Realizado para el Curso: Fisiología Animal - UNT - ZOOTECNIA - 2013.
IMPORTANTE: Este documento ha sido realizado con libros de consulta y documentos físicos y/o en línea. Si no se encuentra debidamente referenciado, las disculpas respectivas a los autores.
Referénciame en tu Bibliografía si te ha servido el material.
Recomienda este documento.
Parte 3.2 del Módulo VI del Diplomado en Hematología y Banco de Sangre.
Ponente: Mblgo. José Chafloque Chafloque
Fecha: 25 de Octubre de 2015. Trujillo - Perú.
La biometría hemática completa, también llamada hemograma o conteo sanguíneo completo, consta de tres partes; la serie roja, serie blanca y serie plaquetaria.
Dentro de la serie blanca, podemos encontrar el conteo total y el diferencial. Aquí encuentran los detalles sobre la diferenciación de leucocitos.
Olvidé poner bibliografías, pero quiero hacer notar que esto no es de mi autoría, sino que recopilé la información de varios sitios en internet y hasta consulté un par de libros.
Parte 3.2 del Módulo VI del Diplomado en Hematología y Banco de Sangre.
Ponente: Mblgo. José Chafloque Chafloque
Fecha: 25 de Octubre de 2015. Trujillo - Perú.
La biometría hemática completa, también llamada hemograma o conteo sanguíneo completo, consta de tres partes; la serie roja, serie blanca y serie plaquetaria.
Dentro de la serie blanca, podemos encontrar el conteo total y el diferencial. Aquí encuentran los detalles sobre la diferenciación de leucocitos.
Olvidé poner bibliografías, pero quiero hacer notar que esto no es de mi autoría, sino que recopilé la información de varios sitios en internet y hasta consulté un par de libros.
Hemograma interpretación y anomalías
Actualización de interpretación de hemograma, sus anomalías y condiciones del paciente a tener presente para evitar errores.
Parte 02 del Módulo V del Diplomado en Hematología y Banco de Sangre.
Ponente: Dr. Pedro Mercado Martinez
Fecha: 27 de Setiembre de 2015. Trujillo - Perú.
Formacion de la orina por los riñones I, filtracion glomerular, flujo sanguin...Filippo Vilaró
Formacion de la orina por los riñones I, filtracion glomerular, flujo sanguineo renal y su control. fisiologia de gayton capitulo 26, la mayoria de las personas saben que los riñones tienen una funcion importante eliminar del cuerpo los materiales de desecho que se han ingerido o que a producido el metabolismo. en lo que respecta al agua y casi todos los electrolitos del cuerpo, el equilibrio entre los ingresos y las salidas lo mantienen en gran medida los riñones. residente de anetesiologia y reanimacion de la universidad metropolitana de barranquilla colombia año 2015. aqui nos basamos exclusivamente sobre todo en el control de la excrecion renal del agua, electrolitos y productos de desechos metabolicos, lo riñones ejercen numerosas funciones homeostasicas.
Hemograma interpretación y anomalías
Actualización de interpretación de hemograma, sus anomalías y condiciones del paciente a tener presente para evitar errores.
Parte 02 del Módulo V del Diplomado en Hematología y Banco de Sangre.
Ponente: Dr. Pedro Mercado Martinez
Fecha: 27 de Setiembre de 2015. Trujillo - Perú.
Formacion de la orina por los riñones I, filtracion glomerular, flujo sanguin...Filippo Vilaró
Formacion de la orina por los riñones I, filtracion glomerular, flujo sanguineo renal y su control. fisiologia de gayton capitulo 26, la mayoria de las personas saben que los riñones tienen una funcion importante eliminar del cuerpo los materiales de desecho que se han ingerido o que a producido el metabolismo. en lo que respecta al agua y casi todos los electrolitos del cuerpo, el equilibrio entre los ingresos y las salidas lo mantienen en gran medida los riñones. residente de anetesiologia y reanimacion de la universidad metropolitana de barranquilla colombia año 2015. aqui nos basamos exclusivamente sobre todo en el control de la excrecion renal del agua, electrolitos y productos de desechos metabolicos, lo riñones ejercen numerosas funciones homeostasicas.
