Tuberculosis Drogo-Resistente 
Dr. C. Daniel Agüero V. 
Becado Medicina Interna 
Abril 2014
Introduccion 
 Con la aparición de fármacos efectivos para tratar la 
tuberculosis, hace más de cincuenta años, la mayor plaga que 
azotaba a la humanidad se convirtió en una enfermedad curable. 
 A los pocos años empezó a hacerse evidente una de las grandes 
limitaciones del tratamiento: el desarrollo de resistencia a las 
drogas antituberculosas. 
 Monoterapia directa o encubierta es la principal responsable de 
este fenómeno. 
 A pesar de nuestros conocimientos actuales, este fenómeno, 
derivado del mal uso de los medicamentos, se ha ido agravando 
progresivamente.
 La OMS estima que actualmente más de un 3% de pacientes 
tuberculosos que no han sido previamente tratados tienen 
bacilos multirresistentes, cifra que llega al 15% en los antes 
tratados. 
 A nivel mundial, se estima que en 2012 contrajeron TB-MR 
450 000 personas, y que 170 000 fallecieron por esta causa 
 Mitad  China, Rusia e India, más del 20% de los nuevos 
casos de TB y más del 50% de los casos antes tratados 
tienen TB- MR
 2012 3,6% de los nuevos casos de TB y el 20% de los tratados 
de TB con anterioridad tenian TB –MR. 
 2012 94000 pacientes candidatos al tratamiento de la 
TB-MR: 
A - 84000 con TB-MR confirmado 
- Aumento del 42% (2011). 
- Los mayores incrementos entre 2011-2012 fueron en 
India, Sudafrica y Ucrania. 
B - 77000 personas tratamiento de segunda línea. 
- 82% de los 94000 casos nuevos 
- El deficit de cobertura terapeutica , Africa (51%), y 
China, Pakistan y Sudafrica.
A finales de 2012 se había 
notificado al menos un caso 
de TB ultrarresistente en 92 
68 
 países.
 A nivel mundial, solo el 48% de los pacientes con TB-MR 
(casos detectados en 2010 )fueron tratados con éxito, 
altas tasas de mortalidad y de pérdida durante el 
seguimiento. 
 En 34 de 107 países se logró una tasa de éxito 
terapéutico del 75% o más en los pacientes con TB-MR.
 Primaria vs Inicial 
. 
1.- Natural: Forma Espontánea. 
2.- Primaria: Paciente sin tratamiento previo 
Inicial: Presente al inicio del tratamiento, se desconoce 
historia de tratamiento previo 
3.- Secundaria: Paciente previamente tratado, se desconoce 
historia de drogo-resistencia 
Adquirida: susceptible al inicio del tratamiento, resistencia 
presenta durante el curso del tramiento
 Monoresistente 
 Multidoro-Resistente (MDR): 
- Resistente a por lo menos Isoniacida (HIN) y 
Rifampicina 
 Poliresistente: 
-Resistente a 2 ó más drogas, pero ambas no son 
Isoniacida ni Rifampicina 
 Extensivamente Drogo-Resistente (XDR): 
- MDR más resistencia a una fluoroquinolona más a 
un inyectable de 2º línea (amikacina, kanamicina, 
capreomicina)
 Resistencia Isoniacida y Rifampicina 
 Resultado de programas inadecuados 
 Bajas tasas de Tratamiento Completo 
 Practicas clínicas equivocas 
 Suministro irregular y mala calidad de medicamentos 
Resulta en: 
Tratamiento prolongado (6 24 meses) 
Esquemas complejos y tóxicos (inyectables 4 – 6 meses) 
Costo/ caso aumenta de 10 a 100 veces 
Da origen: 
Bajas tasas de tratamiento Completo (menor a 80%) 
Tasas de letalidad alta
Diagnóstico 
Historia clínica: 
Características demográficas e históricas que deben levantar la sospecha de TB 
resistente a los medicamentos incluyen: 
 Tratamiento previo para la tuberculosis , sobre todo si la terapia fue 
autoadministrado. 
 Fracaso del tratamiento de TB con un régimen intermitente dosificado en el contexto 
de la infección por VIH avanzada . 
 Contagio región con altas tasas de resistencia a medicamentos conocidos . 
 Contacto con un paciente con tuberculosis resistente a los medicamentos . 
 Falta de respuesta a terapia empírica , sobre todo si la adhesión se ha documentado. 
