Este documento proporciona pautas para el laboratorio clínico, incluyendo la importancia de la fase preanalítica como la preparación del paciente y la toma de muestras, así como normas de seguridad. También describe los tipos de pruebas utilizadas como screening, diagnóstico, evaluación y pronóstico, y factores que pueden afectar los resultados como la dieta, medicamentos y ritmos biológicos.

1.
PAUTAS A SEGUIR EN EL LABORATORIO
• A- FASE PREANALÍTICA
• B- NORMAS DE SEGURIDAD EN EL LABORATORIO
• OBJETIVOS
• Describir la preparación del paciente para la realización de los distintos estudios
laboratoriales.
• Describir la importancia del conocimiento del tiempo u horario de muestreo según
el tipo de estudios laboratoriales.
• Desarrollar destrezas con respecto a la toma de muestra de los diversos materiales
biológicos.
• Describir los elementos de un programa de seguridad de laboratorio.
• Enumerar y discutir prácticas seguras dentro del laboratorio para:
• Prácticas generales lavado de manos, cortaduras, limpieza general, etiquetas y
señales, agujas y objetos puntiagudos.

4. • FUNDAMENTO
• El objeto de cualquier trabajo analítico es proporcionar resultados de análisis con un alto
nivel de exactitud y precisión
• Asegurar que se preste la misma atención a las fases pre-analíticas y que las muestras
analizadas sean de alta calidad uniforme.
• La preparación cuidadosa del paciente, la toma y el manejo adecuado de las
muestras son los primeros pasos que resultados válidos, aunque, frecuentemente se
descuidan. garantizan
• Existen muchas variables pre-analíticas al preparar al paciente o al manejar la muestra
que influirán el resultado de la medición y afectaran la calidad del servicio que se
ofrece.
• La práctica de normas de seguridad dentro del laboratorio es imprescindible a fin de
evitar el contacto con agentes infecciosos y las consecuencias que traerían.

5. PRUEBAS UTILIZADAS EN LABORATORIO CLINICO
• Según el propósito, las pruebas se clasifican en:
• 1. De screening ( Tamizaje)
• 2. De diagnóstico.
• 3. De evaluación y pronóstico
• 4. De monitoreo de la terapia
• 5. De estudio de recidivas.
• 6. De investigación.

7. 1-SCREENING
• Prueba o procedimiento clínico que permite la detección temprana de una
enfermedad o de su riesgo.
• El objetivo : utilizar métodos simples y de bajo costo para evaluar poblaciones
sanas y clasificar a las personas como posibles portadoras o no de una patología
dada, la cual tratada en estadios tempranos, permite reducir la tasa de morbi-
mortalidad.
¿Cuándo se justifica utilizar un método de screening?
• A. Cuando existe una fase pre-clínica de la enfermedad que, detectada en
un estadio temprano, permite realizar un tratamiento para mejorar la expectativa
de vida del paciente.(Alta sensibilidad)
• B. Cuando sea la principal o una importante causa de muerte o enfermedad
en la población a estudiar
• C. Relación costo- beneficio aceptable: debemos tener en cuenta no sólo el
costo directo de la prueba, sino también los costos indirectos, producidos por la
falta de especificidad que generan los resultados falsos positivos
• - Efectos adversos: psicológicos, traumáticos y económicos

8. 2- DIAGNÓSTICO
• Prueba altamente específica, permitiendo, solo o
en conjunto con otras, realizar el diagnóstico
inequívoco de una patología. Ej. Western Blot para
SIDA, biopsia de próstata, Anti IgG, IgM del dengue
• Estos métodos, son más costosos y/o cruentos y/o
menos sensibles.
• Son utilizados en una segunda etapa donde
previamente se han seleccionado a través de los
métodos de screening (clínicos o analíticos) los
individuos cuya patología se quiere confirmar.
.

9. 3- EVALUACIÓN Y PRONÓSTICO
• Estas pruebas no llegan a ser de carácter diagnóstico por falta de
especificidad y/o sensibilidad;
• Se incluyen aquí aquellas que sirven para evaluar un órgano o función o
ver la evolución y pronóstico de una patología.
• Ej.: las transaminasas AST y ALT no son de mucha utilidad diagnóstica,
pero sirven como buenos marcadores de pronóstico de la enfermedad, por
tener gran correlación con la evolución de la misma.
• 4- MONITOREO DE LA TERAPIA:
• Estos métodos permiten evaluar la eficacia o no de un tratamiento dado, en forma
previa y posterior al mismo. Ej. La mayoría de los marcadores tumorales, carga
viral para HIV, Troponinas etc.

10. 5- ESTUDIO DE RECIDIVAS
• Se asigna esta utilidad clínica a la prueba que ha demostrado ser un
marcador más precoz que otros. Aunque la prueba tenga baja
especificidad es igualmente muy útil, debido que al estudiar recidivas
estamos trabajando con una población con alta prevalencia en la
enfermedad, siendo el valor de predicción positivo muy elevado. De esta
manera estos test son para el médico una herramienta valiosa en la
conducta a seguir como lo son por ejemplo los marcadores tumorales.
6- INVESTIGACIÓN:
• Son las pruebas que se encuentran en etapa de evaluación y no se ha
podido aún determinar su utilidad clínica.

12. A- FASE PREANALITICA
• PREPARACION DEL PACIENTE
• Los factores relacionados con el paciente que pueden afectar los
resultados se pueden agrupar en aquellos que no se pueden modificar y
los que pueden controlarse por medio del paciente, el personal de
laboratorio o el médico.
• El primer tipo de factores incluye la edad, el sexo, origen étnico,
embarazo, fase del ciclo menstrual .
• El segundo tipo de factores sin embargo, a menudo requiere de una
intervención activa y control para que los resultados tengan sentido.

