Este documento presenta los resultados de varias prácticas realizadas para identificar carbohidratos. Se realizaron pruebas con la bencidina, la anilina, Tollens, Fehling y Benedict para diferentes carbohidratos como la xilosa, glucosa, maltosa y fructuosa. Los resultados mostraron que la xilosa y L-arabinosa dieron positivo con la anilina, mientras que solo la glucosa anhidra dio positivo con Fehling. Con Benedict, la maltosa fue positiva. Las pruebas ayudaron a identificar los

1. PRACTICA 3. IDENTIFICACION DE
CARBOHIDRATOS
CETIS 62
LABORATORIO CLINICO
“BIOQUIMICA”
MARTA GABRIELA ACEVES MORALES
6 – “E” EQUIPO: 4
INTEGRANTES:
 MORENO GUTIERREZ ARIADNA LIZBETH
 MORENO PEREZ ANA MARIELA
 RODRIGUEZ BALBUENA MARIANA
 VARGAS DAMIAN KARLA MAYTE
 ZUÑIGA RAMIREZ MOISES EMMANUEL

2.  OBJETIVO: Realizar diferentes experimentos, donde se identifiquen, las
características de los carbohidratos.
NOMENCLATURA Y CLASIFICACION DE CARBOHIDRATOS
Los nombres de los carbohidratos se caracterizan por la terminación “osa”. Los
principales grupos de carbohidratos se designan como monosacáridos. Los
monosacáridos comprenden todos los carbohidratos sencillos que no se
pueden hidrolizarse en sustancias de menor estructura molecular. Los
disacáridos incluyen aquellos carbohidratos que pueden hidrolizarse en dos
azucares simples.
REACCIÓN DE LA BENCIDINA
La bencidina es un producto manufacturado que no ocurre naturalmente en el
medio ambiente. Es un sólido cristalino de color amarillo grisáceo, blanco o rojo
grisáceo. En el medio ambiente, la bencidina se encuentra en estado libre, o como
sal. La bencidina se usó para producir tinturas para telas, papel y cuero.
La bencidina es una sustancia que cristaliza con una molécula de agua si se hace
la cristalización por debajo de 60° C, y anhidrasis porque el sulfato de bencidina
es insoluble. Se emplea también para investigar la adición de agua oxigenada a la
leche y para identificar la sangre en líquidos biológicos, empleada también en la
preparación de colorantes, para perfumar jabones baratos y en las cremas para el
calzado. Su constante criocóspica (6.9; agua 1.8) lo hace útil, junto con su poder
dis
olv
ent
e,
en
crio
metría
MATERIAL REACTIVOS
 5 tubos de ensayo  Reactivo de bencidina

3.  1 gradilla
 6 pipetas de1 ml
 1 baño maría
 Carbohidratos al 1%
CARBOHIDRATOS:
1. Galactosa
2. Xilosa
3. Glucosa
4. Maltosa
5. Fructuosa
6. Sacarosa
7. Dextrosa
8. Miel
9. L arabinose
TÉCNICA
1. En un tubo de ensayo colocar 0.5ml del reactivo de bencidina.
2. Añadir 1 o 2 gotas de solución de carbohidrato.
3. Calentar en agua hirviendo durante varios minutos, inmediatamente
después enfriar con agua.
4. Si se forma un color rosa o rojo la prueba es positiva.
NOTA: Esta prueba parece muy satisfactoria para pentosas, las hexosas
comunes no interfieren en esta prueba.
RESULTADOS
Carbohidrato Resultado
Galactosa Negativo
Xilosa Negativo
Glucosa
Anhidra
Negativo
Maltosa Negativo
Fructosa Negativo
Sacarosa Negativo