 Tratamiento con fluoroquinolonas para el tratamiento de síntomas compatibles con 
neumonía adquirida en la comunidad, que más tarde se demuestra que era TB . 
Registros completos de todos cultivos anteriores , resultados de pruebas de 
susceptibilidad a fármacos y regímenes de tratamiento se deben obtener
Técnicas diagnósticas:
Genotipicas:
Método de las proporciones Canetti 
 Proporción de bacterias "resistentes" en una 
población sensible, se define la resistencia como el 
crecimiento de al menos el 1% del inóculo bacteriano 
que crece en presencia de una concentración "crítica" 
del antimicrobiano. 
 Laborioso, inóculo a partir del aislamiento primario; 
en segundo lugar, incubar las placas el suficiente 
tiempo para obtener crecimiento visible.
MGIT960 : 
 Medios líquidos no radiométricos, 
 son los sistemas más empleados en los laboratorios 
clínicos aislamiento primario de las micobacterias 
como para la realización de antibiogramas. 
 Más rápidos, y en general con excelente concordancia 
con los métodos clásicos en medio sólido. 
 Tienen sin embargo como principal inconveniente que 
los resultados pueden alterarse si se contaminan los 
cultivos con micobacterias ambientales.
DROGAS DE PRIMERA LÍNEA Y 
MECANISMOS MOLECULARES DE 
RESISTENCIA EN M. TUBERCULOSIS
 La resistencia a drogas en M. tuberculosis se debe: 
- Alteración secuencia de nucleótidos en genes que 
codifican al blanco de acción antibióticos 
- M. tuberculosis no se han reportado mecanismos 
de adquisición de genes de resistencia vía 
plásmidos o transposones. 
 Resistencia a múltiples drogas: 
- Acumulación de mutaciones individuales en varios 
genes, cada uno de los cuales es responsable de la 
resistencia a un antibiótico particular.
Resistencia a Isoniazida (HIN)
 Acción bactericida al interferir con la biosíntesis de ácidos 
micólicos 
 Captada por el bacilo, es activada por el sistema catalasa-peroxidasa. 
 Ausencia de actividad catalasamutaciones en el gen katG, 
mecanismos de resistencia a HIN. 
 Mutaciones: Región codificante del gen katGcodones 300 al 
507, 
 Más frecuentes las sustituciones de la serina 315 por treonina 
(S315®T) y el residuo de arginina 463 por leucina (R463®L). 
 Estas mutaciones explican aproximadamente el 50% de los casos
 La enzima enoil ACP reductasaelongación de ácidos 
grasos (acido micólico), codificada por gen inhA se 
identificó como un blanco de acción de INH 
 Las mutaciones en el gen inhA inducen 
sobreexpresión del gen inhA y niveles elevados de la 
enzima enoil reductasa en cantidades que superan el 
poder inhibitorio de INH. 
 Representan 25% de los casos de resistencia a INH
 Gen ahpC, codificante de la enzima alquil 
hidroperóxido reductasa, involucrada en la respuesta 
a estrés oxidativo. 
 Asociadas a un 10 a 15% resistentes a HIN.
Resistencia a Rifampicina
 Se une a la ARN polimerasa, responsable del proceso de 
transcripción de genes, al inhibir la expresión de genes, 
la rifampicina conduce apoptosis. 
 La resistencia a rifampicina: 
- mutaciones en el gen rpoBsubunidad b de la 
ARN polimerasa impiden  rifampicina inhiba la 
transcripción 
- Se localizan en un corto segmento de 81 pb 
codones 507 a 533 del gen. 
- Explica en un 95% a 98% resistencia
Resistencia a Pirazinamida
 Su mecanismo de acción no ha sido bien dilucidado, 
aunque se ha señalado la importancia de la acción de 
la enzima pirazinamidasa. 
 Se activa en medio ácido. 
 La pirazinamidasa desaminan la pirazinamida ácido 
pirazinoico que es transportado hasta el medio 
extracelular por una bomba de expulsión, ahí es 
protonada hasta la forma de POAH, que es mas 
liposoluble y penetra el bacilo.
 Mutaciones gen pncA, codificante de la enzima 
pirazinamidasa. 
 Entonces, uno de los mecanismos de resistencia a 
pirazinamida propuestos hasta el presente es la 
deficiencia en pirazinamidasa, con la subsecuente 
pérdida de la capacidad de activar el antibiótico
Resistencia a Estreptomicina
 Aminoglucósido bactericida que actúa sobre los 
ribosomas inhibiendo la síntesis de proteínas. 
