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DEPARTAMENTO DE CIENCIAS DE LA VIDA Y LAAGRICULTURA
CARRERA DE INGENIERÍA EN BIOTECNOLOGÍA
“ANÁLISIS DE LA DISTRIBUCIÓN Y FUNCIÓN NUCLEAR DE LA
α-DISTROBREVINA EN LAS CÉLULAS NEURONALES N1E115”
NATALIE RAQUEL SANTAMARIA GUAYASAMIN
Directora: Dra. Thelvia Ramos
Codirector: Dr. Bulmaro Cisneros
SANGOLQUÍ, ABRIL 2015
Complejo de Proteínas Asociadas a la Distrofina (DAPC)
(Fairclough, Nature Review Genetics,
2013)
Familia de las distrobrevinas
(Rees et al. Neuromuscular Disorders. 2007)
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(Ambrose et al, Genomics, 1997)
α-DB1
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• Señalización
• Organización y
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Localización nuclear de α-Distrobrevina en diferentes líneas celulares
(Fuentes-Mera, Experimental cell research,2006)
(Gonzalez-Ramirez, Journal of Cellular Biochemistry, 2008)
Transporte al núcleo mediado por las importinas α2/ β1
(Aguilar, A, FASEB, 2015)
Células HeLa
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Modelo celular: N1E115
Objetivo General
Analizar la distribución y función nuclear de la α-Distrobrevina en las
células neuronales N1E115.
Objetivos Particulares
1. Identificar la isoforma de la α-Distrobrevina que se encuentra
presente en las células N1E115.
2. Analizar la distribución subcelular de la α-Distrobrevina en las
células N1E115.
3. Identificar la función de la α-Distrobrevina en el nucléolo y los
cuerpos de Cajal.
1. Identificar la isoforma de la α-Distrobrevina que se encuentra
presente en las células N1E115.
2. Analizar la distribución subcelular de la α-Distrobrevina en las
células N1E115.
3. Identificar la función de la α-Distrobrevina en el nucléolo y los
cuerpos de Cajal.
Estrategia Experimental
Cultivo Celular
Inmunodetección en
fase sólida de α-DB
Controles
positivos
Detección de bandas utilizando un anticuerpo
específico contra α-Distrobrevina
Blake et al., 1996; Ceccarini, et al., 2002; Enigk
& Maimone, 1999; Pawlikowski & Maimone,
2008
Isoforma α-DB2
Ceccarini et al., 2002; Enigk & Maimone, 1999
α-DB2A y α-DB2B difieren en menos de
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100 kDa
70 kDa
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α-DB2
α-DB1
C2C12
HeLa
N1E115
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Estrategia Experimental
Cultivo Celular
Inmunodetección en
fase sólida de α-DB
Extracción de RNA
total
RT-PCR
PCR punto final
(Enigk & Maimone, Gene, 1999)
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Cerebro de ratón
Ceccarini et al., 2002; Enigk & Maimone, 1999;
Grady et al., 2003; Navakauskiene, et al., 2002
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Actina
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Ciclos de amplificación
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ΔRn
ΔRn
α-DB2A
CURVA CONTROL CURVA N1E115 SOBREPOSICIÓN
α-DB2B
–dF/dT
Temperatura (°C)
–dF/dT
Temperatura (°C)
–dF/dT
Temperatura (°C)
Niveles de la α-DB2 se incrementan durante la diferenciación neuronal Kulyte et
al., 2002; Rees et al., 2007 & Ceccarini et al., 2002
Mutaciones nucleotídicas o alteraciones en la secuencia del gen afectan en
varios grados la temperatura de la curva de desnaturalización Horbinski, et al.,
2010
(Horbinski, et al., JMD, 2010)
Conclusión
La isoforma α-DB2 es la que se encuentra expresada en las células
N1E115, pero la cantidad de RNA mensajero de la α-DB2A y de la α-
DB2B que existe en las células es escaso, lo que dificulta la
identificación de la variable de splicing de la α-DB2.