13. FACTORES NO CONTROLABLES
EDAD- SEXO-RAZA
FACTORES CONTROLABLES
•TENSIÓN MENTAL: STRES MODIFICA:
Cortisol
Aldosterona
Glucosa
Colesterol
Factores de la coagulación
Prolactina
•TRABAJO MUSCULAR
Evitar 3 días previos a la toma de muestra.
Modifican : CK
LDH
Glucosa
Pruebas hormonales

14. •SITUACIÓN DIETÉTICA
•Ayuno:
Para estudio de lípidos:12 a 14 horas
Para estudio de glucosa
Para estudio hormonal
Sobrecarga dietética
Abstención de ciertos alimentos
Etanol: modifica: enzimas hepáticas, triglicéridos, glucosa.
•FUMAR
Modifica: lipasa, glucosa, PTOG
•ESTADO POSTURAL
En estado de reposo al estado erecto
Modifica: sustancias ligadas a proteínas transportadoras, ej. cortisol,
tiroxina, etc.
En estado ambulatorio:
Paciente en reposo aproximadamente de 15 minutos.

15. •PROCEDIMIENTOS MEDICOS
•Cirugía
Modifica CK
•Inyecciones
•Exploración rectal
Modifica PSA
•Palpación prostática
• Inyecciones intravenosas
•MEDICAMENTOS
Efectos:
In vivo : Procesos fisiológicos
Procesos bioquímicos
In vitro : proceso de análisis o medición
Ejemplos:
Anticoagulantes orales:
Actividad hormonal con estrógenos.
OBSERVACION: El médico debe saber las instrucciones precisas, de lo contrario
llamar al Laboratorio para una mejor información sobre el muestreo.

16. TIEMPO DE MUESTREO
•RITMOS BIOLÓGICOS:
Ritmo menstrual:28 días
Ritmo circadiano: 24 horas
•RITMO MENSTRUAL
Tomar las muestra en días específicos para el dosaje de: LH,
FSH,ESTROGENO;PROGESTERONA
•RITMO CIRCADIANO:
Tomar las muestras en horas específicas: Hora ideal: 07:00-09:00
Prolactina
Corticoesteroides
Aldosterona
HGH
•PRUEBAS DINAMICAS
A- Pueden ser de Supresión o Estimulación
Ej: Hormona de crecimiento HGH: Pre ejercicio
Pos ejercicio

17. •PRUEBAS CONFIRMATORIAS
CKMB: dentro de las 6 horas posterior al
infarto ,se confirma el daño cardiaco.
MONITOREO DE DROGAS TERAPEUTICAS
A-En general tomar la muestra antes
de la dosis siguiente. Ej. Digoxina, Litio,
Tiroxina, anticoagulantes
B-Para estudios microbiológicos:
antes de la terapia indicada tomar la
muestra

18. La solicitudLA SOLICITUD MÉDICA
 IDENTIFICACIÓN CORRECTA DEL MEDICO
 Nombre completo
 Nº de Registro Profesional (actualizado)
 Dirección- Nº de Teléfono. Correo electrónico.
 IDENTIFICACIÓN CORRECTA DEL PACIENTE
 Nombre Completo
 Sexo- Edad
 Nº de cédula policial.
 Dirección o nº telefónico (ambulatorios)
 Datos para localizarlo (internados) Ej. Nº de sala, Nº de cama,código
 MATERIAL BIOLÓGICO A ESTUDIAR Y/O ANALIZAR
 Sangre, Líquidos biológicos
 Orina, Heces, Esputo,
 Nota: Especificar si es potencialmente infeccioso
 USAR ABREVIATURAS O NOMENCLATURAS RECONOCIDAS
 Ej. F.S.P., F.M.F , FCSV, PH ‘???????
 Indicar prioridad: urgente, rutinario, etc.
 INCLUIR INFORMACIÓN CLINICA Ej. : probable diagnóstico, tipo de drogas, etc.
 FIRMA –SELLO (debe incluir el nº de registro-actualizado)
 FECHA
COPIAS POR DUPLICADO.

20. NOMBRE O APELLIDO?
Diana
Denis
Elías Ejemplo: Cinthia Jazmín
Ricardo
Jazmín
Rosa
Apellidos poco comunes: DENGUE.MADRUGA .AEROPAGITA.
Todas las Marías se convierten en Simplemente María , aunque tengan otro
nombre ! Se utiliza el nombre de soltera para los registros!

21. Varón o mujer?
Asunción- Lunes- Leonor- Mercedes- Eliecer-
Traslaxión- Transito- Circuncisión (era mujer!)
Nombres pintorescos:
Edranhilarina- Cervellon- Bolfia--Oxceman-Sandalia-
Exequio-Plumidia- Glicerido-Prisloo,Falda, Asunciona-
Poligenia-Saturno- Homonobo- Madrona-Aleluyeba-
Magnecio-Aringulo-Extor-Roganciano-Felfronia.
Nisk- Deybit-Maiquel, NOHALY ELUHA, FASYL, Reivan,
Nandijha, Ibonca,Tisbea de los Milagros.
El más pintoresco hasta hoy!!!!!!!
Optimosprayn!!!!!!

