Contiene Introducción, patogenia, materiales, objetivos, procedimiento y evolución. Fue una practica realizada en un conejo.

1. Grado y grupo: 4º “A”
Universidad Autónoma de Tlaxcala
Facultad de Ciencias de la Salud
Licenciatura en Medico Cirujano
Unidad de Aprendizaje: Laboratorio de Inmunología Clínica
Equipo:
• Cerón Lara Irán Yelitza
• Duran Barranco Diana Isabel
• Hernández Texis Diana Guadalupe
• Muñoz Ahuatzin Noe
• Rodríguez Hernández Lucy Zahira
• Sánchez Andrade Flavio Jesús
Tema: Trasplante de Tejidos
Catedrático: Dr. José Vázquez Talavera

2. El trasplante de tejidos es
una técnica que se está
realizando ampliamente
por todo el mundo.
El inconveniente de esta
técnica es el rechazo del
órgano por el sistema inmune
del receptor .

3. Las proteínas contra las cuales el sistema inmune
del receptor se activa son los antígenos de
histocompatibilidad que se clasifican de clase 1 y
de clase 2, los de clase uno se encuentra en todas
las células y los de clase dos solo en las células
inmunes (LB,LT y células presentadoras),existen
varias clases en el 1 son HLA-A , HLA -B., HLA-
C, y todos tienen subclases. Los de tipo 2 son
HLA-DR, HLA-DP y HLA-DQ, y también
tienen varios subclases. Para que un órgano
trasplantado sea aceptado requiere un alto
porcentaje de compatibilidad entre el receptor y el
donador, motivo por el cual la mayoría de los
trasplantes son entre familiares.

4. Para que un órgano no sea rechazado requiere el donador ser inmunosuprimido a base de
algunas drogas, sin embargo a pesar de este tratamiento existe el riesgo que con el tiempo el
órgano sea rechazado por los antigenos de histocompatibilidad no compatibles, el
mecanismo seria el siguiente:
El reconocimiento de los antigenos no compatibles
por el LT CD-8 o citotóxico produce sus perforinas
para provocar lisis celular en el órgano
trasplantado,
El otro mecanismo es mediante el reconocimiento
por el LT CD-4 también en los antígenos no
compatibles y al estimularse va a producir sus
citocinas que estimularan al LB para que produzca
anticuerpos contra estos antígenos t activen
complemento y también produzcan lisis celular e
inflamación

5. 1.- Que el alumno
comprenda la base
teórica del rechazo de
un trasplante
2.- Que el alumno
realice un trasplante de
piel de un conejo a otro
3.- Que el alumno
observe la evolución del
rechazo del injerto

6. Estuche de
disección estéril
Seda 3 ceros (2
piezas)
Guantes estériles
(3 pares)
Gorro y
cubrebocas ( 7 de
cada uno)
Campo hendido
desechable
Gasas una caja
con 1
Jeringa
desechable de
insulina ( 2 )
Una venda de 5
cm
Suero fisiológico
para toda la
sección
Benzal Zoletil 50
Xilocaina como
anestesia local, un
frasco por sección

7. 1.- Se rasura en la región
dorso lateral un área cuadrada
de 3 cm, antes de llegar a
laboratorio.

8. 2.- El instrumentista prepara el
instrumental quirúrgico (disección,
corte, hemostasia)
3.- El anestesiólogo prepara la
primera dosis de zoletil 50 (la
preparación de la dosis fue de .5
ml de zoletil diluida en 2.5ml de
solución fisiológica, aplicando un
mililitro cada 20 minutos).

9. 4.- Se administra la primera dosis de anestesia (intramuscular en el muslo del
miembro inferior derecho del conejo).

10. 5.- Mientras se produce la inducción
anestésica el cirujano y primer ayudante
ponen el campo Hendido y se dibuja con un
plumón un área cuadrada de 2 cm de lado
rasurado
6.- Se hace asepsia en el área de la incisión y se
aplica lidocaína en el perímetro de la incisión
como anestésico local.