Objetivos Particulares
1. Identificar la isoforma de la α-Distrobrevina que se encuentra
presente en las células N1E115.
2. Analizar la distribución subcelular de la α-Distrobrevina en las
células N1E115.
3. Identificar la función de la α-Distrobrevina en el nucléolo y los
cuerpos de Cajal.
Estrategia Experimental
Cultivo Celular
Inmunofluorescencia
indirecta de α-DB
Distribución de α-Distrobrevina en las células N1E115
α-DISTROBREVINA DAPI SOBREPOSICIÓN
El nucléolo
(Boisvert, 2007)
Cuerpos de Cajal
(Morimoto, Biology, 2013)
(Kawaguchi, Frontiers in bioscience, 2012)
Estrategia Experimental
Cultivo Celular
Inmunofluorescencia
indirecta de α-DB
Co-Inmunofluorescencia de
α-DB y proteínas
marcadoras de cuerpos
nucleares
α-DISTROBREVINA NOPP 140 DAPI SOBREPOSICIÓN
α-DISTROBREVINA B23 DAPI SOBREPOSICIÓN
α-DISTROBREVINA COILINA DAPI SOBREPOSICIÓN
Colocalizaciones
con
proteínas
marcadoras
de
cuerpos
nucleares
Podría forma parte de un complejo DAPC nuclear
Transporte al núcleo de mediante la acción de las importinas α2/β1
La permanencia en el nucléolo necesita la interacción con DNA, RNA o proteínas
nucleolares como Nopp140 y B23 O’Day & Catalano, 2013
Conclusión
La α-DB2 se distribuye en el citoplasma y núcleo, colocalizando con las
proteínas nucleolares Nopp140, B23 y la proteína marcadora de
cuerpos de Cajal, coilina. Lo que sugiere que la α-DB2 podría estar
involucrada con la estructura y funcionamiento del nucléolo.
Objetivos Particulares
1. Identificar la isoforma de la α-Distrobrevina que se encuentra
presente en las células N1E115.
2. Analizar la distribución subcelular de la α-Distrobrevina en las
células N1E115.
3. Identificar la función de la α-Distrobrevina en el nucléolo y los
cuerpos de Cajal.
RNA interferente (shRNA)
(Genetic Engineering & Biotechnology News, 2006)
Estrategia Experimental
Cultivo Celular
Transfección
Inmunodetección de α-DB,
Nopp140 y Coilina
Inmunodetección de α-DB,
Nopp140 y Coilina
Actina
70 kDa
55 kDa
α-DB2
S
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b
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0 .5
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RNAi
Control
α-DB
RNAi
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ja
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Disminución en los niveles de las proteínas
α-DB2 y Nopp140
Niveles de α-DB2
Niveles de Nopp140
Disminución en los niveles de las proteínas
α-DB2 y Coilina
Niveles de Coilina
Estrategia Experimental
Cultivo Celular
Transfección
Inmunodetección de α-DB,
Nopp140 y Coilina
Inmunofluorescencia de
coilina
mCherry COILINA SOBREPOSICIÓN MAGNIFICACIÓN 100X
RNAi
CONTROL
α-DB
RNAi Cuerpos de Cajal presentes en células con el
interferente para α-DB2
R
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C
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C
a
ja
l
p < 0 .0 5
Cuerpos de Cajal presentes en células con el
interferente para α-DB2
Nopp140 que actúa como chaperona de las RNPs Isaac et al. 1998
Funciones de los cuerpos de Cajal en las que no participa coilina, como el
control de estrés celular y maduración de snRNPs Hebert, et al., 2001
Conclusión
La disminución de Nopp140 en las células N1E115 que expresan el
RNAi para α-DB indica una posible relación funcional entre α-DB2 y
Nopp140, además la disminución de la α-DB2 no afecta los niveles de
coilina pero indica que participa en el ensamblaje y/o funcionamiento
de los cuerpos de Cajal.
RESUMEN DE RESULTADOS
Núcleo
R.E.