23. MUESTREO
 Ambiente favorable: Se evitan errores por tensión
 Identificar la muestra correctamente
nombre completo del paciente
código
fecha
hora
tipo de muestra (sangre, orina, etc.)
características observables (Ej.: heces diarreicas)
 Para serie de muestras: estandarizar horario, o serie de toma de muestras
 Tipo de muestra:
Sangre: venosa, arterial, capilar
Orina: aleatoria, del chorro medio, 1ª micción, de 24 hs.
Heridas: zonas profundas.
 A- Cuando el paciente debe transportar la muestra (orina, heces, esputo)
instruirlo días antes:
Hora de toma de muestra
Requerimientos mínimos
1ª orina de la mañana
Medio de transporte
 B- Cuando el paciente llega con una muestra al centro hospitalario verificar:
hora de recolección, medio de transporte, etc.
 C- Instruir al paciente sobre: ayuno, ingesta de medicamentos., etc.

24.  OBTENCIÓN DE SANGRE POR VENOPUNCION
 Plasma (obtenido Ubicar al paciente en lugar cómodo
 Elegir el sitio de punción
 Evitar: áreas de hematomas con cicatrices extensas, venoclisis
 Limpiar el sitio de punción
 Aplicar un torniquete: Precaución: No dejar un tiempo mayor a 1 minuto.
 Ventaja: Se acrecienta el llenado venoso, facilita la localización de la vena.
 Desventaja: Se produce hemoconcentración
Proteínas transportadoras
Enzimas
 Extraer sangre del paciente
– métodos convencionales y por métodos al vacío
 Anticoagulantes:
Marcar cada tubo según el tipo de anticoagulante
Tipos de Anticoagulante: Citrato, Heparina, EDTA, Oxalato
Desventaja: Su uso inapropiado interfiere en ciertas reacciones químicas
Ventaja: preserva la muestra.
 TIPOS DE MATERIAL OBTENIDO:
Sangre Total :con Anticoagulante de la muestra de sangre con
anticoagulante)
Suero (obtenido de la muestra de sangre sin anticoagulante)

25. Toma de muestra

26. venopunción

27. venopunción

28. VENOPUNCION

29. Recolección de muestras

30. 3/4
DESCARTEX

31. OBTENCIÓN DE SANGRE POR PUNCIÓN CUTÁNEA
 OBTENCIÓN DE SANGRE POR PUNCION CUTÁNEA
 Útil para:
 Pacientes con venas inaccesibles
 Pacientes con administración de agentes terapéuticos vía intravenosa
 El volumen requerido es mínimo, etc.
 Y se aplican a:
 neonatos, lactantes
 adultos con : quemaduras graves, obesos, mediciones de pH y gases terapia intravenosa.

 SANGRE CAPILAR: CARACTERÍSTICAS
 Mezcla de sangre de arteriolas vénulas
 Contiene líquidos intersticiales
 La muestra obtenida se será influida por el flujo sanguíneo hacia la piel en el momento de la
muestra.
 Donde realizar?
 Superficie lateral o media de la planta del pie
 Superficie media plantar del dedo gordo del pie
 Lóbulo de la oreja
 Del talón: para niños menores de 1 año
 Dedos de la mano: para niños mayores y adultos
 PROCEDIMIENTO:
 1º) Desinfectar el sitio
 2º) Hacer la punción; descartar la primera gota
 3º) Tomar la muestra con capilares y sellarlos
 4º) Para pH y gases sanguíneos : capilares heparinizados, sin burbujas de aire, sellar los extremos
 5º) Si se tomaran en frascos: mezclar la sangre con anticoagulante y luego cerrar
 6º) Etiquetar los frascos, tubos y/o capilares: p/evitar errores de identificación

34. FRASCOS Y TUBOS PARA RECOLECTAR MUESTRAS DE SANGRE
A- Sangre sin anticoagulantes
• Use tubos limpios y secos de plástico o vidrio .con capacidad para 5 – 20 ml, según las
necesidades.
• Tubo separador de suero, con acelerante y gránulos o gel
Tubos tapados y etiquetados en polipropileno transparente e inerte que sirven para acelerar
la coagulación, obteniéndose una retracción del coágulo casi inmediata.
La velocidad de coagulación es muy superior a la obtenida en condiciones similares en los
tubos de vidrio Los gránulos inertes son redondeados para evitar posibles roturas de las
células en la centrifugación y por lo tanto evitar riesgos de hemolisis, llevan en la etiqueta
indicación clara de lote, volumen y fecha. Son utilizados para bioquímica, incuso con
aparatos automáticos, marcadores, pruebas de inmunología (tubos sin anticoagulante)
• - Separe el suero después de que la sangre se haya coagulado y centrifugado..

35. B- Sangre con anticoagulantes
• a-Solución de EDTA:
• Utilice éste anticoagulante siguiendo las especificaciones
del fabricante.
• Es de elección para:
• - recuentos de células sanguíneas- cálculos de hemoglobina
• - identificación de grupos sanguíneos
• b-Tubos con heparina de litio: Especial para gases y
electrólitos
• Este anticoagulante es costoso y poco estable en los climas
cálidos. Los tubos con heparina se pueden obtener en el
comercio o prepararse en laboratorios centrales; tienen
marcas indicadoras del nivel hasta donde se deben llenar con
sangre.

36. •c- Citrato trisódico de sodio: para estudio de factores de la
coagulación.
•Importante: Nunca se hagan recuentos de células sanguíneas con citrato.
•d- Anticoagulante para efectuar ensayos bioquímicos
•Generalmente se emplea fluoruro sódico (Na F)
•Se utiliza para:
•- calcular la glucosa sanguínea
•Advertencia: El fluoruro sódico es venenoso.
•Material obtenido con anticoagulante: PLASMA!!!!!!!!