 Mutaciones en el gen rpsl que codifica la proteína 
ribosomal S12. 
 Otra mutación identificada, pero de menor frecuencia 
se localiza en el gen rrs que codifica el ARN ribosomal 
16S en una región que interactúa con la proteína S12
Resistencia a Etambutol
 Compuesto sintético que actúa como bacteriostático, cuyo 
mecanismo de acción es inhibir la síntesis de componentes 
de la pared micobacteriana . 
 Mutaciones región designada como embCAB, que incluye 
genes codificantes para arabinosiltransferasas, enzimas 
que participan en la síntesis de componentes únicos de la 
pared celular de micobacterias 
 Se asocian a altos niveles de resistencia y se han 
identificado en aproximadamente el 65%
Tratamiento de los pacientes con 
TB-MDR:
 Recomendación 1: Debe usarse una fluoroquinolona. 
[Recomendación fuerte → nivel de evidencia muy bajo]. 
 Recomendación 2: Se deben usar las fluoroquinolas de 
generaciones más recientes, por sobre las de más 
antigua generación. [Recomendación condicional → 
Nivel de evidencia muy bajo]. 
 Recomendación 3: Debe usarse la etionamida (o 
protionamida). [Recomendación fuerte → Nivel de 
evidencia muy bajo].
 Recomendación 4: Deben indicarse, probablemente, cuatro 
drogas antituberculosas de segunda línea para aumentar la 
eficacia de los esquemas (incluyendo un agente inyectable), 
así como la pirazinamida, que debería ser incluida en la fase 
intensiva. [Recomendación condicional → Nivel de evidencia 
muy baja]. 
 Recomendación 5: El régimen de retratamiento debería 
incluir al menos pirazinamida, una fluoroquinolona, un 
agente inyectable, etionamida (o protionamida), y 
cicloserina o PAS (ácido para-aminosalicilico) si no se puede 
utilizar cicloserina. [Recomendación condicional → Nivel de 
evidencia muy baja].
Duración Tratamiento
 Recomendación 1: Duración de la fase intensiva de por 
lo menos 8 meses. Recomendación condicional → Nivel 
de evidencia muy bajo. 
 Recomendación 2: La duración del tratamiento total 
debe ser de por lo menos 20 meses, en pacientes sin 
tratamiento previo por TB-MDR. [Recomendación 
condicional → Nivel de evidencia muy bajo].
Monitorización Terapia
 Recomendación: Uso de baciloscopia de expectoración 
y cultivo, en vez de baciloscopia sola para la supervisión 
durante el tratamiento de los pacientes con TB-MDR. 
[Recomendación condicional — Nivel de evidencia muy 
bajo
Modelos de manejo de TB-MDR
 Recomendación: 
 Usar el modelo de manejo principalmente 
ambulatorio, más que los modelos principalmente 
basados en la hospitalización. [Recomendación 
condicional Nivel de evidencia muy baja].
Bibliografía 
 Guías para el manejo de la tuberculosis resistente. OMS 2011JUAN CARLOS RODRÍGUEZ D. y PAULA 
IRAZOQUI G. 
 Fármacos con actividad frente a Mycobacterium tuberculosis Pere Coll Servicio de Microbiología. 
Hospital de la Santa Creu i Sant Pau. Departamento de Genética y Microbiología. Universidad 
Autónoma de Barcelona. España. 
 Pruebas de sensibilidad para Mycobacterium tuberculosis César Ugarte-Gil 1, Mario Ponce Alvarez1, 
David A. J. Moore. 
 Resistencia a drogas en M. Tuberculosis: Bases moleculares N Arráiz1, V Bermúdez2, B Urdaneta. 
2005 
 Evaluación de una técnica de hibridación reversa para identificación rápida de micobacterias en 
Chile Evaluation of a reverse hybridization assay for the identification of Mycobacterium in Chile 
Tamara Leiva C. Rev Chil Enf Respir 2012; 28: 9-15 
 Nuevos desafíos en tuberculosis VICTORINO FARGA C. Rev Chil Enf Respir 2011; 27: 161-168 
 Métodos de detección rápida de M. Tuberculosis. Fernando Alcaide Universidad de Barcelona. 2011 
 Detección de mutaciones asociadas a cepas multidrogo resistente de Mycobacterium tuberculosis 
en Chile Pamela Araya, Maritza Velasco, Javier Tognarelli, Fabiola Arias,Tamara Leiva, Angélica 
Sccapatticio, Pablo Alviz, Jorge Fernández, Rev Med Chile 2011; 139: 467-473 
 Tuberculosis, Caminero, Fargas Editorial Mediterraneo 3º Edición 2011
 Gracias

Tbc drogo resistente

  • 1.