4. Dextrosa Negativo
Miel Negativo
L-Arabinose Negativo
Observaciones
En esta primera práctica observamos que ningún carbohidrato reaccionó, el color
de cada tubo estuvo igual que al principio no se observó ningún cambio al añadirle
la bencidina.
La formación de color se toma como resultado positivo e indica la presencia del
compuesto mientras que la no formación de color es indicativo de su ausencia, por
lo tanto el resultado es negativo.
PRUEBA DE ANILINA
Esta prueba sirve para diferenciar las pentosas de los ácidos urónicos y de las
hexosas que no dan la prueba.
Por deshidratación de las pentosas, se forman furfural, que reaccionan primero
con una molécula de anilina dando un compuesto que es una base de Schiff, de
poco color
Con otra molécula de anilina, se parte del ciclo del furano dando un compuesto
que por tener doble enlace conjugador, tiene un color rojo intenso.
Dando también la prueba positiva los polisacáridos que por hidrólisis dan
pentosas.

5. MATERIAL REACTIVOS
 5 tubos de ensayo
 1 gradilla
 3 pipetas de 5ml
 1 baño maría
 Ácido acético glacial
 Anilina
 Carbohidratos al 1%
CARBOHIDRATOS:
1. Galactosa
2. Xilosa
3. Glucosa
4. Maltosa
5. Fructuosa
6. Sacarosa
7. Dextrosa
8. Miel
9. L arabinose
TECNICA
1. Colocar 1 ml de carbohidrato.
2. Añadir 2 ml de ácido acético glacial y 3 gotas de anilina.

6. 3. Calentar a hervir durante 1 minuto la coloración roja es positiva
NOTA: Esta prueba la dan positiva las pentosas, puede servir para diferenciar
las pentosas de ácidos urónicos.
Resultados
Carbohidrato Resultado
Galactosa Negativo
Xilosa Positivo
Glucosa
Anhidra
Negativo
Maltosa Negativo
Fructosa Negativo
Sacarosa Negativo
Dextrosa Negativo
Miel Negativo
L-Arabinose Positivo
Observaciones
En esta práctica si hubo resultados positivos al realizar el procedimiento de
manera adecuada y siguiendo cada uno de los pasos , la anilina reacciono con
algunos carbohidratos como fue la xilosa y L- Arabinose ya que tomo uno color
como rojizo tomando en cuenta que la formación de color se toma como resultado
positivo e indica la presencia del compuesto.

7. “Azúcares Reductores”
(Tollens , Fehling , Benedict )
Los azúcares reductores son aquellos azúcares que poseen su grupo
carbonilo (grupo funcional) intacto, y que a través del mismo pueden reaccionar
como reductores con otras moléculas.
Todos los monosacáridos son azúcares reductores, ya que al menos tienen un -
OH hemiacetálico libre, por lo que dan positivo a la reacción con reactivo de
Fehling, a la reacción con reactivo de Tollens, a la Reacción de Maillard y
la Reacción de Benedict. Otras formas de decir que son reductores es decir que
presentan equilibrio con la forma abierta, presentan mutarrotación (cambio
espontáneo entre las dos formas cicladas α (alfa) y β (beta)), o decir que
forma osazonas
.REACCIÓN DE TOLLENS:
El reactivo se prepara por adición de hidróxido de amonio a una solución de nitrato
de plata, hasta que el precipitado formado se redisuelva. La plata y el hidróxido de
amonio forman un complejo (Ag(NH3)2OH, plata diamino), que reacciona con el
aldehído.
REACCIÓN DE FELHING
El reactivo está formado por dos soluciones llamadas A y B. La primera es una
solución de sulfato cúprico; la segunda , de hidróxido de sodio y una sal orgánica
llamada tartrato de sodio y potasio (sal de Seignette).
Cuando se mezclan cantidades iguales de ambas soluciones, aparece un color
azul intenso por la formación de un complejo formado entre el ion cúprico y el
tartrato. Agregando un aldehído y calentando suavemente, el color azul
desaparece y aparece un precipitado rojo de óxido cuproso (Cu2O).
REACCIÓN DE BENEDICT
La solución de Benedict es semejante a la de Fehling con la modificación de que
se utiliza citrato de sodio en lugar del tartrato de sodio y potasio.
Las 3 soluciones mencionadas nos sirven para distinguir los aldehídos de las
acetonas sencillas, porque las últimas no reaccionan. Pueden además indicarse
que la reducción de las soluciones permite diferenciar un aldehído de un alcohol.