38. PRECAUCIONES QUE SE DEBEN TOMAR AL USAR
ANTICOAGULANTES

39. MUESTRAS DE ORINA
 Recipientes
Limpios, plástico, translúcido, desechables y descartables
estéril para estudios microbiológicos, etiqueta por el recipiente, no por la
tapa
Uso de conservantes o estabilizadores o refrigeración
en caso de orinas inestables o cuando el análisis vaya a demorar.
 Toma de muestra
Para estudios microbiológicos: lavar cuidadosamente el meato urinario
y los genitales con agua y recoger la muestra en recipientes estériles,
descartando la primera orina evacuada, transportar la muestra lo antes
posible al laboratorio.
Bebés: lavar el meato urinario y colocar el colector (bolsa de plástico)
sobre los genitales, se repite el proceso, a los 45 minutos si no se
recogió la orina la primera vez.
Primera orina matutina: inmediatamente después que el paciente se
levanta.
Orina matutina: 1 o 2 horas después de evacuar la orina de la noche
• Muestra programada: se obtiene en un intervalo específico dentro de un
periodo de 24 horas.

40. ORINA DE 24 HORAS
•
•
• Disponer de material de vidrio o plástico de volumen adecuado, limpio y seco,
cuidando que no contengan detergentes ni aromatizantes.
• Instruir suficientemente al paciente de la siguiente manera:
• Debe vaciar la vejiga antes del desayuno y desechar esta orina.
• A continuación se recoge toda la orina evacuada incluyendo la primera orina
de la mañana del día siguiente.
• Se recomienda guardar en la heladera durante el tiempo de colecta y enviar al
laboratorio todo la orina recogida.
• En esta muestra pueden hacerse determinaciones cuantitativas de proteínas y
azúcares, como también dosajes hormonales.
• Se debe consignar además en el pedido la edad, peso y altura del paciente.

41. Recipientes de orina

42. MUESTRA DE HECES FECALES
– Se emplean para estudios microbiológicos o parasitológicos.
– Se recogen en un recipiente de boca ancha, limpio y seco que no esté
contaminado con agua o con orina; en niños se puede obtener la
muestra con hisopos; en caso de muestras seriadas con
conservantes como el formaldehido (5 – 10 %).
– Las muestras se deben transportar rápidamente al laboratorio (menos
de 1 hora), hay microorganismos que no toleran los cambios químicos
que ocurren en las heces cuando éstas dejan el cuerpo humano.
– Hay sustancias como bario – bismuto – aceite mineral y antibióticos
que no deben administrarse antes de la obtención de las muestras.

43. HECES
• 1- Recolección simple: Recoger el material en un frasco limpio, seco y cuidar
de no contaminar el contenido con orina. Instruir al paciente de no llenar mucho
el frasco y reducir el día anterior la ingesta de verduras y grasas para no
interferir en la búsqueda u observación de parásitos.
• 2- Recolección seriada: Recoger diariamente (3 – 4 días) una pequeña
porción de materia fecal e introducirla en un frasco con formol al 5%. Este
recipiente deberá ser suministrado por el laboratorio.
• 3- Recolección para coprocultivo: El frasco debe ser estéril y se abrirá un
momento antes de la recolección para evitar contaminación. Se deberán seguir
las demás indicaciones de la recolección simple.
• 4- Recolección para coprofuncional: El paciente debe seguir un régimen de
tres días rico en aceites, vegetales, fibras y abundantes hidratos de carbono.
Luego se recoge el material como en la recolección simple y se remite al
laboratorio.
• 5-Sangre Oculta: Se realiza una recolección simple, previa dieta por tres días
sin carnes rojas, ni verduras o frutas coloreadas.(Test de Guayaco)

44. OTRAS MUESTRAS

Muestras genitales: para diagnosticar ETS, se obtienen del
cerviz, vagina y uretra
Muestras de esputo: se toman temprano en la mañana,
en recipiente estéril, por expectoración profunda.
Muestras faríngeas: por medio de un baja lenguas,
evitando el contacto con la lengua o con los carrillos que
contaminen la muestra con organismos saprofitos.
Muestras de pus, de exudados; de superficies cutáneas y
mucosas: con hisopos en medio de transporte, permite
recuperar los microorganismos en condiciones y
concentración similar a la muestra original.
Los fluidos serosos como el de la pleura, el sinovial, el
ascítico y otros fluidos, deben ser aspiradas por el médico
utilizando agujas y jeringas adecuadas y estériles.

45. Líquidos de PunciónLíquidos de Punción
Los trasudados son líquidos originados
por trastornos circulatorios que conducen a
la congestión pasiva sin inflamación.
Los exudados son originados por procesos
inflamatorios debidos a infecciones
bacterianas o neoplasias.

46. MUESTRAS DE LIQUIDO CEFALORRAQUIDEO L.C.R
Se extrae por punción lumbar, debe realizarse por un médico
con experiencia.
El paciente se recuesta lateralmente y se lo anestesia
La punción se realiza en condiciones estériles insertando la
aguja en el inter espacio entre la 3ª y 4ª o 4ª y 5ª vértebras
lumbares, previa desinfección de la piel.
La muestra se obtiene en tres tubos estériles
Tubo 1: pruebas químicas
Tubo 2: para microbiología
Tubo 3: recuento celular
Todas las muestras deben llegar al laboratorio tan pronto como
sea posible, después de la toma, para evitar su deterioro.!!!!!!


