El documento describe la presión tisular de oxígeno cerebral (PtiO2), que mide la presión parcial de oxígeno al final del circuito capilar cerebral. Explica que la PtiO2 depende de varios factores como la presión de perfusión cerebral, la microcirculación y el consumo metabólico de oxígeno. Los niveles normales de PtiO2 están entre 20-40 mmHg y niveles por debajo de 5 mmHg indican hipoxia tisular crítica. El documento también describe los métodos para medir

1. Presión Tisular de Oxigeno (PtiO2)
 Es una variable crítica para determinar el daño de hipoxia cerebral y
una lesión cerebral secundaria. Corresponde a la presión parcial de
oxígeno al final del circuito capilar, siendo éste un valor promedio de
los compartimentos vascular, intra y extracelular.

2. Elementos participan en el estado de oxigenación del tejido
cerebral:
• presión parcial de oxígeno (pO2),
• concentración de hemoglobina (Hb) en sangre
• afinidad de la Hb por el oxígeno
• presión de perfusión cerebral (PPC)
• estado de la microcirculación cerebral
• gradiente de difusión del oxígeno desde el capilar a la
mitocondria.
• grado de consumo metabólico cerebral de oxígeno (CMRO2).

3. Las concentraciones de oxigeno cerebral normal están entre los
rangos de 20-40 mmHg.
• 15 mmHg el umbral de hipoxia tisular leve-moderada
• 10 mmHg el de hipoxia tisular grave
• menor o igual de 5 mmHg el de hipoxia tisular crítica (infarto).
Métodos que exploran la hipoxia cerebral:
• saturación de la Hb en el bulbo de la vena yugular interna
(SjvO2)
• saturación regional de O2 (rSO2) mediante haces de luz
cercanos a los infrarrojos (NIRS)
• presión tisular de oxígeno cerebral (PtiO2).
• El riesgo de hipoxia tisular se incrementa con umbrales
de PPC por debajo de 60 y 70 mmHg.

5. Hipoxia por disperfusión: es debido a un aumento en el diámetro de la
difusión de oxigeno desde el eritrocito a la mitocondria, lo que disminuye
el gradiente de oxigeno entre estos, según la fórmula:
Un aumento del área de difusión debido a edema celular o intersticial, o el
aumento de la longitud por cierre capilar debido a aumento de presión tisular
o microémbolos también puede producir este tipo de hipoxia.

6. DISOXIA TISULAR
Condición en la que las condiciones de oxigeno son tan
bajos que la respiración mitocondrial no puede sostenerse.
Esto no permite que las funciones en la sangre sean
realizadas con normalidad por tanto deficiencia de oxigeno
y glucosa en el encéfalo.
La Disoxia puede darse como:
*un metabolismo anormal de oxigeno del que la hipoxia es
sólo una parte.
*como una situación en que VO2 (captación tisular) es
dependiente del DO2 (convección) fisiológico o patológico.
*como una existencia de hipoxia tisular en presencia de
Oxigeno ya sea normal o aumentada.

7. El aporte adecuado de oxígeno al
cerebro en condiciones normales
está delimitado:
*volumen/minuto cardiaco de a 20 ml
por cada 100 g por minuto
*Por encima de 140 mmHg se
produce edema vasogénico y por
debajo de 60 mmHg se produce
isquemia.
Flujo sanguíneo cerebral local es 4
veces mayor en la sustancia gris que
en la sustancia blanca.

8. Métodos de Medición de Ptic
Hay dos métodos principales, juntos son invasivos:
 Sistema de Licox.
 Mide Oximetría tisular basándose en polarograficación. Utiiza electrodos tipo
Clark. Mide sólo PtiO2 y Temperatura.Su umbral de Hipoxia es 15mmHg.
 Sistema de Neurotrend
◦ Mide Oximetría Tisular basándose en Colorimetría (utilizando flourescencia
óptica con Fibras ópticas). Mide PtiO2, PtiCO2, Temperatura y pH. las
inserciones de los sensores son a diferentes niveles de inserción de los
sensores. Su umbral de hipoxia es 19mmHg. Es el más Novedoso y menos
confiable.

9. Electrodo tipo Clark
 Se utiliza un electrodo polarográfico tipo Clark:
1) Introductor bilumen.
2) Conector para catéter de PIC.
3) Conector para sonda combinada de oxígeno y temperatura.
4) Junta hermética.
5) Extremo del canal del catéter de PIC.
6) Tubo introductor para la sonda combinada de oxígeno y
temperatura.
7) Guía de alambre.
8) Tapa de compresión.
9) Perno.
10) Broca.
11) Tope de broca graduable con tornillo fijador.
12) Llave hexagonal para graduar el tope de broca.
13) Estilete.
14) Accesorio de compresión para el catéter de PIC.
15) Obturador de PIC.

10. Electrodo tipo Clark y monitor.
 En su extremo posee una membrana de polietileno que permite el
paso libre de O2
 Posee una zona de oxido-reducción llamada “revoxode”
 Posee un cátodo de oro y otro de plata.
 En el cátodo se lleva a cabo un reacción reversible
O2+ 2H2O +4e−  4OH −
Esta generará una corriente eléctrica que será detectada por un
voltímetro.

11. 1. Con una pequeña Craneostomía se fija un tornillo enroscado.
2. Se introduce el catéter fino de Oximetría.
3. Se introduce la tarjeta calibradora en el monitor y se conecta el
sensor con el monitor.
4. Período de estabilización de 2hrs. (por distorsión del
parénquima cerebral con la introducción del sensor).
Complicaciones
Procedimiento
• Sensibilidad Saturada por
OH en el Sensor.
• Infecciones (0,5%) y
Hemorragias cerebrales
(2,5%)
• Situaciones de traslado del
paciente a otros centros
asisteniales.

12. Localización óptima del Sensor
 ¿En Hemisferio Sano o en Zona de Penumbra?
--> Diversas opiniones.
 ¿En sustancia Gris o En sustancia Blanca?
--> Se apoya la sustancia blanca subcortical.
 Posición: En región frontal derecha, entre las ramas de las
arterías cerebrales anterior y media.