INTRODUCCIÓN
La velocidad de sedimentación globular (VSG) es una propiedad física de la sangre. Si se dispone de un tubo de sangre con anticoagulante y se deja en reposo se observa que después de un cierto tiempo las células se sedimentan formando 2 fases bien de limitadas que corresponden al plasma y a las células constituidas prácticamente en su totalidad por hematíes. La VSG es equivalente a la longitud del recorrido descendente de la parte superior de la columna de hematíes en un intervalo determinado de tiempo y varios factores contribuyen a este valor.
FUNDAMENTO
El test de velocidad de sedimentación globular (VSG) mide la sedimentación de eritrocitos en su plasma nativo.
VSG es un test no específico que puede ser utilizado para detectar un amplio rango de enfermedades y para monitorear el curso evolutivo de ciertas enfermedades crónicas como los procesos inflamatorios crónicos (artritis reumatoidea, polimialgia reumática y tuberculosis) o la respuesta a la terapia, por ejemplo con citostáticos (enfermedad de Hodgkin, linfomas y mieloma múltiple). Sin embargo en ocasiones cuadros tan graves como neoplasias y la cirrosis pueden presentar una VSG normal. Constituye uno de los tests más utilizados como screening en el laboratorio clínico. Se trata de un método sencillo para realizar y que requiere equipamiento simple.
OBJETIVO
o Que el estudiante realice el procedimiento de cómo se procesa la velocidad de sedimento globular.
o Que el estudiante conozca e investigue por que se realiza este tipo de prueba en el laboratorio clínico.
o Que el estudiante aprenda a realizar la lectura del VSG.
MATERIALES UTILIZADOS EN LA PRÁCTICA
Sangre total (extracción venosa)
Solución anticoagulante
Pipeta de eritrosedimentación (pipeta de Westergreen)
Soporte que inmovilice la pipeta en posición vertical.
Cronómetro
Aguja
Ligadura
Alcohol
Algodón
INDUMENTARIA
Mandilón
Guantes
INSTRUCTIVO PARA LA OBTENCIÓN DE SANGRE PERIFÉRICA POR PUNCIÓN VENOSA
1. Durante la toma de muestra deben guardarse las más estrictas normas de higiene.
2. El material descartable a usar se abrirá sólo al momento de su utilización y, una vez manipulado, no podrá guardarse nuevamente aun cuando se lo considere nuevo.
3. Una vez realizada la toma de muestra, descartar inmediatamente los materiales usados en recipientes para ese fin.
4. Al momento de hacer la extracción colocarse los guantes desechables, los cuales se mantendrán puestos durante todo el procedimiento.
5. Antes de iniciar la toma de muestra, tener TODO el material preparado.
6. Elegir una vena bien visible en el antebrazo, localizándola visualmente y por palpación.
Colocar el lazo y volver a palpar la vena, indicarle al paciente que abra y cierre el puño para facilitar la extracción.
7. Una vez identificada la vena, limpiar el área circundante con algodón empapado en alcohol. Dejar secar.
Trabajo sobre temperatura - Zootecnia - UNTMiguel Ortega
Realizado para el Curso: Fisiología Animal - UNT - ZOOTECNIA - 2013.
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Estructura y funcion de los ojos -ZootecniaMiguel Ortega
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Realizado para el Curso: Reproducción Animal - UNT - ZOOTECNIA - 2014.
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Realizado para el Curso: Genética Animal - UNT - ZOOTECNIA - 2014.
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Observacion de periodo de mitosis en los vegetalesMiguel Ortega
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Informe 1 Práctica Determinar la Presencia de ADN en las raíces de cebollasMiguel Ortega
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Realizado para el Curso: Fisiología Vegetal - UNT - ZOOTECNIA - 2014.