47. Colecta de LCR

48. TORACOCENTESIS

52. Liquido amniótico

53. FISIOLOGIA DEL LIQUIDO SEMINAL – ESPERMOGRAMA
En qué casos se solicita el Estudio?
El Espermograma forma parte del chequeo completo que se
realiza a una pareja con problemas de Infertilidad, dado que en el
varón radica mas del 50 % de las probables causas. Utilidad
del Espermograma:
EN MEDICINA LEGAL: casos de violación, para demostrar la presencia
de semen y en casos de reclamos de paternidad en individuos que alegan
esterilidad.
MOTIVOS POR EL CUAL ES CONVENIENTE REALIZAR EL ESPERMOGRAMA:
Sencillez de la prueba
Costo relativamente bajo
El alto % de problemas de Infertilidad que radica en el varón
•BUSCAR CAUSAS DE INFERTILIDAD
•DESCARTAR UNA ESTERILIDAD
• COMPROBAR LA EFECTIVIDAD DE UNA
VASECTOMIA

54. B-NORMAS DE SEGURIDAD EN EL
LABORATORIO
• La OMS clasifica a los laboratorios en cuatro tipos:
• Tipo I: donde existe manejo de microorganismos de virulencia baja o ninguna
virulencia para adultos sanos normales.
• Tipo II: para el manejo de microorganismos patógenos para adultos, y
significan un peligro potencial moderado para el personal.
• Tipo III: para el manejo de microorganismos altamente infecciosos que
pueden causar enfermedades humanas generalizadas graves.
• Tipo IV: para el manejo de microorganismos de alto riesgo y que pueden
causar enfermedades que amenazan la vida y por lo tanto requiere un edificio
aislado.
• Todo personal que trabaja en el laboratorio clínico o penetra a él debe seguir
reglas de seguridad.

55. RESPONSABILIDAD
• El /la Bioquímico/a o director/a de Laboratorio tiene la responsabilidad
global, para eso debe asegurarse que el personal deberá ser entrenado
adecuadamente con respecto a la seguridad por el mismo o por la persona
asignada para el caso.
• Debe mantener un registro de entrenamiento
• Debe inspeccionar de rutina los equipos de emergencia
• Debe definir qué equipo y ropa son necesarios y asegurarse de la adquieran
y de que todos lo utilicen.
• Debe propiciar un programa de protección para los componentes del
Laboratorio a fin de protegerlos contra infecciones y peligros químicos.
• Se debe ofrecer a todos los miembros la posibilidad de inmunizarse
contra el virus de la Hepatitis B, tétanos, tuberculosis y otras
enfermedades infectocontagiosas.
•

56. HEPATITIS B
 La hepatitis viral de tipo B se mantiene como un problema grave de salud
a nivel mundial y las medidas para su eliminación y erradicación todavía
distan de ser completamente idóneas.
 Se estima que hay 2 mil millones de personas infectadas y el número de
portadores es de 300 millones.
 La OMS, reporta 1 millón de muertes por año en el mundo y en América
Latina según la OPS, señala que existen 6.600 000 portadores crónicos.
 El virus de la hepatitis B (VHB) afecta solamente a humanos, y no existen
otros reservorios.
 La infección por el virus de la hepatitis B puede causar enfermedad
hepática aguda, crónica, cirrosis y carcinoma hepatocelular.
 La hepatitis B es una enfermedad prevenible por inmunización.
 La vacuna contra la hepatitis B es segura y efectiva.
 Los profesionales de la salud corren un alto riesgo de adquirir el VHB en
las unidades de hemodiálisis, laboratorios clínicos y quirófanos.
 Las evidencias serológicas en numerosas ocasiones son más altas en
profesionales de la salud que en una población de nivel socio económico
comparable.

57. VIRUS VHB

58. Vías de contagio de VHB
• PERCUTÁNEAPERCUTÁNEA
Contacto con sangre o derivados sanguíneosContacto con sangre o derivados sanguíneos
Agujas, jeringas e instrumentos contaminadosAgujas, jeringas e instrumentos contaminados
HemodiálisisHemodiálisis
DrogadicciónDrogadicción
Cirugía oralCirugía oral
TatuajesTatuajes
 PERINATALPERINATAL
 CONTACTO SEXUALCONTACTO SEXUAL

59. TIPOS DE INMUNIZACION
 ACTIVAACTIVA
• Es la introducción de un antígeno específico que
estimula la formación de anticuerpos. Estos
antígenos pueden ser virus atenuados, muertos o
productos recombinantes adecuados para una
estimulación antigénica efectiva del sistema inmune.
 PASIVAPASIVA
• Es la introducción de anticuerpos preformados
para prevenir o modificar la naturaleza de la
infección en un individuo susceptible.

60. GRUPOS DE ALTO RIESGO
Profesionales sanitarios
Recién nacidos de madres portadoras de HBs
Ag
Compañeros/as sexuales de portadores del
HBs Ag
Homosexuales -Heterosexuales
Adictos a drogas por vía parenteral
Pacientes en hemodiálisis
Pacientes politransfundidos
Individuos inmunodeprimidos

61. INDICACIONES PARA LA VACUNACION
Personal sanitario
Pacientes con hemodiálisis
Recién nacidos de madres portadoras de Virus B
Familiares y contactos sexuales de portadores
Trasplantes hepáticos HBs Ag positivos
Homosexuales-Heterosexuales
Internos de instituciones penitenciarias
Adictos a drogas por vía parenteral
Personas que se dediquen a la prostitución
Deficientes mentales internados
Heterosexuales con múltiples parejas
Viajeros de zonas endémicas

62. MARCADORES SEROLOGICOS
 La infección por hepatitis B requiere la identificación de varios
marcadores serológicos en el laboratorio clínico, según la fase
en que se encuentre el paciente, que puede ser de
incubación, aguda y crónica.
 HBs Ag: El primer marcador que aparece durante la fase de
incubación, fase aguda y en los portadores sanos.
 HBs Ac: Es el anticuerpo frente al HBs Ag. Es el último
marcador que aparece y solo se encuentra en casos de
curación de la enfermedad. Persiste durante años. Tiene
efecto neutralizante y es el único marcador que se detecta en
individuos vacunados.
 HBc Ac: Es el primer anticuerpo en aparecer. Se detecta en
fase aguda y persiste muchos años después de la
recuperación. Es el marcador que perdura toda la vida
positivo como recuerdo inmunológico (el tipo IgG).

