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Incidencia 
1:4,000 - 1:6395 
 En hispánicos en EUA es de 1:3,800
Gen mutado 
 Locus: 22q11.2; DGCR (región 
cromosomal DiGeroge) 
 Función normal: formación de múltiples 
productos. 
 Función anormal: desconocida.
Productos normales
Fisiopatología molecular 
 El 85% tiene una deleción 2.54-Mb en una 
región similar. 
Deleción de 20 Kb en TDR en individuos con 
fenotipo clásico VCFS/DGS 
Deleciones UFD1L y CDC45L 
Deleción como resultado de una traslocación 
desbalanceada que va de 22pter - q11
Fisiopatología molecular
Cuadro clínico 
 Defectos cardiacos en el 74% 
 Anormalidades del paladar el 66% 
 Disfagia en el 36% 
 Reflujo gastroesofágico 
 Inmunodeficiencia el 77% 
 Infecciones recurrentes (sinusitis, otitis 
media, neumonías) 
 Hipocalcemia en 17-60%, es más 
grave en periodo neonatal 
 SNC: hipotonia, microcefalia (50%) 
 Anormalidades craneofaciales 
 Nariz: prominente, punta nasal bulbosa, 
alas nasales hipoplásicas, punta nasal 
con hoyuelo o bífida. 
 Ojos: capuchas en párpados superiores 
(41%), ptosis (9%), capucha en párpado 
inferior (6%), epicanto (3%), distiquiasis 
(3%). Embriotoxon posterior (69%), vasos 
retinianos tortuosos (58%), estabrismo 
(13%). 
 Oído: hélices cuadradas, ahuecadas, 
micrótica y orejas protuberantes, fosas 
preauriculares y meados externos 
estrechos.
Criterios de diagnóstico 
Clínicos 
 Defectos cardiacos 
 Anormalidades del 
paladar 
 Infecciones frecuentes 
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concentración de Ca en 
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 Tele de tórax
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herencia 
 Penetrancia completa 
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 Mutación de novo (90%) 
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 Si al hacer los exámenes en los padres 
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la mutación el riesgo de recurrencia es 
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 Dependiendo de la gravedad de la inmunodeficiencia 
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Síndrome di george

  • 2. Incidencia 1:4,000 - 1:6395  En hispánicos en EUA es de 1:3,800
  • 3. Gen mutado  Locus: 22q11.2; DGCR (región cromosomal DiGeroge)  Función normal: formación de múltiples productos.  Función anormal: desconocida.
  • 5. Fisiopatología molecular  El 85% tiene una deleción 2.54-Mb en una región similar. Deleción de 20 Kb en TDR en individuos con fenotipo clásico VCFS/DGS Deleciones UFD1L y CDC45L Deleción como resultado de una traslocación desbalanceada que va de 22pter - q11
  • 7. Cuadro clínico  Defectos cardiacos en el 74%  Anormalidades del paladar el 66%  Disfagia en el 36%  Reflujo gastroesofágico  Inmunodeficiencia el 77%  Infecciones recurrentes (sinusitis, otitis media, neumonías)  Hipocalcemia en 17-60%, es más grave en periodo neonatal  SNC: hipotonia, microcefalia (50%)  Anormalidades craneofaciales  Nariz: prominente, punta nasal bulbosa, alas nasales hipoplásicas, punta nasal con hoyuelo o bífida.  Ojos: capuchas en párpados superiores (41%), ptosis (9%), capucha en párpado inferior (6%), epicanto (3%), distiquiasis (3%). Embriotoxon posterior (69%), vasos retinianos tortuosos (58%), estabrismo (13%).  Oído: hélices cuadradas, ahuecadas, micrótica y orejas protuberantes, fosas preauriculares y meados externos estrechos.
  • 8. Criterios de diagnóstico Clínicos  Defectos cardiacos  Anormalidades del paladar  Infecciones frecuentes  Dificultad de aprendizaje  Dismorfias craneofaciales. Laboratoriales  Medición de concentración de Ca en sange  PTH en sange  Biometria hemática  Tele de tórax
  • 9. Modificadores de la herencia  Penetrancia completa  Expresividad variable  NO hay anticipación  Autosómica dominante  Mutación de novo (90%) Mosaicismo germinal y somático
  • 10. Prueba genética  FISH  Análisis dirigido  Microarreglos
  • 11. Asesoramiento  Si al hacer los exámenes en los padres se comprueba que ninguno de ellos tiene la mutación el riesgo de recurrencia es bajo  Si uno de los padres la padece el riesgo de transmitirla es 50%
  • 12. Tratamiento  Suplementos de Ca  Cirugía para defecto cardiaco  Dependiendo de la gravedad de la inmunodeficiencia se decidirá si se tratara con trasplante de médula ósea o timo  Antibióticos profilácticos si hay inmunodeficiencia grave  Corrección de paladar hendido  No aplicar vacunas vivas

Notas del editor

  1. Es lo que normalmente produce el gen DGCR http://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK1523/bin/gr_22q11deletion-Table4.pdf
  2. The majority of affected individuals (85%) have a large (3-Mb) deletion encompassing approximately 40 genes; a subset of individuals have a smaller atypical or ‘‘nested’’ deletion.
  3. Embriotoxon posterior de la córnea. (Axenfeld). Sinónimo: síndrome de Axenfeld. Malformación congénita bilateral caracterizada por la presencia de un anillo blancuzco en la periferia de la córnea y que forma prominencia sobre su cara posterior, a la cual se adhiere. Distiquiasis consiste en el crecimiento ectópico de pestañas en zonas no habituales del borde palpebral. 
  4. FISH. The two probes commercially available for 22q11.2 FISH analysis are TUPLE1 and N25. The detection rate of FISH analysis using either probe is thought to be equivalent. However, FISH with either probe is not sensitive enough to detect smaller deletions (<40 kb) within 22q11.2. Most deletions are now being identified by the use of CMA or MLPA, either of which will detect the smaller deletions missed by FISH. These studies will not detect mutations in any of the genes within the deleted region, however. Note: The probe ARSA, which hybridizes to chromosomal locus 22q13.3, may also be used in testing, but only for control purposes. Duplication/deletion analysis is testing that identifies deletions/duplications not readily detectable by sequence analysis of genomic DNA. The 2.54-Mb A-D common deletion can be detected by any molecular method that determines the copy number of genomic sequences within the deleted region (see Table 1, footnote 2). Either whole-genome or targeted approaches can be applied (see Molecular Genetics for details of the deleted region): Chromosomal microarray (CMA) technologies are the most appropriate test to identify the 22q11.2 deletion in a proband because the phenotype is nonspecific and often performed as part of the evaluation of developmental delay or intellectual disability. CMA can detect many chromosomal abnormalities that may be causal. CMA analysis using arrays of BACs, oligonucleotides, or SNPs (single-nucleotide polymorphisms) can detect the 2.54-Mb deletion in a proband. The ability to size the deletion depends on the type of microarray used and the density of probes in the 22q11.2 region. Targeted deletion analysis. Targeted methods including for example, FISH and MLPA, can be used for rapid diagnosis if the syndrome is suspected clinically or for confirmation of the deletion after CMA analysis. Targeted approaches can also be used for evaluating relatives of the proband for presence of the deletion.