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Practica 22 de mayo 2014. Recuento Globular ...Miguel Ortega
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Practica 03 de Julio 2014 Metabolismo BasalMiguel Ortega
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Realizado para el Curso: Enfermedades Infecciosas en Animales - UNT - ZOOTECNIA - 2014.
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Realizado para el Curso: Cultivo de Pastos y Forrajes - UNT - ZOOTECNIA - 2014.
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Trabajo para recursos naturales 06 diciembre 2013Miguel Ortega
Realizado para el Curso: Recursos Naturales - UNT - ZOOTECNIA - 2013.
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Realizado para el Curso: Enfermedades Infecciosas y Parasitarias - UNT - ZOOTECNIA - 2014.
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Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3.pdfsandradianelly
Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestr
ROMPECABEZAS DE ECUACIONES DE PRIMER GRADO OLIMPIADA DE PARÍS 2024. Por JAVIE...JAVIER SOLIS NOYOLA
El Mtro. JAVIER SOLIS NOYOLA crea y desarrolla el “ROMPECABEZAS DE ECUACIONES DE 1ER. GRADO OLIMPIADA DE PARÍS 2024”. Esta actividad de aprendizaje propone retos de cálculo algebraico mediante ecuaciones de 1er. grado, y viso-espacialidad, lo cual dará la oportunidad de formar un rompecabezas. La intención didáctica de esta actividad de aprendizaje es, promover los pensamientos lógicos (convergente) y creativo (divergente o lateral), mediante modelos mentales de: atención, memoria, imaginación, percepción (Geométrica y conceptual), perspicacia, inferencia, viso-espacialidad. Esta actividad de aprendizaje es de enfoques lúdico y transversal, ya que integra diversas áreas del conocimiento, entre ellas: matemático, artístico, lenguaje, historia, y las neurociencias.
Recuento globular, hematocrito, Dosaje de hemoglobina, Constantes Corpusculares y velocidad de sedimentación en vertebrados
1. “Recuento globular, hematocrito,
Dosaje de hemoglobina, Constantes
Corpusculares y velocidad de
sedimentación en vertebrados”
AUTOR(es): ORTEGA RAMOS Miguel
PHOCO Magali
RUBIO GONZALES Wilson
PROFESOR: Dr. CASTILLO VIERA SEGUNDO FELIX
CURSO: FISIOLOGÍA ANIMAL
INSTITUCIÓN: Universidad Nacional de Trujillo – Facultad de
CIENCIAS BIOLÓGICAS
Trujillo – Perú
2014
2. INTRODUCCIÓN
La sangre es un fluido orgánico de gran importancia, debido a que es un valioso medio usado
para la valoración del desempeño normal del organismo, teniendo como fundamento que no
existe afección que deje de comprometer sus características.
En el desarrollo de la presente práctica, observaremos las técnicas más comunes que son
utilizadas para cuantificar y valorar sus componentes., de los cuales se realizaron los análisis
hematológicos en humanos.
Recuento globular:
Procedimiento que sirve para determinar el número de elementos formes por mm cubico de
sangre, este recuento se da para glóbulos rojos, glóbulos blancos y plaquetas.
Hematocrito:
Es la relación porcentual que existe entre el volumen del glóbulo rojo y el plasma sanguíneo.
Dosaje de Hemoglobina:
Sirve para poder determinar la cantidad porcentual de hemoglobina en la sangre. Existen
diferentes métodos, de los cuales, el de mayor uso por su grado de simplicidad y eficiencia
es el Método de la hematina alcalina.
Constantes Corpusculares:
Son los valores promedios de: Volumen del hematíe, cantidad de hemoglobina dentro del
hematíe y la concentración de la hemoglobina dentro de los glóbulos rojos. Es importante,
ya que permite precisar algunos cuadros de anemia.
Velocidad de Eritrosedimentación:
Es la velocidad por la cual sedimentan los glóbulos rojos cuando la sangre extravasada se le
coloca algún tipo de anticoagulante.
Es importante precisar que la velocidad de Eritrosedimentación se fe afectada por diferentes
factores como: temperatura, fibrinógeno, tamaño del eritrocito, etc.