Citoplasma
Extracelular
α-DB2
α-DB2
α-DB2
α-DB2
α-DB2
Nucléolo
Cuerpo de
Cajal
Nopp140
α-DB2
B23
Coilina
Coilina
Coilina
α-DB2
α-DB2
α-DB2
α-DB2
Nopp140
B23
Nopp140 Nopp140
Nopp140 Nopp140
Nopp140
B23
Nopp140
Nopp140
Coilina
Recomendaciones
• Secuenciar los productos de α-DB2B obtenidos por PCR tiempo real
con cDNA de cerebro de ratón y cDNA de células N1E115 para
determinar la secuencia de las isoformas de splicing de α-DB2.
• Construir el vector de expresión α-DB2-GFP para analizar el
transporte y la localización de la proteína exógena.
• Demostrar mediante ensayos de inmunoprecipitación, si α-DB2
interacciona con coilina.
GRACIAS
Extracción de proteínas
Cultivo Lavado Resuspensión
Sonicación
Cuantificación Electroforesis en Gel Tinción
Inmunodetección en Fase Sólida
Electroforesis en Gel
Transferencia Tinción Bloqueo
Incubación
anticuerpo primario
Incubación anticuerpo
secundario
Revelado
ECL
PCR Punto Final
Oligonucleótidos
específicos
cDNA de N1E115 y
Control Positivo
Mezcla de la reacción
Amplificación
Electroforesis en Gel
RT-PCR (M-MLV)
28s
18s
Extracción de RNA total
1000 pb
850 pb
650 pb
500 pb
400 pb
300 pb
149
159 & 160
M - +
α-DB2A α-DB2B
- + - + - +
α-DB1
GAPDH
195
200 pb
100 pb
PCR Tiempo Real
Oligonucleótidos
específicos
Verificación de
amplificación
28s
18s
Extracción de RNA total
RT-PCR (M-MLV)
Estandarización
Amplificación
Inmunofluorescencia Indirecta
Cultivo Fijado Permeabilización Bloqueo
Incubación anticuerpo
primario
Incubación anticuerpo
secundario
Montaje
Detección
Transfección
DNA plasmídico Lipofectamina 2000 Incubación
Adición
Visualización/Análisis
mCherry

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ANÁLISIS DE LA DISTRIBUCIÓN Y FUNCIÓN NUCLEAR DE LA α-DISTROBREVINA EN LAS CÉLULAS NEURONALES N1E115

  • 1. DEPARTAMENTO DE CIENCIAS DE LA VIDA Y LAAGRICULTURA CARRERA DE INGENIERÍA EN BIOTECNOLOGÍA “ANÁLISIS DE LA DISTRIBUCIÓN Y FUNCIÓN NUCLEAR DE LA α-DISTROBREVINA EN LAS CÉLULAS NEURONALES N1E115” NATALIE RAQUEL SANTAMARIA GUAYASAMIN Directora: Dra. Thelvia Ramos Codirector: Dr. Bulmaro Cisneros SANGOLQUÍ, ABRIL 2015
  • 2. Complejo de Proteínas Asociadas a la Distrofina (DAPC) (Fairclough, Nature Review Genetics, 2013)
  • 3. Familia de las distrobrevinas (Rees et al. Neuromuscular Disorders. 2007) DTNA DTNB
  • 4. Gen DTNA CROMOSOMA 18 TAMAÑO ~440Kb PRINCIPALES ISOFORMAS EXPRESIÓN (Ambrose et al, Genomics, 1997) α-DB1 α-DB2 α-DB3 FUNCIONES • Señalización • Organización y estabilidad de agrupaciónes de AchR • Producción GMP y NOS • Correcta formación y función de BSC
  • 5. Antecedentes Localización nuclear de α-Distrobrevina en diferentes líneas celulares (Fuentes-Mera, Experimental cell research,2006) (Gonzalez-Ramirez, Journal of Cellular Biochemistry, 2008) Transporte al núcleo mediado por las importinas α2/ β1 (Aguilar, A, FASEB, 2015) Células HeLa Células C2C12
  • 7. Objetivo General Analizar la distribución y función nuclear de la α-Distrobrevina en las células neuronales N1E115.