63. SEROLOGIA

64. ESQUEMA DE VACUNACION
• TRES DOSIS: 0, 1 y 6 MESES
 Las dos primeras dosis inician la producción de anti HBs y estimulan la
respuesta inmune para la respuesta secundaria al antígeno.
 La tercera dosis estimula la respuesta secundaria, actuando
biológicamente como dosis de refuerzo.
 El título de anticuerpos anti-HBs igual o superior a 10 UI/L está
considerado por la comunidad científica como protector .
• La OMS recomendó la incorporación de la vacuna de la hepatitis B a los
Programas Nacionales de inmunización en todos los países, con el
propósito de erradicar la infección a Hepatitis B, con énfasis en el recién
nacido, hijo de madre portadora de virus de hepatitis B y por inoculación
accidental del virus de la Hepatitis B.
• El M.S.P. de nuestro país inició campañas de inmunización en la población
de mayor riesgo, que son los menores de un año, a través del Programa
Ampliado de Inmunizaciones (PAI) con la vacuna pentavalente
combinada, aplicada en tres dosis.

65. Interpretación serológica
Paciente vacunado.
Presenta las siguientes características serológicas:
HBs Ag: negativo
HBs Ac : positivo
HBc Ac IgG: negativo
Paciente recuperado de hepatitis B. Presenta las
siguientes características serológicas:
HBs Ag: negativo
HBs Ac : positivo
HBc Ac IgG: positivo

66. LABORATORIO

68. • Las instalaciones del laboratorio incluyen:
• Instalaciones físicas apropiadas para el tipo de trabajo que se realiza;
• Un sistema de ventilación adecuado con entrada de aire y con
entrada y salida localizadas de tal manera que esté limitada la
entrada de aire contaminado;
• Almacenes bien ventilados y adecuados con estanterías de metal no
oxidable en donde se depositan los reactivos por orden de naturaleza
(ácidos, bases, sales, etc.);
• Campanas de extractores y vertederos;
• Equipo de seguridad, por ejemplo, fuentes de lavado de ojos y
regaderas de presión; y extintores
• Depósitos para desechar basura.

69. PRACTICAS GENERALES
• Se prohíbe fumar, comer y aplicarse cosméticos para evitar la
diseminación de agentes infecciosos o productos químicos tóxicos de la
mano hacia la boca.
• Con el fin de evitar el contacto con agentes infecciosos o diseminarlos, debe
utilizarse alguna prenda protectora sobre la ropa, como bata de laboratorio, la
cual deberá permanecer cerrada durante todo el tiempo que se permanezca
en el laboratorio. Estas prendas de protección externa no deben usarse
fuera del laboratorio.
• Los zapatos han de ser de punta y talón cerrado.
• No es conveniente que las personas que trabajan en el laboratorio usen
lentes de contacto debido al desprendimiento de vapores y a las
salpicaduras que pueden producirse.
• La joyería de tipo colgante, el cabello largo y la barba son riesgosos, ya que
es posible que entren en contacto con muestras u otras superficies, o se
enreden o queden atrapados en instrumentos con movimiento, como
máquinas rotatorias o centrífugas.
•

70. PRACTICAS GENERALES
• Se prohíbe estrictamente pipetear con la boca
todo tipo de muestra, reactivo, agua o cualquier
sustancia. Nunca probar, así como tampoco
inhalar directamente las sustancias. Para
determinar el olor se acerca la tapa del frasco
cuidadosamente a la nariz, o bien, si se trata de
sustancias volátiles o vapores acercar éstos con
la mano a la nariz.

71. PRACTICAS GENERALES
• Nunca introducir alimentos ni bebidas en el
laboratorio.
• Cabello recogido !!!
• No zapatillas
• NO TERERE NI MATE POR FA!

72. PRINCIPALES VIAS DE CONTAGIO
• Las vías principales de contagio en el laboratorio son la respiratoria, la oral, la
cutánea y la ocular.
• La transmisión por vía respiratoria ocurre por inhalación de partículas
infecciosas. Los microorganismos llegan a los alvéolos pulmonares causando
infecciones en el sistema respiratorio inferior.
• Los agentes patológicos principales son: Mycobacterium tuberculosis, Rickettsia
spp., Bacilluss anthracis, Yersinia pestis, Pasteurella tularensis y Brucella spp.
• Se debe establecer una profilaxis efectiva para los empleados que trabajen con
estos microorganismos que incluye el uso de máscaras y el trabajo en
campanas de seguridad verticales cuya limpieza y desinfección debe realizarse
después de cada uso.
• La transmisión por vía oral se debe en su mayor parte a agentes
enteropatológicos (Salmonella spp.) o a bacterias que producen infecciones
nasofaríngeas (Streptococcus pyogenes) que se transmiten en los dedos, los
bolígrafos o cualquier otro objeto que se introduce en la boca
inconscientemente, o al comer o beber.

73. VIAS DE CONTAGIO
• Las medidas preventivas incluyen reforzar las principales medidas de
seguridad tales como lavarse las manos después de manejar material
infeccioso y no comer ni beber en el laboratorio.
• Los ojos ameritan especial cuidado ya que son extremadamente
susceptibles a infectarse.
• Se debe evitar tocarse los ojos en un laboratorio de microbiología, en
especial cuando se maneja Chlamydia, bacterias o virus.
• Es conveniente el uso de guantes, teniendo cuidado en utilizarlos solo en
el laboratorio .
• En algunos casos el uso de anteojos de seguridad transparentes es
necesario.

