Este documento resume los principales métodos de diagnóstico de laboratorio para detectar enfermedades infecciosas virales y bacterianas. Describe las técnicas directas e indirectas para identificar virus respiratorios, virus herpes, gastroenteritis virales, enfermedades tropicales como dengue, chikungunya y fiebre amarilla, así como hepatitis, VPH y otras infecciones. El documento proporciona detalles sobre las muestras clínicas, pruebas serológicas, cultivos celulares, microscopía y

1. EL LABORATORIO COMO
HERRAMIENTA EN EL
DIAGNÓSTICO DE
ENFERMEDADES
INFECCIOSAS
Laura Vanessa Moreno
Villamizar
Slenddy Dayhanna Padilla
Velandia
Laura Carolina Rodriguez
Nuñez

2. INFECCION VIRAL
Los virus causan infecciones familiares como
el resfrío común, la gripe y las verrugas.
Son muy pequeños, mucho más pequeños que
las bacterias
Pueden causar enfermedades graves como
el VIH / SIDA, la viruela y las fiebres
hemorrágicas.
Los virus son como secuestradores. Invaden las
células vivas normales y las aprovechan para
mLualsti pinlifceacrcsieo nye psr ovidraulceirs ostorons d vifiírcuisle cso dmeo t realtlaors .
porque los virus viven dentro de las células de
su cuerpo. Están "protegidos" contra los
medicamentos, que suelen trasladarse a través
del torrente sanguíneo

3. MANEJO DE LA
MUEMÉSTOTDORS A
DIRECTOS
Detección de virus
Biopsia
Descamación como Papanicolaou
Frotis
Lavado bronquioalveolar
Secreción
Exudados
Líquido corporal
Sangre
INDIRECTOS
Serología:
IgM
IgG
Muestreo periódico:
Dengue
Hepatitis
SIDA
Enfermedades congénitas:
Líquido amniótico
Muestra de sangre al nacimiento
Respuesta
inmune del
virus

4. Cómo se evidencia la actividad viral en un cultivo celular?
1) Por efecto citopático (ECP) observables mediante el uso de microscopio invertido
LISIS
Picornavirus
(virus de la
Fiebre
Aftosa,
Herpesvirus
bovino)
Ejemplo
REDONDEAMI
ENTO
( Adenovirus)
Este método no permite la identificación del agente causal, por lo que
se requiere la
confirmación mediante técnicas específicas. IF- Inmunhistoquímica
(IHQ).
DESPRENDIMI
ENTO y LISIS
(HVB-5)
SINCICIOS
=
Paramyxovi
us (Virus
sincicial
respiratorio)
VACUOLIZACI
ON = BVDV
cepa citopática.

5. 2) Por visualización de cuerpos de inclusión (CI):
• Tipos Cowdry A y B, intranucleareas e intracitoplasmáticos. Su
visualización en cultivos celulares se efectúa previa tinción con
colorantes específicos.
Ejemplos:
• Virus de la rabia -Corpúsculos de Negri (intracitoplasmáticos en
neuronas) –Coloración de Seller’s.
• Los cuerpos de inclusión pueden visualizarse también en cortes
histológicos ; por ejemplo: Herpesvirus equino- Cowdry A
(intranucleares en hepatocitos y células bronquiales fetales)-
coloración de hematoxilina-eosina.
La detección de cuerpos de inclusión asociados, en algunos
casos es orientativa y en otras confirmatoria de la presencia
del agente.

6. VIRUS
RESPIRATORIOS

7. Principales virus
• VRS  Lactantes
• Rinovirus (50%) Todas edades
• Adenovirus  Todas edades
• Gripe  Especialmente < 5 años
• Parainfluenza  < 5 años
• Coronavirus 
Muestras clínicas
• Frotis nasal
• Lavado nasal
• Frotis faringeo
• Aspirado nasofaringeo
o Obtenerlas en los tres
primeros dias despues del
inicio de los sintomas

8. Métodos de Dx directo
• Cultivo viral  Gold
estándar
o Efecto citopatico
o Dx lento  5-7 días
o No todos son cultivables
 HBoV
 CoV
 RV
 PIV
• Detección de Ag mediante
Ac monoclonales
o Inmunofluerescencia
o Inmunocromatografía
o Enzimoinmunoanálisis
• Detección de ácidos
nucleicos
o PCR

9. Métodos indirecto: serología

10. VIRUS HERPES
HUMANO

11. Virus herpes simplex
Prueba de
Tzank
• Tinción de Wright o Giemsa
• Observa sincitios e inclusiones nucleares de
Cowdry
Detección de
Ac
• Usa para primo infección y estudios
epidemiológicos
Transmisión: Saliva
• VHS-1
Transmisión: Secreción
vaginal
• VHS-2

12. Varicela zoster
• Virus se aisla de las
vesículas
• Prueba de Tzanck
• Técnicas de biología
molecular
Virus Epstein-Barr
• Mononucleosis infecciosa
• Deteccion en suero de:
o Linfocitos atipicos
o Anticuperpos heterofilicos
 No están en
reactivaciones
o Anticuerpos anti-VEB

13. CITOMEGALOVIRUS
• Infecta al 50 – 80% de las
personas en el transcurso
de la vida
VHH 6, 7 y 8
• VHH6  Roseola niños
• VHH7  Roseola
• VHH8 Sarcoma de
Kaposi
Ojo de
lechuza
Están en tejidos
y en orina
Papanicolau
HE
Eosina
VHH7
VHH8
PCR
VHH6
Inmunofluorescencia
Enzimoinmunoanálisis
VHH7 VHH6
Cultivo
viral

