • 39.
    posición del aminoácido gen Ras 12 59 61 Tumor c-ras (H, K, N) Gly Ala Gln células normales H-ras Gly Ala Leu carcinoma de pulmón Val Ala Gln carcinoma de vejiga K-ras Cys Ala Gln carcinoma de pulmón Arg Ala Gln carcinoma de pulmón Val Ala Gln carcinoma de colon N-ras Gly Ala Lys neuroblastoma Gly Ala Arg carcinoma de pulmón Virus del sarcoma murino H-ras Arg Thr Gln cepa Harvey K-ras Ser Thr Gln cepa Kirsten Substituciones de aminoácidos en la familia de proteínas Ras
  • 40.
  • 41.
    Inhibición terapéutica deras  Inhibición de síntesis de grupos farnesilo con estatinas (lovastatin, pravastatin, etc.)  Inhibición de la farnesiltransferasa: SAM 486A (inhibidor de la síntesis de poliaminas) MMI270B (inhibidor de metaloproteasas de matriz) CAAX peptidomimetics SCH 66336
  • 42.
     Proteínas G:ras  Quinasas citoplasmáticas a) actividad de tirosina-quinasa asociada a membrana src b) actividad de tirosina-quinasa no asociada a membrana abl: su producto se localiza en citoplasma y núcleo y se activa translocación o inserción de retrovirus c) actividad de serina/treonina-quinasa raf: mutaciones en la zona amino terminal producen activación constitutiva de la quinasa mos: su poder transformante estaría dado por aumento de la producción de la proteína Clase 3. TRANSDUCTORES DE SEÑALES
  • 43.
    N CP tir 527 tir 416 pp60c-src inactiva SH3 SH2 Dominio catalítico N C tir 527tir 416 P pp60 c-src activa SH3 SH2 Dominio catalítico src
  • 44.
    Lodish et al.Fig. 24-17 La deleción del extremo C-terminal conduce a la activación de v-Src
  • 45.
     La tirosinaquinasa de pp60c-src tiene acción sobre: Motilidad celular Invasión: rompe unión cadherina E Crecimiento Supervivencia celular src  La proteína pp60c-src se asocia a la cara citosólica de la membrana, para lo cual depende de la unión de ácido mirístico al extremo amino terminal Blancos moleculares poco conocidos FH1ST, PLD
  • 46.
  • 47.
     Proteínas G:ras  Quinasa citoplasmáticas a) actividad de tirosina-quinasa asociada a membrana src b) actividad de tirosina-quinasa no asociada a membrana abl: su producto se localiza en citoplasma y núcleo y se activa translocación o inserción de retrovirus c) actividad de serina/treonina-quinasa raf: mutaciones en la zona amino terminal producen activación constitutiva de la quinasa mos: su poder transformante estaría dado por aumento de la producción de la proteína Clase 3. TRANSDUCTORES DE SEÑALES
  • 48.
  • 50.
    Tratamiento para inhibirla quinasa Bcr-Abl proteína sustrato proteína sustrato señal para proliferación y sobrevida LEUCEMIA BCR-ABL BLOQUEADO CON GLEEVEC (STI-571) sin señal NO LEUCEMIA BCR-ABL activa
  • 51.
     Proteínas G:ras  Quinasa citoplasmáticas a) actividad de tirosina-quinasa asociada a membrana src b) actividad de tirosina-quinasa no asociada a membrana abl: su producto se localiza en citoplasma y núcleo y se activa translocación o inserción de retrovirus c) actividad de serina/treonina-quinasa raf: mutaciones en la zona amino terminal producen activación constitutiva de la quinasa mos: su poder transformante estaría dado por aumento de la producción de la proteína (acción sobre tubulina de microtúbulos) Clase 3. TRANSDUCTORES DE SEÑALES
  • 52.
    Clase 4. PROTEÍNASREGULADORAS DE LA TRANSCRIPCIÓN NUCLEAR erbA Receptor nuclear de la hormona tiroidea ets-1 Proteína de asociación a secuencias específicas del ADN fos/jun Conjuntamente forman el factor de transcripción AP-1 myb Proteína de asociación a secuencias específicas del ADN myc Proteína de asociación a secuencias específicas del ADN rel Proteína relacionada con NF-κB
  • 53.
    A NH2 COOH Dominio hélice-bucle-hélice Cierre de leucinas Región básica deunión al ADN Región de activación de la transcripción Proteína Myc myc Max-Myc Max-Max Quiescencia Proliferación
  • 54.
    c-myc es translocadoal locus IgG, lo que resulta en su expresión activada bcr-abl fusion protein is produced, which results in a constitutively active abl kinase bcr-abl bcr abl c-myc IgGexacerbador IgG c-myc es activado por el exacerbador IgG en los linfocitos Oncogene Amplificación Tipo de tumor c-myc ~20 veces leucemia y ca. de pulmón N-myc 5-1,000 veces neuroblastoma retinoblastoma L-myc 10-20 veces SCLC c-myc puede estar amplificado
  • 55.
    Myc: esencial parael desarrollo embrionario normal; su ausencia es letal c- myc mRNA tiempo1 h Myc Max myc: inducible por FC max: expresión constitutiva Factores de crecimiento Myc Detención en G1 Myc + Factores de crecimiento Apoptosis Factores de crecimiento Myc Proliferación
  • 56.
    Blancos génicos demyc α –Protimosina Función desconocida ODC Biosíntesis de poliaminas Cdc25A Ciclo celular Ciclina D1 Ciclo celular eIF-2 Síntesis de proteínas eIF4E Síntesis de proteínas ARF o p19 Apoptosis/Checkpoint Cdc2 Ciclo celular Ciclina A Ciclo celular Ciclina E Ciclo celular
  • 57.
  • 58.
  • 59.
    Complementación entre oncogenes mycy ras REF rat embryo fibroblast Immortalizada myc ras Transformada myc + ras Tumorigénica XX
  • 60.
  • 61.
  • 62.
    Complementación entre oncogenes E1Ay E1B Oncogenes de Adenovirus REF Immortalizada E1A E1B Normal E1A + E1B Transformada XX
  • 63.
    • Diagnóstico: a) LMC(Ph-) donde hay rearreglos bcr/abl (5-10% casos) (PCR, Sb o Nb) b) Linfoma no-Hodgkin: t(14;18) en <1% de las células que involucra bcl-2 (PCR y Sb) Importancia Clínica de los Oncogenes • Pronóstico: a) Neuroblastomas: ∼38% myc amplificado hasta 300 veces ⇒ mal pronóstico (Sb, Hibrid. in situ, citogenética HSR o DMS) b) Cáncer de mama axila (-): Her2/neu amplificado (hasta 30 veces) probable mal pronóstico (IHQ)
  • 64.
    a) Terapia contrafactores de crecimiento y sus receptores: trastuzumab: anti HER-2/NEU erlotinib y gefitinib: inhiben la TK de EGFR bevasizumab: anti VEGFR b) Inhibidores de farnesilación: estatinas: inhiben farnesilación p21ras inhibidores de la farnesiltransferasa c) Inhibidores de kinasas citoplasmáticas: Imatinib: inhibe la TK de la proteína BCR-ABL d) Terapia contra factores de transcripción: Moléculas antisentido para MYC Péptidos y moléculas pequeñas inhibidoras de MYC Importancia Clínica de los Oncogenes