La tinción de Scheffer-Fulton utiliza el colorante verde de malaquita para teñir las esporas de verde y la safranina como colorante de contraste para teñir las células vegetativas de rojo. El procedimiento involucra la tinción caliente con verde de malaquita para que penetre en las esporas, seguido de un lavado con agua que elimina el colorante de las células pero no de las esporas, y luego la tinción con safranina que colorea las células vegetativas.

1. PRACTICA
#6
TINCION DE
SCHEFFER-
FULTON
MESA # 5

2. Introducción
 Dado que la clasificación de las bacterias
depende principalmente de su tamaño,
forma y propiedades de coloración, el
microscopio ha sido durante mucho
tiempo el instrumento principal del
microbiólogo. Las preparaciones no
teñidas pueden ser observadas al
microscopio de contraste de fases, pero
en general se utilizan preparaciones
fijadas al calor y teñidas.

3. MATERIALES, EQUIPO Y REACTIVOS
Cantidad Material y equipo Capacidad cantidad Reactivos formulas
descripción
24 Portaobjetos Portaobjetos de 100 ml Safranina C20H19CIN4
25x75mm
24 Cubre objetos Cubreobjetos de 100 ml Alumbre de KAI(SO4)2·12H
25x75mm potasio 2O
18 Asas Bacterioló-gicas 100 ml Acido tánico C76H52O46
6 Mecheros Bunsen 100 ml Verde de C8H10N4O2
malaquita
12 varillas de tinción 100 ml Fucsina básica C20H19N3
Armar varillas con
mangueras de hule
100 ml Fenol C6H5OH
100 ml etanol CH3CH2OH

4. Tinción de Sheaffer-Fulton
Tinción de sheaffer-Fulton usado para colorear biometría hemática
para esporas está también es conocida como la de Wright.
La tinción de Sheaffer Fulton permite observar:
 a.- Esporas.
 b.- Cuerpos fructíferos
 c.- Conidias
 d.- Células gemantes.
.-¿De qué color se ven las esporas y
las células vegetativas en la tinción de
Sheafer y Fulton?
 .- Verde y rojas

5. Las esporas
 Una espora (Gr. spora=semilla) es una unidad
diminuta y simple; que se propaga sin un embrión y
sirve para la producción de un nuevo individuo de
la misma especie. Desde la espora empieza el
desarrollo del hongo en forma filamentosa.

6. Tipos de esporas
que existen

8. Clasificación de las esporas
 Por su función:
-En hongos, las clamidospora
-Los hipnozigotos de los hongos zigomicetos
Por su origen durante el ciclo biológico
son haploides.
La mayoría de los hongos producen
mitoesporas.
Por la motilidad
es la capacidad de moverse autónoma y
espontáneamente.

9. Partes de la espora

10. ¿Que es un frotis?
 Extensión que se realiza sobre un portaobjetos de una muestra
o cultivo con objeto de separar lo más posible los
microorganismos, ya que si aparecen agrupados en la
preparación es muy difícil obtener una imagen clara y nítida.
Posteriormente, el frotis debe ser fijado al vidrio del
portaobjetos para poder aplicar los métodos habituales de
tinción La fijación de una extensión bacteriana hace que las
bacterias queden inactivadas adheridas al vidrio alterando lo
menos posible la morfología y bacteriana y las posibles
agrupaciones de células que pudiera haber.

11. ¿Que es un colorante?
 En química, se llama colorante a la sustancia colorida
usada en tinciones para resaltar diferentes
microorganismos. También se le llama colorante a la
sustancia capaz de absorber determinadas longitudes
de onda de espectro visible. Los colorantes son
sustancias que se fijan en otras sustancias y las dotan
de color de manera estable ante factores
físicos/químicos como por ejemplo: luz, lavados,
agentes oxidantes, etc.

12. VERDE DE MALAQUITA
El verde de malaquita es un colorante
débilmente básico (tiene una carga positiva
débil) y por tanto, se une débilmente a la
bacteria. Penetra en las células vegetativas.
Cuando se calienta en la preparación también
penetra las esporas.
 Durante el lavado con agua,
verde de malaquita se elimina
de las células vegetativas,
pero no de la espora.