    Tuberculosis Drogo-Resistente Dr.C. Daniel Agüero V. Becado Medicina Interna Abril 2014
  • 2.
    Introduccion  Conla aparición de fármacos efectivos para tratar la tuberculosis, hace más de cincuenta años, la mayor plaga que azotaba a la humanidad se convirtió en una enfermedad curable.  A los pocos años empezó a hacerse evidente una de las grandes limitaciones del tratamiento: el desarrollo de resistencia a las drogas antituberculosas.  Monoterapia directa o encubierta es la principal responsable de este fenómeno.  A pesar de nuestros conocimientos actuales, este fenómeno, derivado del mal uso de los medicamentos, se ha ido agravando progresivamente.
  • 3.
     La OMSestima que actualmente más de un 3% de pacientes tuberculosos que no han sido previamente tratados tienen bacilos multirresistentes, cifra que llega al 15% en los antes tratados.  A nivel mundial, se estima que en 2012 contrajeron TB-MR 450 000 personas, y que 170 000 fallecieron por esta causa  Mitad  China, Rusia e India, más del 20% de los nuevos casos de TB y más del 50% de los casos antes tratados tienen TB- MR
  • 5.
     2012 3,6%de los nuevos casos de TB y el 20% de los tratados de TB con anterioridad tenian TB –MR.  2012 94000 pacientes candidatos al tratamiento de la TB-MR: A - 84000 con TB-MR confirmado - Aumento del 42% (2011). - Los mayores incrementos entre 2011-2012 fueron en India, Sudafrica y Ucrania. B - 77000 personas tratamiento de segunda línea. - 82% de los 94000 casos nuevos - El deficit de cobertura terapeutica , Africa (51%), y China, Pakistan y Sudafrica.
  • 8.
    A finales de2012 se había notificado al menos un caso de TB ultrarresistente en 92 68  países.
  • 9.
     A nivelmundial, solo el 48% de los pacientes con TB-MR (casos detectados en 2010 )fueron tratados con éxito, altas tasas de mortalidad y de pérdida durante el seguimiento.  En 34 de 107 países se logró una tasa de éxito terapéutico del 75% o más en los pacientes con TB-MR.
  • 10.
     Primaria vsInicial . 1.- Natural: Forma Espontánea. 2.- Primaria: Paciente sin tratamiento previo Inicial: Presente al inicio del tratamiento, se desconoce historia de tratamiento previo 3.- Secundaria: Paciente previamente tratado, se desconoce historia de drogo-resistencia Adquirida: susceptible al inicio del tratamiento, resistencia presenta durante el curso del tramiento
  • 11.
     Monoresistente Multidoro-Resistente (MDR): - Resistente a por lo menos Isoniacida (HIN) y Rifampicina  Poliresistente: -Resistente a 2 ó más drogas, pero ambas no son Isoniacida ni Rifampicina  Extensivamente Drogo-Resistente (XDR): - MDR más resistencia a una fluoroquinolona más a un inyectable de 2º línea (amikacina, kanamicina, capreomicina)
  • 12.
     Resistencia Isoniaciday Rifampicina  Resultado de programas inadecuados  Bajas tasas de Tratamiento Completo  Practicas clínicas equivocas  Suministro irregular y mala calidad de medicamentos Resulta en: Tratamiento prolongado (6 24 meses) Esquemas complejos y tóxicos (inyectables 4 – 6 meses) Costo/ caso aumenta de 10 a 100 veces Da origen: Bajas tasas de tratamiento Completo (menor a 80%) Tasas de letalidad alta
  • 13.