74. PRECAUCIONES PARA EVITAR
ACCIDENTES• 1- Manipulación de ácidos y bases:
• Guardar los frascos en la parte inferior de los armarios o muebles y al tomarlos
sostenerlos con firmeza. Al efectuar una dilución de acido con agua; añadir ácido al
agua, agitando para que no se produzca salpicadura alguna.
• 2- Venenos y vapores tóxicos:
• No usar la boca para pipetear estos productos y enjuagar rápidamente los frascos una
vez concluido el ensayo. Cuando se produzcan vapores tener cuidado de trabajar bajo
una campana protectora, a fin de que no contamine el ambiente del laboratorio.
• 3- Líquidos inflamables:
• Cuando se evaporan líquidos inflamables nunca hacerlo directamente a la llama sino
usar baño María o baño a vapor y hacerlo lentamente para evitar alguna explosión.
• 4- Heridas causadas por vidrios rotos:
• a) Vidrios limpios: Desinfectar (con tintura de yodo o mercurocromo), luego de cesar
el sangrado vendar la herida, si no cesa la hemorragia presionar con una compresa y
solicitar ayuda profesional en casos extremos.
• b- Vidrios con material infeccioso: Si la herida no sangra, apretarlo con fuerza
para provocar el sangrado durante varios minutos. Limpiar con un antiséptico
(tintura de yodo) luego con abundante agua jabonosa y luego de nuevo impregnar con
sustancias antisépticas. Acudir inmediatamente a un profesional si el material estaba
contaminado con sangre o semen.

75. 5- Calor
• 1- Quemaduras leves: Son aquellas que
afectan una reducida porción de piel. Si es
posible sumergir la parte afectada en agua fría
o cubrirla con compresas frías. Aplicar tintura
de yodo sin apretar. No arrancar la piel de las
ampollas.
• 2- Quemaduras graves: Afectan a porciones
extensas de la piel. Si la persona está cubierta
en llamas cubrirla con una manta, acostarla
sin sacarse la ropa y abrigo. Trasladarla
posteriormente a un centro hospitalario.

76. 6- Ácidos
• Si se ingiere: Dar al accidentado solución jabonosa, o bien dos claras de
huevo con medio litro de agua o leche, caso contrario abundante agua.
• Si solo salpica los labios: Enjuagar varias veces con abundante agua y
luego con solución de bicarbonato de sodio al 2%.
• Si ha salpicado la piel: Enjuagar varias veces con abundante agua y luego
con solución de bicarbonato de sodio al 2%.
• Si ha salpicado los ojos: Lavar con agua a chorros de modo que el chorro
llegue al ojo. Luego aplicar 2 – 3 gotas de solución de bicarbonato de
sodio.

77. 7-ALCALIS
Si se ingiere: Dar al accidentado ácido acético al 5% o bien jugo de limón o
vinagre diluido, haciendo gárgaras.
Si ha quemado los labios: Enjuagar con abundante agua y luego enjuagar con
ácido acético al 5%.
Si ha salpicado los ojos: Lavarlos profusamente con un chorro de agua,
luego con solución saturada de ácido bórico y consultar posteriormente
con un profesional .
LAVADO DE MANOS
•El lavado de manos es una de las principales maneras de evitar la dispersión de agentes
infecciosos. Aunque se utilicen guantes, el lavado es necesario, porque es posible que éstos
tengan huecos microscópicos.
•Al tratar con pacientes, es necesario lavarse las manos tras atender a cada uno de ellos
aunque se utilicen guantes
•

78. LIMPIEZA
• No debe permitirse que la basura, los desperdicios infecciosos y el material
de vidrio sucio se acumulen en grandes cantidades en el laboratorio.
• Los recipientes con muestras de desecho y agentes etiológicos deben
taparse cuando no se estén empleando.
• Es necesario limpiar con frecuencia las superficies de trabajo con algún
desinfectante.
• El personal de laboratorio debe ser responsable de mantener el área de
trabajo limpia y sanitaria.

79. ETIQUETAS Y SEÑALES
• Todos los recipientes que contienen productos químicos deben
etiquetarse con claridad, indicando el nombre del producto y cualquier
precaución para su manejo.
• Las Áreas en que se almacenan productos inflamables, peligrosos o
tóxicos y carcinógenos, o en los cuales se utilizan, deben estar marcadas
claramente.
• Las áreas en que se almacenan o analizan sangre o líquidos corporales
deben estar marcadas claramente con el signo de riesgo biológico.
• AGUJAS Y OBJETOS PUNTIAGUDOS
• Las agujas y otros objetos puntiagudos constituyen un riesgo físico y de
infección potencial para el personal de laboratorio y de apoyo. Todas las
agujas desechables y demás objetos punzantes deben colocarse en un
recipiente resistente a la perforación y a prueba de fugas, marcado
con el símbolo de riesgo biológico. Estos recipientes se descargan
cuando estén llenos hasta la mitad o las tres cuartas partes.
• No deben volverse a colocar las tapas de las agujas a menos que se
utilice algún dispositivo diseñado con este fin, para evitar la punción
cutánea accidental.