8. PRUEBA DE TOLLENS
Material: Reactivos
 Tubos de ensayo Reactivo de Tollens
 Pipeta de 1ml. Carbohidratos en polvo.
 Mechero
 Baño María
Técnica
 Colocar en un tubo de ensayo 1ml de carbohidrato.
 Añadir 1 ml de reactivo de Tollens
 Agitar perfectamente
 Calentar a baño maría durante 5 minutos máximo. Observar la forma de
espejo que se forma en los positivos.
Observaciones:
Lo que observe en esta prueba de tollens fue que al añadirle el mililitro de cada
carbohidrato y después de introducirle el mililitro de reactivo de tollens lo agitamos
y tomaron los carbohidratos un color obscuro y al introducirlo al baño maría fue
Cuando cada uno de los carbohidratos comenzó a tomar el color de forma de
espejo (plateado).

9. PRUEBA DE FEHLING
MATERIAL.
 9 tubos de ensaye.
 2 pipetas de 1 ml.
 1 mechero
REACTIVOS
 Fehling “A”
 Fehling “B”
 Carbohidratos al 1 %
TECNICA.
1. Colocar en cada tubo de ensayo una pizca de los carbohidratos.
2. Añadir 1ml de Fehling “A” y 1ml de Fehling “G”
3. Mezclar bien y ponerlo a baño maría o en la flama del mechero
durante cierto tiempo.
4. Sí mira a marrón o rojo la prueba es positiva.

10. OBSERVACIONES.
En esta práctica el procedimiento se siguió al pie de la letra, las observaciones
fueron muy impactantes, la técnica como las demás era muy tardada puesto que,
eran 9 carbohidratos, y después de eso teníamos que etiquetar los tubos de
ensayo para identificarlos correctamente, para que los resultados fueran correctos
lo que hicimos fue que después de etiquetar los tubos de ensayo los unimos y los
apretamos con varias ligas, para después de eso ponerlos en baño maría y
esperar el tiempo indicado para poder observas los resultados, al ver los
resultados fueron muy notorios, puesto que observamos el cambio de coloración
de los carbohidratos, en esta práctica la coloración para que el resultado fuera
positivo tendría que ser de color marrón o rojo, así fue, solo un carbohidrato
cambio de color, este carbohidrato fue la D-GLUCOSA ANHIDRA.
PRUEBA DE BENEDICT.
MATERIAL.
 tubos de ensayo.
 Pipetas de 5 ml.
 Gradilla.
 1 baño maría.
REACTIVOS
 Reactivo de Benedict.
 Carbohidratos
PROCEDIMIENTO.
1 Colocar en los tubos de ensayo 1 ml de solución de Benedict.
2 Añadir tres gotas de cada solución de carbohidratos en cada tubo.
3 Agitar y colocar los tubos al mismo tiempo en agua hirviendo durante 3
minutos.
4 Enfriar la solución y hacer comparaciones.
5 Obsérvese el precipitado formado. Un cambio de color NO indica reacción
positiva, solo el precipitado.

11. OBSERVACIONES.
Lo que observamos en esta práctica fue que los carbohidratos no eran de forma
sólida, si no que en este caso eran de forma líquida, por eso es que en dicha
práctica medimos lo carbohidratos en mililitros.
Otra observación fue que añadimos primero la solución de Benedict y después las
gotas de carbohidratos, después de esto agitamos perfectamente para que se
mezclaran los carbohidratos y la solución indicada.
Ya después de realizado eso, pusimos los 9 tubos de ensayo en el agua hirviendo,
a partir de esto estuvimos observando los cambios de coloración, pero eso no
indica que será el resultado, para poder saber los resultados nos teníamos que dar
cuenta de cual carbohidrato con la solución era el que presentaba precipitado, en
este caso fue el carbohidrato, el resultado fue la MALTASA
RESULTADOS
(Tollens, Fehling, Benedict)
Carbohidratos Tollens Fehling Benedict
Maltosa Positivo Negativo Positivo
Glucosa anhidra Positivo Positivo Negativo
Sacarosa Positivo Negativo Negativo