    Diagnóstico Historia clínica: Características demográficas e históricas que deben levantar la sospecha de TB resistente a los medicamentos incluyen:  Tratamiento previo para la tuberculosis , sobre todo si la terapia fue autoadministrado.  Fracaso del tratamiento de TB con un régimen intermitente dosificado en el contexto de la infección por VIH avanzada .  Contagio región con altas tasas de resistencia a medicamentos conocidos .  Contacto con un paciente con tuberculosis resistente a los medicamentos .  Falta de respuesta a terapia empírica , sobre todo si la adhesión se ha documentado.  Tratamiento con fluoroquinolonas para el tratamiento de síntomas compatibles con neumonía adquirida en la comunidad, que más tarde se demuestra que era TB . Registros completos de todos cultivos anteriores , resultados de pruebas de susceptibilidad a fármacos y regímenes de tratamiento se deben obtener
  • 14.
  • 18.
  • 25.
    Método de lasproporciones Canetti  Proporción de bacterias "resistentes" en una población sensible, se define la resistencia como el crecimiento de al menos el 1% del inóculo bacteriano que crece en presencia de una concentración "crítica" del antimicrobiano.  Laborioso, inóculo a partir del aislamiento primario; en segundo lugar, incubar las placas el suficiente tiempo para obtener crecimiento visible.
  • 26.
    MGIT960 : Medios líquidos no radiométricos,  son los sistemas más empleados en los laboratorios clínicos aislamiento primario de las micobacterias como para la realización de antibiogramas.  Más rápidos, y en general con excelente concordancia con los métodos clásicos en medio sólido.  Tienen sin embargo como principal inconveniente que los resultados pueden alterarse si se contaminan los cultivos con micobacterias ambientales.
  • 28.
    DROGAS DE PRIMERALÍNEA Y MECANISMOS MOLECULARES DE RESISTENCIA EN M. TUBERCULOSIS
  • 29.
     La resistenciaa drogas en M. tuberculosis se debe: - Alteración secuencia de nucleótidos en genes que codifican al blanco de acción antibióticos - M. tuberculosis no se han reportado mecanismos de adquisición de genes de resistencia vía plásmidos o transposones.  Resistencia a múltiples drogas: - Acumulación de mutaciones individuales en varios genes, cada uno de los cuales es responsable de la resistencia a un antibiótico particular.
  • 30.
  • 31.
     Acción bactericidaal interferir con la biosíntesis de ácidos micólicos  Captada por el bacilo, es activada por el sistema catalasa-peroxidasa.  Ausencia de actividad catalasamutaciones en el gen katG, mecanismos de resistencia a HIN.  Mutaciones: Región codificante del gen katGcodones 300 al 507,  Más frecuentes las sustituciones de la serina 315 por treonina (S315®T) y el residuo de arginina 463 por leucina (R463®L).  Estas mutaciones explican aproximadamente el 50% de los casos
  • 32.
     La enzimaenoil ACP reductasaelongación de ácidos grasos (acido micólico), codificada por gen inhA se identificó como un blanco de acción de INH  Las mutaciones en el gen inhA inducen sobreexpresión del gen inhA y niveles elevados de la enzima enoil reductasa en cantidades que superan el poder inhibitorio de INH.  Representan 25% de los casos de resistencia a INH
  • 33.
     Gen ahpC,codificante de la enzima alquil hidroperóxido reductasa, involucrada en la respuesta a estrés oxidativo.  Asociadas a un 10 a 15% resistentes a HIN.
  • 34.
  • 35.
     Se unea la ARN polimerasa, responsable del proceso de transcripción de genes, al inhibir la expresión de genes, la rifampicina conduce apoptosis.  La resistencia a rifampicina: - mutaciones en el gen rpoBsubunidad b de la ARN polimerasa impiden  rifampicina inhiba la transcripción - Se localizan en un corto segmento de 81 pb codones 507 a 533 del gen. - Explica en un 95% a 98% resistencia
  • 36.
  • 37.
     Su mecanismode acción no ha sido bien dilucidado, aunque se ha señalado la importancia de la acción de la enzima pirazinamidasa.  Se activa en medio ácido.  La pirazinamidasa desaminan la pirazinamida ácido pirazinoico que es transportado hasta el medio extracelular por una bomba de expulsión, ahí es protonada hasta la forma de POAH, que es mas liposoluble y penetra el bacilo.
  • 38.
     Mutaciones genpncA, codificante de la enzima pirazinamidasa.  Entonces, uno de los mecanismos de resistencia a pirazinamida propuestos hasta el presente es la deficiencia en pirazinamidasa, con la subsecuente pérdida de la capacidad de activar el antibiótico
  • 39.
  • 40.