13.  Lasesporas quedan teñidas de verde y las células
vegetativas teñidas de rosa.
 Características:
aspecto Solido verde
Olor Característico
pH 2.4
Punto de Fusión 159ºC
Solubilidad 110g/L en agua a 25ºC

14. Preparación
 Verde de malaquita................. 5 g
 Agua destilada..................... 100 mil
 Preparación:
- Disolver el colorante en el agua y dejar en reposo
durante una hora y media.
 - Filtrar.
 - Guardar en frasco oscuro.

15. PELIGROSIDAD
 Nocivo en contacto con la piel y por ingestión.
 Evitar contacto con los ojos.
 Usar guantes adecuados.
 En caso de ingestión, acúdase inmediatamente al
medico y muéstrele la etiqueta o el envase.
 Ingestión: provoca irritaciones de las mucosas en la
boca, faringe, esófago y tracto gastrointestinal.
 Piel: irritante
 Ojos: irritante
 Inhalación: causa irritación de las vías respiratorias.

16. SAFRANINA
El colorante de contraste (la safranina) solo
puede teñir a las células vegetativas
(decoloradas por el agua).
La safranina , es un colorante biológico, de
contraste que se
utiliza en la Tinción de Gram para proporcionar
un color violeta
más intenso a las bacterias Gram+ y tiñe
de rosa a las bacteria s G- ; en histología
y en citología. La safranina se
usa como líquido de contraste en
algunos protocolos de tinción, coloreando
el núcleo celular de rojo.

17. CARACTERISTICAS:
Aspecto Liquido rojo
Olor Alcohol Etílico
Solubilidad Miscible con agua
Formula C20H19ClN4
Peso molecular 350,85 g/mol

18. Preparación
Safranina..................................... 0.5 g
Agua destilada............................ 100 mil
Preparación:
- Disolver el colorante y filtrar.

19. PROCEDIMIENTO
 1. Hacer un frotis de Bacillus sp. De la manera usual:
 Colocar una pequeña gota de agua en el centro
de un portaobjetos limpio.
 Flamear el asa de siembra, tomar, en condiciones
asépticas, una pequeña cantidad del cultivo
bacteriano en medio sólido y transferirlo a la gota
de agua. Remover la mezcla con el asa de siembra
hasta formar una suspensión homogénea.
 Esperar hasta que el líquido se evapore o acelerar
su evaporación acercando el porta a la llama del
mechero.

20. 2. Cubrir la extensión con papel de
filtro (dificulta la precipitación del
colorante sobre las bacterias).

21. Depositar la preparación sobre
 3.
una platina de Koch. Añadir verde
de malaquita. Esperar un minuto.

22. 4.Seguir la tinción con calor : en
emisión de vapores durante 5-10
minutos. Dejar enfriar.

23. 5.Lavar con agua abundante.
Secar.

24. 6.Teñir con safranina (dos minutos).
Lavar con agua. Secar. Observar
con objetivo de inmersión.

25. RESULTADOS
 Luego del montaje al microscopio
óptico, se observaron bacilos Gram
positivos esporulados; asimismo se
apreciaron esporas solitarias de forma
circular y bacilos que no presentaban
formación de esporas.
 Las esporas teñidas de verde y otras
bacterias teñidas de rojo.

26. 

28. 

29. CONCLUSION
 La tinción de Scheffer y Fulton emplea verde malaquita, como
colorante primario, el cual es eliminado posteriormente por el resto
de la célula bacteriana, pero no de la espora, mediante un
enjuague con agua. Como contra tinción la emplea la safranina,
la cual tiñe la célula vegetativa.
 Finalmente podemos mencionar que a pesar que la bacteria es
una estructura muy pequeña, por medio de la tinción con verde
de malaquita, el cual requirió del calor para la penetración; se
pudo observar la estructura interna de la célula bacteriana,
particularmente las endeosporas. En este experimento se utilizó una
tinción simple debido a que la misma permite que se coloree toda
la célula excepto la espora que se observa de un tamaño bien
aceptable
 El colorante Verde malaquita: capaz de teñir las esporas en
caliente. La Safranina: colorante de contraste que tiñe las formas
vegetativas. Las endoesporas, tras la primera tinción, no perderán
el colorante en el lavado con agua, y sí lo harán las formas
vegetativas, que quedarán teñidas con el segundo colorante