14. GASTROENTERITI
S VIRAL

15. Indicación para la
realización de
coprológico y Ag
virales en heces
o Valorar si hay deshidratación,
• Diarrea mucosanguinolenta
• Inmunodeficiencias
• Diarrea de evolución
historia clínica y exploración física
o Laboratorio
 Se usan cuando hay deshidratación
 Descartar otros dx
prolongada  >15 días
• Diarrea en niño llegado de
países en vía de desarrollo
Diagnóstico

16. Rotavirus • ELISA
• Microscopía electrónica
• Ig especificas
• Proteínas virales  ELISA – Aglutinación látex
Adenovirus
Calicivirus • RT-PCR
• Microscopía electrónica
• ELISA
• Inmunoflorescencia
• PCR
• Cultivo
Astrovirus

17. ENFERMEDAD
ES
TROPICALES

18. DENGUE
Leucopenia
Incremento de transaminasas
en dengue febril
Trombocitopenia
Aumento de fibrinólisis
Hemoconcentración
IgM – IgG (ELISA) después de
la fase febril
PCR
Detección de proteína vírica
específica NS1 por ELISA
Inmunohistoquímica para
DENGUE
HEMORR
ÁGICO

19. Se transmite por:
Cuando el
mosquito Aedes
Aegypti se alimenta
con sangre de una
persona enfermas con
este virus y luego pica
a personas sanas.
La hembra deposita
sus huevos en las
paredes de
recipientes con agua
estancada, limpia y a
la sombra. Al beber
esta agua

20. CHIKUN
GUNYA
Leucopenia
Trombocitopenia
RT-PCR
Cultivo
RARA
VEZ
Títulos altos de IgM
Concentración cuatro veces mayor de la
IgG convaleciente

21. FIEBRE
Leucopenia AMARILLA
Proteinuria 5 a 6 g/L
AST es el doble de, ALT
Tiempo de protrombina
IgM por ELISA en fase aguda y convaleciente
PCR
Inmunoanálisis de anticuerpos monoclonales contra
Ags víricos circulantes.
Albuminuria para Dx diferencial

22. Se transmite por:
•Cuando el mosquito Aedes
Aegypti, Aedes Haemagogus y
Aedes Sabethes se alimenta con
sangre de una persona enfermas con
este virus y luego pica a personas
sanas.

23. OTRAS

24. RABI
A
Acs fluorescentes Biopsia de piel
Sensibilidad de 60 a 80%
PCR de transcriptasa inversa
Amplificación de secuencias
de ácidos nucleicos
Aislamiento vírico de LCR o saliva
Acs en suero y LCR
CUERPOS DE NEGRI

25. RUBÉ
OLA
Leucopenia en primeras etapas
Aumento de células plasmáticas
Acs IgM
Títulos de Acs IgG
Aislamiento del virus
Falsos positivos de Acs IgM
Acs en orina y saliva
PCR
Virus de Epstein-
Barr
CMV
Parvovirus
Factor
reumatoide

26. POLIOMI
ELITIS Recuento periférico de leucocitos
Presión de LCR y sus proteínas
Glucosa no disminuye
Menos de 500 leucocitos/μl
24h
Linfocito
s
LCR normal en 5% de los casos
Acs neutralizantes
Fijadores de complemento
Normal o
apenas alto
Primera o
segunda semana
de la enfermedad

27. HEPATITI
S B Detección del antígeno superficial del virus de la hepatitis
B (HBsAg).
La infección aguda se caracteriza por la presencia del
HBsAg y de inmunoglobulina M (IgM) en el antígeno del
núcleo HBcAg.
En la fase inicial de la infección los pacientes también son
seropositivos para el HBeAg.
La infección crónica se caracteriza por la persistencia (más
de seis meses) del HBsAg (con o sin concurrencia de
HBeAg).
La persistencia de HBsAg es el principal marcador del
riesgo de ulterior desarrollo de hepatopatía crónica y

28. HEPATITIS
C
La detección de anticuerpos anti-VHC mediante un examen
serológico revela que la persona está infectada con el virus.
Si el examen es positivo se debe realizar una prueba de
ARB del VHC para confirmar la infección crónica, dado que
entre el 15 y el 45% de las personas infectadas con el VHC
eliminan espontáneamente la infección mediante una
respuesta inmunitaria fuerte, sin necesidad de tratamiento.
Aunque ya no estén infectadas, los análisis serológicos de
esas personas revelarán la presencia de anticuerpos anti-
VHC.

29. Se analiza una muestra de
sangre para determinar la
secuencia genética del VHC.
El análisis del genotipo del
VHC sólo se hace una vez ya
que el genotipo no cambia.
Sin embargo, si alguien
infectado con el VHC se
vuelve a exponer al virus, se
pueden infectar con un
genotipo diferente.

30. VPH
Examen microscópico: observación de células sospechosas con
cambios coilocíticos en citologías de cuello uterino y vagina en
mujeres, usando la tinción de Papanicolaou.
Se pueden tomar biopsias de lesiones sospechosas, o incluso de
vegetaciones o verrugas genitales, tanto de hombres como de
mujeres, y enviar las muestras a una sección de anatomía
patológica para su análisis.
Detección directa del material genético del virus por técnicas de
biología molecular, que amplifican el ADN del virus y permiten la
identificación de los distintos serotipos.

31. http://www.aeped.es/sites/default/files/documentos/irsv.pdf
http://www.facmed.unam.mx/deptos/microbiologia/virologia/herpes.html
https://www.seimc.org/contenidos/documentoscientificos/procedimientosmicro
biologia/seimc-procedimientomicrobiologia8a.pdf
https://www.aeped.es/sites/default/files/documentos/gastroenteritis_aguda.pdf
http://www.facmed.unam.mx/deptos/microbiologia/virologia/inf-tracto-gastro.
html
BIBLIOGR
AFÍA

32. GRA
CIAS