80. Señales de advertencia

81. SEGURIDAD CONTRA INCENDIOS
TIPOS DE INCENDIOS
• En el laboratorio clínico se utilizan líquidos inflamables y combustibles para
ciertos procedimientos. También existe el riesgo potencial de incendios
eléctricos y de basura
• Los incendios se clasifican de la clase A a la D:
• Clase A: Ocurren con combustibles ordinarios, como madera o papel;
• Clase B: Ocurren con líquidos inflamables
• Clase C: Participan circuitos eléctricos energetizados, sin importar el
combustible
• Clase D: Participan metales combustibles como el sodio. Para cada tipo de
incendio se requiere un extinguidor adecuado con el fin de controlar de
manera eficiente el fuego y evitar que se extienda

82. Extintores utilizados

83. EXTINTORES
• Los extintores contra incendios contienen diferentes sustancias y están
marcados según el tipo de incendio para el que deben emplearse.
• Los extintores clase A están llenos de agua
• . Los extintores clase B contienen productos químicos secos, espuma
acuosa que forma una capa o dióxido de carbono.
• Los extintores clase C están llenos de dióxido de carbono o Halon;
• Los de la clase D de un polvo seco especial que contiene un enlazante
termoplástico que permite que el agente forme una corteza sólida al
calentarse.
• Hay extintores que pueden emplearse para incendios de la clase A a C.
Contienen un polvo seco y pueden utilizarse con eficacia y seguridad
para las tres clases de incendios. Generalmente este tipo de extintores
es el que se compra para uso en el hogar o en las oficinas.
• Se recomiendan los extintores de dióxido de carbono o Halon para
incendios de equipo eléctrico.

84. INCENDIO O EXPLOSION AL UTILIZAR SOLVENTES
INFLAMABLES
• Los solventes inflamables :alcohol, éter, cloroformo, acetona, tolueno,
xilol,se utilizan en todos los laboratorios, por lo que se recomiendan las
siguientes precauciones:
• No fumar en el laboratorio.
• No utilizar la llama del mechero cuando hay cerca líquidos inflamables. No
mantener el mechero encendido cuando esté fuera de uso.
• Si se vierten accidentalmente sobre las mesas, secar de inmediato con un
trapo húmedo y enjuagar éste con el chorro de agua, exprimiéndolo.
• Nunca calentar un líquido orgánico sobre una flama.
• En caso de incendio debe hacerse lo siguiente: para un incendio pequeño
en un vaso, un matraz, etc., éste se cubrirá con un recipiente mayor o se
ahogará el fuego con un trapo mojado o se combatirá con un extinguidor.
• Cuando el fuego sea de un solvente derramado sobre la mesa o el piso, se
utilizará un extinguidor de bióxido de carbono. Si el fuego no puede
vencerse de inmediato, se evacuará el laboratorio y se avisará al
departamento contra incendios de la institución.
•

85. SEGURIDAD QUIMICA
• Dentro del programa de seguridad química
existe un documento que contiene
información detallada acerca del producto
químico y es la hoja con datos acerca del uso
del material (MSDS).

86. CATEGORIA DE LOS PRODUCTOS QUIMICOS
• Como en el laboratorio se emplean diversos productos químicos, las
personas que trabajan en él deben comprender los peligros potenciales
con respecto a su uso. Los productos químicos plantean riesgos para la
salud o de tipo físico. Las categorías de riesgo de estos productos son:
• -Corrosivos: productos químicos con pH menor o igual a 2, o mayor o
igual a 12,5.Los ácidos y las bases se encuentran dentro de esta categoría.
• -Sustancias tóxicas: venenos, irritantes y asfixiantes.
• -Carcinógenos: sustancias que provocan cáncer.
• -Mutágenos y terátógenos: que ocasionan aberraciones cromosómicas o
malformaciones congénitas.
• -Productos inflamables y combustibles.
• -Reactivos: explosivos y oxidantes

87. Las sustancias
• Químicas corrosivas: Provocan destrucción visible del tejido humano al
entrar en contacto con él. Los productos químicos corrosivos producen
lesiones al ser inhalados o al entrar en contacto con la piel.
• Las sustancias tóxicas incluyen venenos, irritantes y asfixiantes. No
actúan en forma directa en los tejidos humanos, pero interfieren con los
procesos metabólicos. Penetran al organismo por ingestión, inhalación
o absorción cutánea.
• Las sustancias carcinógenas son productos químicos que se ha
demostrado que provocan cáncer en los seres humanos y animales. La
exposición ocupacional a carcinógenos produce de manera directa cerca
del 4 %de los casos de cáncer. Los productos químicos marcados como
carcinógenos, deben estar estrictamente etiquetados y manejarse en un
área específica de laboratorio con equipo protector adecuado.
• Los productos químicos mutágenos y teratógenos plantean riesgos
reproductivos, ya que tienen el potencial para provocar daños
irreversibles o muerte de generaciones futuras.

88. • PROTECCION PERSONAL
• Se sabe que quienes trabajan en e los laboratorios clínicos conforman un
grupo de alto riesgo para infecciones por virus de hepatitis B (HBV)
relacionadas con el trabajo y virus de inmunodeficiencia humana (HIV).
• Existen recomendaciones para proteger a las personas que trabajan al
cuidado de la salud y a otras de adquirir la infección por HIV .
• Entre las recomendaciones se aconsejan están las vacunaciones contra
tétanos y hepatitis B, como también que se tomen precauciones al manejar
sangre y líquidos corporales de todos los pacientes y las muestras que se
obtengan.
• Esto se conoce como precauciones universales. Las recomendaciones
incluyen el uso de equipo para protección personal, como batas, guantes y
protectores para los ojos al manipular sangre y líquidos corporales en el
laboratorio.
•

89. Ubicación ideal del Laboratorio

90. MATERIALES
Y
APARATOS
DE
LABORATORIO

93. Vidriería

94. Baño termostatizado
centrífuga

95. Espectrofotómetro Coagulímetro

96. Microscopio Estufa secadora

97. Aparato de electroforesis

98. Balanza pHchímetro

99. Materiales

100. Materiales de laboratorio

101. Materiales de laboratorio
Pipetas automáticas