12. PRUEBA DE ÁCIDO PICRICO
El ácido pícrico es un sólido cristalizado, amarillo pálido, un poco soluble en agua,
con sabor amargo (picros-amarillo)
Su descomposición explosiva, desencadena por un detonador (fulminante de
mercurio) lo hace útil como explosivo (melenita), si bien tiene el inconveniente de
corroer el alma del cañón por su carácter ácido, por lo que tiene más empleo en
bombas de aviación.
El ácido pícrico es un ácido relativamente fuerte que ataca los metales dando
picratos metálicos muy inestables y explosivos, lo que requiere proteger el acero
de abuses con un barniz o vidriados.
Los picratos de amonio C6H2(NO2)3(ONH4) y de potasio, son pocos solubles en
agua.
El picrato de amonio se utiliza como explosivo. El ácido pícrico se emplea para
teñir de amarillo la lana, como reactivo de alcaloides y proteínas (investigación de
albúminas en líquidos biológicos: reactivo de Esboch).
El ácido pícrico, como otros nitrofenoles, existe en dos formas: la normal que da
cristales cuando se cristaliza la ligroína.
MATERIAL REACTIVOS
 6 pipetas de 5 ml
 1 pipeta de 1 ml
 1 gradilla
 1 baño maría
 5 tubos de ensayo
 Ácido pícrico saturado
 Carbonato de sodios al 10%
 Carbohidratos al 1%
CARBOHIDRATOS:
Xilosa Positivo Negativo Negativo
GL. Glactosa Positivo Negativo Negativo
Dextrosa Positivo Negativo Negativo
Fructosa Positivo Negativo Negativo
L- Arabinosa Positivo Negativo Negativo
Miel Positivo Negativo Negativo

13. 1. Galactosa
2. Xilosa
3. Glucosa
4. Maltosa
5. Fructuosa
6. Sacarosa
7. Dextrosa
8. Miel
9. L arabinose
TÉCNICA
1. A 3 ml de solución de carbohidratos añadir 1 ml de solución saturada de
ácido pícrico.
2. Agregar 0.5 ml de solución de carbonato de sodio al 10%.
3. Calentar en agua hirviendo durante 1.5 minutos.
4. NOTA: Un color café denota prueba positiva.
Resultados
Carbohidrato Resultado
Galactosa Negativo
Xilosa Positivo
Glucosa
Anhidra
Negativo
Maltosa Negativo
Fructosa Positivo
Sacarosa Negativo
Dextrosa Positivo
Miel Positivo
L-Arabinose Positivo

14. Observaciones
En esta siguiente práctica se observó que hubo varios carbohidratos que
reaccionaron con el ácido pícrico como fue la xilosa, fructosa, dextrosa, miel y L-
Arabinose ya que al realizar el procedimiento estos se volvieron algo turbios
tomando un color tipo café y amarillento indicándonos la presencia del compuesto
mientras que en los otros no hubo formación de color indicándonos la ausencia de
este.
CUESTIONARIO
1.- Escribe las fórmulas de los carbohidratos utilizados en la práctica.
Galactosa C6H12O6
Maltosa C12H22O11
Glucosa anhidra C6H12O6
Xilosa C5H10O5
Sacarosa C12H22O11
Fructosa C6H12O6
Dextrosa C6H12O6
Miel C12H22O6
L. arabinose C5H10O5
2.- ¿Qué es un azúcar reductor?
Un azúcar reductor es un término químico para un azúcar que actúa como un
agente reductor y puede donar electrones a otra molécula. Específicamente, un
azúcar reductor es un tipo de carbohidrato o azúcar natural que contiene un grupo