  • 8. Objetivos Particulares 1. Identificar la isoforma de la α-Distrobrevina que se encuentra presente en las células N1E115. 2. Analizar la distribución subcelular de la α-Distrobrevina en las células N1E115. 3. Identificar la función de la α-Distrobrevina en el nucléolo y los cuerpos de Cajal. 1. Identificar la isoforma de la α-Distrobrevina que se encuentra presente en las células N1E115. 2. Analizar la distribución subcelular de la α-Distrobrevina en las células N1E115. 3. Identificar la función de la α-Distrobrevina en el nucléolo y los cuerpos de Cajal.
  • 9. Estrategia Experimental Cultivo Celular Inmunodetección en fase sólida de α-DB Controles positivos
  • 10. Detección de bandas utilizando un anticuerpo específico contra α-Distrobrevina Blake et al., 1996; Ceccarini, et al., 2002; Enigk & Maimone, 1999; Pawlikowski & Maimone, 2008 Isoforma α-DB2 Ceccarini et al., 2002; Enigk & Maimone, 1999 α-DB2A y α-DB2B difieren en menos de 1kDa 100 kDa 70 kDa 55 kDa 35 kDa α-DB2 α-DB1 C2C12 HeLa N1E115 Controles
  • 11. Estrategia Experimental Cultivo Celular Inmunodetección en fase sólida de α-DB Extracción de RNA total RT-PCR PCR punto final (Enigk & Maimone, Gene, 1999) 28s 18s Cerebro de ratón Ceccarini et al., 2002; Enigk & Maimone, 1999; Grady et al., 2003; Navakauskiene, et al., 2002 Reconociemiento de las isoformas de α- DB empleando oligonucleótidos específicos
  • 12. Análisis de productos amplificados con cebadores específicos 1000 pb 850 pb 650 pb 500 pb 400 pb 300 pb 728 500 & 493 M Actina control - + α-DB2A - C N α-DB2B - C N Valasek & Repa, 2005; Wong & Medrano, 2005 Escaso RNAm, qPCR detecta menos de 5 copias de transcrito C: cerebro de ratón N: células N1E115 M: marcador de tamaño molecular
  • 13. Estrategia Experimental Cultivo Celular Inmunodetección en fase sólida de α-DB Diseño y prueba de Oligonucleótidos PCR punto final Estandarización PCR tiempo real 1000 pb 850 pb 650 pb 500 pb 400 pb 300 pb 149 159 & 160 M - + α-DB2A α-DB2B - + - + - + α-DB1 GAPDH 195 200 pb 100 pb
  • 14. Reporte de resultados de la PCR Tiempo Real-Cualitativo Gráfico de amplificación para cDNA control Ciclos de amplificación Ciclos de amplificación Gráfico de amplificación para células N1E115 ΔRn ΔRn α-DB2A CURVA CONTROL CURVA N1E115 SOBREPOSICIÓN α-DB2B –dF/dT Temperatura (°C) –dF/dT Temperatura (°C) –dF/dT Temperatura (°C)
  • 15. Niveles de la α-DB2 se incrementan durante la diferenciación neuronal Kulyte et al., 2002; Rees et al., 2007 & Ceccarini et al., 2002 Mutaciones nucleotídicas o alteraciones en la secuencia del gen afectan en varios grados la temperatura de la curva de desnaturalización Horbinski, et al., 2010 (Horbinski, et al., JMD, 2010)
  • 16. Conclusión La isoforma α-DB2 es la que se encuentra expresada en las células N1E115, pero la cantidad de RNA mensajero de la α-DB2A y de la α- DB2B que existe en las células es escaso, lo que dificulta la identificación de la variable de splicing de la α-DB2.