     Aminoglucósido bactericidaque actúa sobre los ribosomas inhibiendo la síntesis de proteínas.  Mutaciones en el gen rpsl que codifica la proteína ribosomal S12.  Otra mutación identificada, pero de menor frecuencia se localiza en el gen rrs que codifica el ARN ribosomal 16S en una región que interactúa con la proteína S12
  • 41.
  • 42.
     Compuesto sintéticoque actúa como bacteriostático, cuyo mecanismo de acción es inhibir la síntesis de componentes de la pared micobacteriana .  Mutaciones región designada como embCAB, que incluye genes codificantes para arabinosiltransferasas, enzimas que participan en la síntesis de componentes únicos de la pared celular de micobacterias  Se asocian a altos niveles de resistencia y se han identificado en aproximadamente el 65%
  • 43.
    Tratamiento de lospacientes con TB-MDR:
  • 44.
     Recomendación 1:Debe usarse una fluoroquinolona. [Recomendación fuerte → nivel de evidencia muy bajo].  Recomendación 2: Se deben usar las fluoroquinolas de generaciones más recientes, por sobre las de más antigua generación. [Recomendación condicional → Nivel de evidencia muy bajo].  Recomendación 3: Debe usarse la etionamida (o protionamida). [Recomendación fuerte → Nivel de evidencia muy bajo].
  • 45.
     Recomendación 4:Deben indicarse, probablemente, cuatro drogas antituberculosas de segunda línea para aumentar la eficacia de los esquemas (incluyendo un agente inyectable), así como la pirazinamida, que debería ser incluida en la fase intensiva. [Recomendación condicional → Nivel de evidencia muy baja].  Recomendación 5: El régimen de retratamiento debería incluir al menos pirazinamida, una fluoroquinolona, un agente inyectable, etionamida (o protionamida), y cicloserina o PAS (ácido para-aminosalicilico) si no se puede utilizar cicloserina. [Recomendación condicional → Nivel de evidencia muy baja].
  • 46.
  • 47.
     Recomendación 1:Duración de la fase intensiva de por lo menos 8 meses. Recomendación condicional → Nivel de evidencia muy bajo.  Recomendación 2: La duración del tratamiento total debe ser de por lo menos 20 meses, en pacientes sin tratamiento previo por TB-MDR. [Recomendación condicional → Nivel de evidencia muy bajo].
  • 48.
  • 49.
     Recomendación: Usode baciloscopia de expectoración y cultivo, en vez de baciloscopia sola para la supervisión durante el tratamiento de los pacientes con TB-MDR. [Recomendación condicional — Nivel de evidencia muy bajo
  • 50.
  • 51.
     Recomendación: Usar el modelo de manejo principalmente ambulatorio, más que los modelos principalmente basados en la hospitalización. [Recomendación condicional Nivel de evidencia muy baja].
  • 52.
    Bibliografía  Guíaspara el manejo de la tuberculosis resistente. OMS 2011JUAN CARLOS RODRÍGUEZ D. y PAULA IRAZOQUI G.  Fármacos con actividad frente a Mycobacterium tuberculosis Pere Coll Servicio de Microbiología. Hospital de la Santa Creu i Sant Pau. Departamento de Genética y Microbiología. Universidad Autónoma de Barcelona. España.  Pruebas de sensibilidad para Mycobacterium tuberculosis César Ugarte-Gil 1, Mario Ponce Alvarez1, David A. J. Moore.  Resistencia a drogas en M. Tuberculosis: Bases moleculares N Arráiz1, V Bermúdez2, B Urdaneta. 2005  Evaluación de una técnica de hibridación reversa para identificación rápida de micobacterias en Chile Evaluation of a reverse hybridization assay for the identification of Mycobacterium in Chile Tamara Leiva C. Rev Chil Enf Respir 2012; 28: 9-15  Nuevos desafíos en tuberculosis VICTORINO FARGA C. Rev Chil Enf Respir 2011; 27: 161-168  Métodos de detección rápida de M. Tuberculosis. Fernando Alcaide Universidad de Barcelona. 2011  Detección de mutaciones asociadas a cepas multidrogo resistente de Mycobacterium tuberculosis en Chile Pamela Araya, Maritza Velasco, Javier Tognarelli, Fabiola Arias,Tamara Leiva, Angélica Sccapatticio, Pablo Alviz, Jorge Fernández, Rev Med Chile 2011; 139: 467-473  Tuberculosis, Caminero, Fargas Editorial Mediterraneo 3º Edición 2011
  • 53.