11. 7.- El cirujano procede a realizar
la disección con la ayuda de bisturí
8.- La disección se realiza con
precaución para no dañar la piel y
planos profundos

12. 9.- Se realiza la segunda administración de
anestesia (misma dosis punto 3)
10.- verificar la hemostasia y segur disecando.
11.- Los cirujanos de ambos equipos deberán
ponerse de acuerdo para hacer el corte final al
mismo tiempo

13. 12.- Rápidamente se hace el
intercambio de la piel disecada
13.- Se administra la tercera dosis de
anestesia (misma dosis punto 3

14. 14.- Una vez intercambiada la piel, se
sutura el trasplante con punto simple,
iniciando por los extremos para estirar la
piel y quede de forma correcta.
15.- Se continúa la sutura con punto
simple sobre el perímetro de la zona
hasta finalizar completamente

15. 16.- Una vez finalizado el procedimiento, se venda la herida del conejo

16. 17.- El conejo se mantendrá en reposo, no se deberá exponer la herida a la
intemperie para evitar infecciones.
A los seis días de la cirugía se empezara a retirar puntos

17. DESCRIPCIÓN 08:00 HRS 16:00 HRS 23:59 HRS
DÍA 1 DESPUÉS DEL TRASPLANTE
SÁBADO 5 DE MAYO DEL 2018.
Podemos observar que como tal
en el sitio del trasplante no hay
signos de rechazo.
DÍA 2 DESPUÉS DEL TRASPLANTE
DOMINGO 6 DE MAYO DEL 2018.
En las observaciones de esté día
percibimos que empezaba a
aparecer una coloración oscura en
algunas áreas de la zona del
trasplante.
DÍA 3 DESPUÉS DEL TRASPLANTE
LUNES 7 DE MAYO DEL 2018.
Este día la coloración se alcanzaba
a percibir en zonas mas
numerosas que en el día anterior.

18. DESCRIPCIÓN EVIDENCIA
DÍA 4 DESPUÉS DEL TRASPLANTE
MARTES 8 DE MAYO DEL 2018.
Como se puede observar la coloración negra apareció en
una zona más grande a comparación del día 2; el conejo se
mostraba inquieto y con sensación de prurito en el lugar
del trasplante y con conductas de querer rascarse.
DÍA 5 DESPUÉS DEL TRASPLANTE
MIERCOLES 9 DE MAYO DEL 2018.
En este día presentó similitud al día 4 de posoperatorio
puesto que en el lugar del trasplante la coloración
continuaba presente y el conejo se mostraba inquieto así
como prurito en el sitio anatómico donde se realizó la
intervención quirúrgica.

19. La zona anatómica
(dorso-lateral)
presentaba coloración
oscura a partir del 2do
día del posoperatorio.
El injerto perdió
viabilidad, esto se
manifiesta por la
coloración.
Hubo perdida de
circulación y
desecación.
RECHAZO DE INJERTO

20. 1.-Stites,D.P. ; Terr, A.I. : Parslow T.G.: Inmunología Básica y Clínica. Edit. Manual Moderno. 9ª. Ed.
1998
2.-Rose, N R.; Friedman, H. El laboratorio en Inmunología Clínica. Edit. Panamericana. 2a. Ed. 1984
3.-Stites,D.P Inmunología Humana y Básica. Edit. Manual Moderno. 1ª. Ed. 1994
4.-Rojas M. W. Inmunología. Edit. Corporación para investigaciones biológicas. 8ª. Ed. 1990
5.-Barret, J.T. ; Inmunología Médica. Edit. Interamericana Mc Graw – Hill . Ed. 1ª. 1993
6.- Janeway,Jr, Ch. Inmunobiología,4ª Ed. Edit. Masson ,l999, pag, 513-517