  • 17. Objetivos Particulares 1. Identificar la isoforma de la α-Distrobrevina que se encuentra presente en las células N1E115. 2. Analizar la distribución subcelular de la α-Distrobrevina en las células N1E115. 3. Identificar la función de la α-Distrobrevina en el nucléolo y los cuerpos de Cajal.
  • 19. Distribución de α-Distrobrevina en las células N1E115 α-DISTROBREVINA DAPI SOBREPOSICIÓN
  • 21. Cuerpos de Cajal (Morimoto, Biology, 2013) (Kawaguchi, Frontiers in bioscience, 2012)
  • 22. Estrategia Experimental Cultivo Celular Inmunofluorescencia indirecta de α-DB Co-Inmunofluorescencia de α-DB y proteínas marcadoras de cuerpos nucleares
  • 23. α-DISTROBREVINA NOPP 140 DAPI SOBREPOSICIÓN α-DISTROBREVINA B23 DAPI SOBREPOSICIÓN α-DISTROBREVINA COILINA DAPI SOBREPOSICIÓN Colocalizaciones con proteínas marcadoras de cuerpos nucleares
  • 24. Podría forma parte de un complejo DAPC nuclear Transporte al núcleo de mediante la acción de las importinas α2/β1 La permanencia en el nucléolo necesita la interacción con DNA, RNA o proteínas nucleolares como Nopp140 y B23 O’Day & Catalano, 2013
  • 25. Conclusión La α-DB2 se distribuye en el citoplasma y núcleo, colocalizando con las proteínas nucleolares Nopp140, B23 y la proteína marcadora de cuerpos de Cajal, coilina. Lo que sugiere que la α-DB2 podría estar involucrada con la estructura y funcionamiento del nucléolo.
  • 26. Objetivos Particulares 1. Identificar la isoforma de la α-Distrobrevina que se encuentra presente en las células N1E115. 2. Analizar la distribución subcelular de la α-Distrobrevina en las células N1E115. 3. Identificar la función de la α-Distrobrevina en el nucléolo y los cuerpos de Cajal.
  • 27. RNA interferente (shRNA) (Genetic Engineering & Biotechnology News, 2006)
  • 28. Estrategia Experimental Cultivo Celular Transfección Inmunodetección de α-DB, Nopp140 y Coilina Inmunodetección de α-DB, Nopp140 y Coilina
  • 29. Actina 70 kDa 55 kDa α-DB2 S c r a m b l e S i R N A 0 .0 0 .5 1 .0 1 .5 U n id a d e s R e la tiv a s d e P r o te ín a Nopp 140 130 kDa S c r a m b l e S i R N A 0 .0 0 .5 1 .0 1 .5 U n id a d e s R e la tiv a s d e P r o te ín a RNAi Control α-DB RNAi R N A i C O N T R O L a - D B R N A i 0 1 2 3 4 5 P r o m e d io d e c u e r p o s d e C a ja l p < 0 .0 5 Disminución en los niveles de las proteínas α-DB2 y Nopp140 Niveles de α-DB2 Niveles de Nopp140
  • 30. Disminución en los niveles de las proteínas α-DB2 y Coilina Niveles de Coilina
  • 31. Estrategia Experimental Cultivo Celular Transfección Inmunodetección de α-DB, Nopp140 y Coilina Inmunofluorescencia de coilina
  • 32. mCherry COILINA SOBREPOSICIÓN MAGNIFICACIÓN 100X RNAi CONTROL α-DB RNAi Cuerpos de Cajal presentes en células con el interferente para α-DB2
  • 33. R N A i C O N T R O L a - D B R N A i 0 1 2 3 4 5 P r o m e d io d e c u e r p o s d e C a ja l p < 0 .0 5 Cuerpos de Cajal presentes en células con el interferente para α-DB2
  • 34. Nopp140 que actúa como chaperona de las RNPs Isaac et al. 1998 Funciones de los cuerpos de Cajal en las que no participa coilina, como el control de estrés celular y maduración de snRNPs Hebert, et al., 2001
  • 35. Conclusión La disminución de Nopp140 en las células N1E115 que expresan el RNAi para α-DB indica una posible relación funcional entre α-DB2 y Nopp140, además la disminución de la α-DB2 no afecta los niveles de coilina pero indica que participa en el ensamblaje y/o funcionamiento de los cuerpos de Cajal.
