Antibiograma
PRUEBA DE SUSCEPTIBILIDAD
ANTIMICROBIANA
• Son métodos in Vitro que determinan la
susceptibilidad de los microorganismos
a una variedad de agentes
antimicrobianos.
• El primer objetivo (terapéutico) del antibiograma
es el de medir la sensibilidad de una cepa
bacteriana que se sospecha es la responsable de
una infección a uno o varios antibióticos.
• El segundo objetivo (epidemiológico) del
antibiograma es el de seguir la evolución de las
resistencias bacterianas. Es necesario detectar el
aumento de los niveles de resistencia en los
aislamientos clínicos para tomar medidas
correctoras.
VALORACIÓN DE LA
SENSIBILIDAD
ANTIBIOGRAMA.
MÉTODOS
• Diluciones
–Medio líquido
• Macrodilución
• Microdilución
–Medio sólido
• Difusión
ANTIBIOGRAMA
• Antibiótico
• Microorganismo
• Soporte: medio de cultivo
     
Antibiótico. Concentraciones decrecientes
(g/ml)
Inóculo microbiano
+
     
INCUBACIÓN
32 16 8 4 2 1 0,5 0,25 0,12
DILUCIÓN
MEDIO
LÍQUIDO.
MACRODILUCIÓN
  
  
CMI
CMI: Concentración Mínima
Inhibitoria: La concentración más baja
de antibiótico capaz de inhibir el
crecimiento microbiano
32 16 8 4 2 1 0,5 0,25 0,12
  
  
CMI
INCUBACIÓN
CMB
32 16 8 4 2 1 0,5 0,25 0,12
CMB
CMI: Concentración Mínima
Bactericida: La concentración más
baja de antibiótico capaz de matar al
99,9 % de las bacterias
ANTIBIOGRAMA
MICRODILUCIÓN
DILUCIÓN
MEDIO
LÍQUIDO.
MICRODILUCIÓN
     
Antibiótico. Concentraciones decrecientes
(g/ml)
     
INCUBACIÓN
32 16 8 4 2 1 0,5 0,25 0,12
Inóculo bacteriano ( , )
+
DILUCIÓN
MEDIO
SÓLIDO.
32 16 8 2 1 0,5 0,25 0,12
4
  
  
INCUBACIÓN
¿CMB?
32 16 8 4 2 1 0,5 0,25 0,12
¿CMI?
CMI?
     

 

CMI?
32 16 8 2 1 0,5 0,25 0,12
4

CMB?
DILUCIÓN EN MEDIO SÓLIDO
Método de Difusión en Disco (Baeur-
Kirby)
• Es el mas utilizado.
• Prueba la inhibición o resistencia de los
microorganismos, enfrentándolos con los medicamentos
que se encuentran impregnados en pequeños discos.
• Consiste en sembrar la bacterias aislada
del paciente infectado sobre una placa de
agar con un sensidisco.
• Cantidad: 12 unidades en placas de 150mm y 5
unidades en placas se 100mm.
• Se incuba por 24 horas, si se observan
halos, se prosigue con la medición.
Medición de los halos
Se usa una regla y se
mide el diámetro del
halo de inhibición
partiendo de desde
donde está el disco de
antibiótico hasta donde
se inhibió el
crecimiento.
La longitud obtenida
después se
compararán con
estándares que nos
dirán si el
medicamento será
Lectura e interpretación de los
resultados
Categorías de
interpretaron:
Sensible: El
microorganismo presenta un
gran área de inhibición
causada por el fármaco. 95%
éxito
Intermedio: Se presenta
un halo de inhibición mas
reducido.
Resistente: Presenta muy
poco o casi nada de halo.
Antibiótico Resistente Intermedia Susceptible
Ampicilina ≤ 13 14 - 16 ≥ 17
Amikacina ≤ 14 15 – 16 ≥ 17
Sulfisoxasol ≤ 12 13 - 16 ≥ 17
Gentamicina ≤ 12 13 – 14 ≥ 15
Cloranfenicol ≤ 12 13 - 17 ≥ 18
Ceftriaxona ≤ 12 14 – 20 ≥ 21
Ciprofloxacin
a
≤ 15 16 - 20 ≥ 21
Tetraciclina ≤ 14 15 - 18 ≥ 19
Acido
Nalidixico
≤ 13 14 – 18 ≥ 19
Estrptomicina ≤ 11 12 – 14 ≥ 15
anamicina ≤ 13 14 - 17 ≥ 18
Trimetroprim/
Sulfametoxas
ol
≤ 10 11 – 15 ≥ 16
Pregunta de
investigación
Hipótesis
Materiales
Métodos
Objetivos del
estudio
Discusión
Conclusiones
Conceptos
Resultados
Análisis de V de Gowin del artículo
Susceptibilidad antibiótica de las bacterias causantes de
infecciones odontogénicas
Clase-de-Antibiograma.pptx