3. OBJETIVOS
.- Observar e identificar las características y los mecanismos de la coagulación
sanguínea.
.- Determinar los factores de coagulación en la sangre.
.- Cuantificar por procedimientos de laboratorio El número de Glóbulos Rojos y
Glóbulos Blancos, el Volumen hematocrito, el Dosaje de Hemoglobina, la Lectura en
fotocolorímetro Beckman y los Constantes Corpusculares presentes en la sangre.
MATERIALES
.- Anticoagulantes
EDTA: ácido etilendiaminotetraacético; forma un compuesto con el Calcio
evitando la coagulación.
Citratos: De acción semejante a la anterior.
Heparina: Posee afinidad por las proteínas, como una antitrombina y
antitromboplastina.
.- Soluciones
Solución de Hayem´s: Líquido diluyente para glóbulos rojos. (200 ml)
Solución de türk: Líquido diluyente para glóbulos blancos (100 ml)
Solución de Hidróxido de Amonio al 0.4 %.
.- Lanceta de punción y jeringa hipodérmica.
.- Pipetas para glóbulos blancos y rojos.
.- Cámara cuenta glóbulos
.- Tubos de Hematocrito
.- Micropipetas para el dosaje de hemoglobina
.- Tubos para determinar la velocidad de sedimentación
.- Centrifuga
.- Fotocolorímetro
.- Microscopio
.- Pipetas Pasteur
4. .- Laminillas cubreobjetos
.- Tubos de ensayo
.- Animales de Experimentación
Para el desarrollo de esta práctica, se optó por la utilización de sangre humana.
MÉTODOS
Obtención de la muestra de sangre:
La técnica de obtención de muestra sanguínea que se desarrollo fue: Puntura
de cualquier vaso sanguíneo superficial.
Para eso, la zona elegida (zona del brazo) se desinfecta con alcohol yodado, y
después, una vez de extraer la sangre, protegemos para proteger de la
contaminación el instrumental punzante.
Para evitar la coagulación de la sangre, se hace uso de un anticoagulante.
Recuento de glóbulos rojos
Agitar cuidadosamente el frasco con sangre. Aspirar la sangre hasta la marca
de 0.5 y limpiar cualquier exceso de sangre.
Llenar la pipeta con la solución Hayem´s, quedando así una disolución de la
sangre de 1/200. Luego, sacar el tubo de goma de la pipeta, y mezclamos muy
cuidadosamente.
Poner en contacto una gota en el borde del cubreobjetos que se ha colocado
sobre la cámara, de manera que el líquido llene la cámara.
Colocar la cámara en el microscopio, y localizar el campo de visión. Contar
las células en los cuatro campos de las esquinas el del centro el de 16 cuadritos
cada uno. Incluir en cada cuadrado las células que se encuentran en la línea
superior e izquierda de cada cuadrado.
Calcular el número promedio de células por cada cuadrado pequeño.
Recuento de glóbulos blancos
La técnica de tomar la muestra es la misma que para eritrocitos, pero la pipeta
usada tiene mayor diámetro y cuando se llena con sangre hasta la marca 0,5,
se diluye con la solución de türk, quedando una dilución de 1/20
Colocar el líquido en la cámara y contar los leucocitos de los cuatro mm. De
las esquina, y luego sumarlos.
Realizar el cálculo correspondiente para glóbulos blancos.
5. Volumen Hematocrito
En un tubo de Wintrobe para hematocrito, llenar con sangre citratada hasta la
marca 100, centrifugar por 30 min, hasta que el volumen de eritrocito
permanezca invariable, y luego realizar la lectura.
Dosaje de Hemoglobina
Con una micropipeta para Hemoglobina, tomar 0,02 ml de sangre, y luego
pasarlo varias veces por un tubo, el cual contiene una solución de NH4(OH),
luego aflorar con a 5 ml con dicha solución. Dejar en reposos por un periodo
de 5 min, después, leer en fotocolorímetro.