  • 38. Recomendaciones • Secuenciar los productos de α-DB2B obtenidos por PCR tiempo real con cDNA de cerebro de ratón y cDNA de células N1E115 para determinar la secuencia de las isoformas de splicing de α-DB2. • Construir el vector de expresión α-DB2-GFP para analizar el transporte y la localización de la proteína exógena. • Demostrar mediante ensayos de inmunoprecipitación, si α-DB2 interacciona con coilina.
  • 40. Extracción de proteínas Cultivo Lavado Resuspensión Sonicación Cuantificación Electroforesis en Gel Tinción
  • 41. Inmunodetección en Fase Sólida Electroforesis en Gel Transferencia Tinción Bloqueo Incubación anticuerpo primario Incubación anticuerpo secundario Revelado ECL
  • 42. PCR Punto Final Oligonucleótidos específicos cDNA de N1E115 y Control Positivo Mezcla de la reacción Amplificación Electroforesis en Gel RT-PCR (M-MLV) 28s 18s Extracción de RNA total
  • 43. 1000 pb 850 pb 650 pb 500 pb 400 pb 300 pb 149 159 & 160 M - + α-DB2A α-DB2B - + - + - + α-DB1 GAPDH 195 200 pb 100 pb PCR Tiempo Real Oligonucleótidos específicos Verificación de amplificación 28s 18s Extracción de RNA total RT-PCR (M-MLV) Estandarización Amplificación
  • 44. Inmunofluorescencia Indirecta Cultivo Fijado Permeabilización Bloqueo Incubación anticuerpo primario Incubación anticuerpo secundario Montaje Detección
  • 45. Transfección DNA plasmídico Lipofectamina 2000 Incubación Adición Visualización/Análisis mCherry

Notas del editor

  1. La aDB es una proteína citoplasmática que forma parte de un complejo multiproteínico denominado DAPC. Este complejo es Brindando soporte estructural y modulando la señalización de la membrana plasmática
  2. Las mismas que están codificadas
  3. Como se indicó las aDBs estan codificadas por el gen DTNA, este gen se localiza α-DB1 (84 kDa); α-DB2 (65 kDa), and α-DB 3 (42 kDa)
  4. Como se mencionó la aDB es una proteína citoplásmática, pero estudios anteriores mostraron su localización nuclear. Mediante fraccionamientos celulares e inmunofluorescencias indirectas Fuentes y colaboradores encontraron a la aDB en el nucleo de células de cáncer cervico uterino hela y Gonzalez ramirez la empleando inmunofluorescencias indirectas en el núcleo de células de mioblasto murino C2C12 Fraccion no unida
  5. Debido a que se observó la localización nuclear de adB en varias líneas celulares y se demostró que esta implicada…………… Nos interesa saber como se encuentra aDB en un modelo de células neuronales. En consecuencia en esta investigación se emplearon células
  6. Por todo esto se planteó como objetivo general de la investigación
  7. Y se propusieron los siguientes objetivos particulares. Como primer objetivo se planteó
  8. Y se ejecuto cultivando las células N1E115 y se realizó la inmunodetección En el ensayo se emplearon células C2C12 y Hela Como controles positivos ya que evidencias previas mostraron la presencia de aDB en estas líneas celulares.