15. aldehído o cetona libre. Los azúcares reductores pueden reaccionar con otras
partes de la comida, como aminoácidos, para cambiar el color o el sabor de la
comida.
3.- ¿Qué usos tiene el reactivo de fehling?
Sirve para demostrar la presencia de glucosa, así como para detectar derivados
de ésta tales como la sacarosa o la fructosa.
4.- Explica porque el yodo de coloración azul marino, con el almidon
Porque el yodo entra a la estructura helicoidal del almidón, y al unirse dentro de de
estas cadenas provoca un efecto de color de los enlaces en el rango del espectro
de la luz de tonos naranjas, que reflejados a nuestros ojos lo percibimos como
color azul.
5.- ¿Qué importancia farmacológica, tiene el identificar los carbohidratos?
Si el 55% de nuestra dieta diaria está compuesta por carbohidratos nos
aseguramos contar con una amplia fuente de energía para el funcionamiento de
nuestro organismo. Esto toma aún más valor si se considera que la Organización
Mundial de la Salud considera que es necesario divulgar los beneficios otorgados
por los carbohidratos, principalmente el de ser un vital aporte al funcionamiento
intestinal, al desarrollo muscular y de actividad física, además de apoyar la función
cerebral.

16. CONCLUSIONES
-PRUEBA DE ANILINA
En esta prueba los carbohidratos eran en polvos o como los vemos nosotros, y al
darnos positivo se formaba una capa plata, como una especie de espejo platinado,
en todas nuestras muestras se formó ese espejo.
-REACCION DE LA BENCIDINA
Nos pareció una práctica interesante, ya que observamos que la reacción de la
bencidina es utilizada para la identificación de pentosas como lo decía la práctica,
se trata de un indicador analítico para determinación de oxidantes. En presencia
de un oxidante se oxida por perdida de dos protones y dos electrones a lo que se
llama su forma “meroquinoidea” que tiene color azul.
-AZUCARES REDUCTORES
PRUEBA DE FEHLING
En conclusión esta practicas nos pareció importante, ya que lo decía la practica la
reacción de fehling es utilizada para la determinación de azucares reductores, este
se oxida a un ácido carboxílico y reduce la sal de cobre o en medio alcalino a
oxido de cobre pasando a un color rojo.
Un aspecto importante de esta reacción es que la forma del aldehído puede
detectarse fácilmente aunque exista en muy pequeña cantidad.
El equipo trabajo de manera responsable y ordenada siguiendo las indicaciones
dadas.
-PRUEBA DE BENEDICT
Las reacciones que se observaron con el reactivo de benedict nos dio positivo
para los azúcares de glucosa, fructosa y sacarosa.
Dentro de los disacáridos se observó que la sacarosa nos dio una reacción
negativa.
En la reacción de benedict se reduce de Cu2+ que tiene color azul a Cu+ , lo cual
precipita de la solución como Cu2Ode color rojo-naranja lo cual nos dio los
diferentes resultados.
-PRUEBA DE TOLLENS

17. Con el reactivo de Tollens es una reacción de oxidación, en la cual se identifica a
las aldosas, ya que las cetosas no reaccionan. En la reacción el reactivo de
Tollens se oxida totalmente, y genera el espejo de plata, ya que el ion de plata se
reduce a plata elemental.
En conclusión nuestro resultado fue el esperado que era la forma de espejo que
se formó en los positivos
-PRUEBA DEL ACIDO PICRICO
Nos dimos cuenta que el ácido pícrico es uno de los productos químicos más
peligrosos en uso.
El ácido pícrico es toxico por todas las rutas de exposición, también es irritante a
la piel y puede producir productos tóxicos cuando se descompone.
Es un reactivo con una amplia variedad de productos químicos y sumamente
susceptibles a la formación de sales “picratos”
BIBLIOGRAFIA
 https://www.google.com.mx/?gws_rd=cr&ei=ViGJUpvuH-
aD2gWE_oGABg#q=formula+quimica+de+la+sacarosa
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 http://www.ratser.com/la-definicion-de-azucares-reductores/

18.  http://www.ecured.cu/Reactivo_de_Fehling
 https://mx.answers.yahoo.com/question/index?qid=20070717231845AAwY
Ru8
http://www.miraflores.cl/nutricion/la-importancia-de-los-carbohidratos.html