RESULTADOS
Recuento de Glóbulos Rojos:
N: Numero de hematíes en los 80 cuadritos contados (N = 531)
Factor por mm cubico: 10000
N x 10000
Resultado: 5310000 (número de glóbulos rojos por mm cubico).
Recuento de Glóbulos Blancos:
N: Numero de glóbulos blancos contados en los cuatro milímetros cuadrados.
(N = 108)
Factor por milímetro cubico: 50
N x 50
Resultado: 5400 (número de glóbulos blancos por mm cubico).
Volumen hematocrito
Dosaje de Hemoglobina
Lectura en fotocolorímetro Beckman: 11.6 (cantidad de gramos por cada
10ml)
Constantes Corpusculares
V.C.M:
Volumen medio correspondiente a un eritrocito: 101.69 micras cubicas
Hb.C.M:
6. Cantidad media de Hemoglobina correspondiente a un eritrocito: 22.02
microgramos
C.Hb.C.M:
Concentración de la Hemoglobina dentro del eritrocito: 21.65 %
Velocidad de Eritrosedimentación
11:35 am (Inicio del procedimiento)
12:02 pm (Finalizado del procedimiento)
4mm en 30 min
Resultado: 8 mm en 1 hora (Resultado de Eritrosedimentación).
CONCLUSIONES
.- Los mecanismos que dan resultado para la coagulación de la sangre son:
Vasoconstricción
Formación del tapón plaquetario
Producción de una malla de fibrina, el cual envuelve el tapón plaquetario.
.- Los factores de coagulación de mayor importancia son:
Factores
F I Fibrinógeno: Proteína soluble al plasma
F II Protrombina: Adherida a la membrana
plaquetaria
F III Se libera del endotelio vascular a causa de
una lesión.
F IV Calcio
F V Proacelerina, adherida a la membrana
plaquetaria.
F VI -Sin Datos-
F VII Proconvertina
F VIII Factor antihemofílico. Adherido a la
membrana plaquetaria.
F IX Antihemofílico B. Adherido a la membrana
plaquetaria.
F X Factor de Stuart-Power. Adherido a la
membrana plaquetaria.
F XI Factor antihemofílico C
F XII Factor de Hageman.
F XIII Factor estabilizante de la fibrina.
7. .- Cuantificación de los procedimientos en laboratorio
Recuento de Glóbulos Rojos 5310000 (número de glóbulos rojos por
mm cubico)
Recuento de Glóbulos Blancos 5400 (número de glóbulos blancos por
mm cubico)
Dosaje de Hemoglobina 11.6 (cantidad de gramos por cada 10ml)
Constantes Corpusculares
V.C.M 101.69 micras cubicas
Hb.C.M 22.02 microgramos
C.Hb.C.M 21.65 %
Velocidad de Eritrosedimentación 8 mm en 1 hora (Resultado de
Eritrosedimentación)
8. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
“Principios de la Fisiología Animal” – Cristopher D. Moyes – PEARSON EDUCACIÓN
S.A – Madrid, España, 2007
“Fisiología Animal Mecanismos y Adaptaciones” – 4° Edición – David Randall –
PANAMERICANA – Madrid, España, 2002
REREFERENCIAS DE PÁGINAS WEB
Cátedra de Fisiología I – Facultad de Medicina U.A.E.M:
http://www.kardiagnostx.com/documentos/Hemato_36.pdf
Tema 02. Coagulación sanguínea:
http://ocw.um.es/cc.-de-la-salud/fisiologia-animal/Material%20de%20clase/bloque-
1-cap-2-tema-2.-coagulacion-sanguinea.pdf
Estado Actual del mecanismo de la coagulación sanguínea – Instituto de Hematología e
Inmunología:
http://bvs.sld.cu/revistas/hih/vol17_2_01/hih01201.pdf
10. Figura2. Extraccion de sangre, para colocar en las diferentes pipetas. (Fuente: Miguel
Ortega)
Figura3. Sangre diluida con Nh4(OH) (Fuente: Miguel Ortega)