  9. De manera interesante en el extracto total de células N1E115 se observó una sola banda de aproximadamente Por lo que mediante el método de inmunodetección en fase sólida es imposible diferenciar una de la otra
  10. En consecuencia para la detección de la variante de splicing specífica se empleó el método de PCR punto final Varios autores aconsejan el uso de oligonucleótido específicos para la detección de las variantes de splicing, por lo que se diseñaron pares de cebadores específicos dirigidos a la secuencia unica del carboxilo terminal de cada una de las proteínas. Además la técnica se estandarizó empleando cerebro de ratón por que anteriormente fueron detectadas variantes de splicing de la aDB2 en este tejido. (Lien 2012 y enigk en 1999)
  11. Una vez probados los oligos y ajustadas las condiciones de la PCR
  12. Se empleó un PCR tiempo real de DOS PASOS con detección de syber green. Oligos cumplir con amplicón de maximo 150pb, estar conformados idealmente por 20nt, la temperature de alineamiento de los cebadores no debe ser diferente en mas de 3 grados y no debe sobrepasar los 63 grados centigrados Estandarización usando cDNA de cerebro de ratón Verificando que se produzca solo un pico en la curva de desnaturalización de cada amplicón. Esto indica la especificidad de los oligos diseñados. Cabe recalcar que se utilizó GAPDH como gen de expresión constitutiva.
  13. El análisis de las amplificaciones mostró
  14. En base a los resultados observados se presume que el escaso RNAm detectado en las células N1E115 en relación al RNAm detectado en el cerebro de raton se debe a que utilizamos células indiferenciadas. Esto se sugiere por que en publicaciones anteriores se mostró que los niveles de aDB2 se Además el cambio de aproximadamente 7 grados en la curva de desnaturaización del producto para aDB2B se debe a alteraciones en la secuencia nucleotídica del gen, esto se justifica por que ensayos sobre los genes de isocitrato deshidogenasa 1 y 2 mostraron mediante técnicas de PCR en tiempo real que la variación en varios grados del amplicón de un mismo gen se debe a
  15. Por todo lo anteriormente mencionado se concluye que
  16. Una vez detectada la isoforma
  17. Para esto se cultivaron células sobre cubreobjetos y se realizaron
  18. la aDB2 marcada en verde y los nucleos teñidos en azul con DAPI. Para comprender la importancia de la posible localización de la aDB en estos cuerpos nucleares es necesario indicar su función en las células.
  19. El nucléolo es el compartimento que controla la biogénesis de las subunidades ribosomales
  20. Por otro lado los cuerpos de cajal son cuerpos nucleares esféricos cuyo tamaño y cantidad
  21. En consecuencia para comprobar si aDB se localiza en estos cuerpos nucleares se llevaron a cabo ensayos de colocalización Nopp 140 (componente fibrilar denso), B23 (componente granular) y marcador de cuerpos de Cajal: coilina.
  22. Como muestra la figura, las flechas indican la colocalización
  23. De manera interesante la aDB2 colocaliza con las proteínas marcadoras de nucléolo Nopp140 y B23
  24. En conclusión en base a los resultados observados,
  25. Una vez observada la localización
  26. RNA pequeño de orquilla. Esta tecnología actua mediante la transfección de un Plásmido con la secuencia Maquinaria celular Despues, RNA de doble cadena con horquilla se trnasporta al citoplasma
  27. Ya que se comprendió el mecanismo a emplearse se planteó la siguiente estrategia experimental
  28. Los extractos totales de las células transfectadas mostraron una disminución aparente de aproximadamente Y como consecuencia secundaria
  29. Con respecto a la proteína marcadora ………….., encontramos que aparentemente existe una ligera disminución del 10% Es importante mencionar que estos ensayos se empleó la detección de actina como control de carga
  30. Considerando los resultados observados con respecto a la disminución de Nopp140 como efecto de la disminución de aDB, es importante señalar que ………………. Por lo que la disminución de aDB afecta la estabilidad y funcionamiento de Nopp140 en la formación de ribonucleoproteínas Por otro lado, al no verse afectados los niveles de coilina
  31. En conclusión, la disminución
  32. Finalmente se recomienda
  33. Agarosa 10%, 20V 1h
  34. 3’UTR y parte del carboxilo terminal para las aDB2A, aDB2B y como control actina