Clase-de-Antibiograma.pptx

  • 1.
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    • Son métodosin Vitro que determinan la susceptibilidad de los microorganismos a una variedad de agentes antimicrobianos.
  • 3.
    • El primerobjetivo (terapéutico) del antibiograma es el de medir la sensibilidad de una cepa bacteriana que se sospecha es la responsable de una infección a uno o varios antibióticos. • El segundo objetivo (epidemiológico) del antibiograma es el de seguir la evolución de las resistencias bacterianas. Es necesario detectar el aumento de los niveles de resistencia en los aislamientos clínicos para tomar medidas correctoras.
  • 4.
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    ANTIBIOGRAMA. MÉTODOS • Diluciones –Medio líquido •Macrodilución • Microdilución –Medio sólido • Difusión
  • 6.
  • 7.
         Antibiótico. Concentraciones decrecientes (g/ml) Inóculo microbiano +       INCUBACIÓN 32 16 8 4 2 1 0,5 0,25 0,12 DILUCIÓN MEDIO LÍQUIDO. MACRODILUCIÓN
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         CMI CMI: Concentración Mínima Inhibitoria: La concentración más baja de antibiótico capaz de inhibir el crecimiento microbiano 32 16 8 4 2 1 0,5 0,25 0,12
  • 9.
         CMI INCUBACIÓN CMB 32 16 8 4 2 1 0,5 0,25 0,12
  • 10.
    CMB CMI: Concentración Mínima Bactericida:La concentración más baja de antibiótico capaz de matar al 99,9 % de las bacterias
  • 11.
  • 12.
         Antibiótico. Concentraciones decrecientes (g/ml)       INCUBACIÓN 32 16 8 4 2 1 0,5 0,25 0,12 Inóculo bacteriano ( , ) + DILUCIÓN MEDIO SÓLIDO. 32 16 8 2 1 0,5 0,25 0,12 4
  • 13.
         INCUBACIÓN ¿CMB? 32 16 8 4 2 1 0,5 0,25 0,12 ¿CMI?
  • 14.
    CMI?          CMI? 32 16 8 2 1 0,5 0,25 0,12 4  CMB? DILUCIÓN EN MEDIO SÓLIDO
  • 16.
    Método de Difusiónen Disco (Baeur- Kirby) • Es el mas utilizado. • Prueba la inhibición o resistencia de los microorganismos, enfrentándolos con los medicamentos que se encuentran impregnados en pequeños discos.
  • 17.
    • Consiste ensembrar la bacterias aislada del paciente infectado sobre una placa de agar con un sensidisco. • Cantidad: 12 unidades en placas de 150mm y 5 unidades en placas se 100mm. • Se incuba por 24 horas, si se observan halos, se prosigue con la medición.
  • 18.
    Medición de loshalos Se usa una regla y se mide el diámetro del halo de inhibición partiendo de desde donde está el disco de antibiótico hasta donde se inhibió el crecimiento. La longitud obtenida después se compararán con estándares que nos dirán si el medicamento será
  • 19.
    Lectura e interpretaciónde los resultados Categorías de interpretaron: Sensible: El microorganismo presenta un gran área de inhibición causada por el fármaco. 95% éxito Intermedio: Se presenta un halo de inhibición mas reducido. Resistente: Presenta muy poco o casi nada de halo.
  • 20.
    Antibiótico Resistente IntermediaSusceptible Ampicilina ≤ 13 14 - 16 ≥ 17 Amikacina ≤ 14 15 – 16 ≥ 17 Sulfisoxasol ≤ 12 13 - 16 ≥ 17 Gentamicina ≤ 12 13 – 14 ≥ 15 Cloranfenicol ≤ 12 13 - 17 ≥ 18 Ceftriaxona ≤ 12 14 – 20 ≥ 21 Ciprofloxacin a ≤ 15 16 - 20 ≥ 21 Tetraciclina ≤ 14 15 - 18 ≥ 19 Acido Nalidixico ≤ 13 14 – 18 ≥ 19 Estrptomicina ≤ 11 12 – 14 ≥ 15 anamicina ≤ 13 14 - 17 ≥ 18 Trimetroprim/ Sulfametoxas ol ≤ 10 11 – 15 ≥ 16
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    Pregunta de investigación Hipótesis Materiales Métodos Objetivos del estudio Discusión Conclusiones Conceptos Resultados Análisisde V de Gowin del artículo Susceptibilidad antibiótica de las bacterias causantes de infecciones odontogénicas