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INFORME AISLAMIENTO E 
IDENTIFICACIÓN DE 
MICROORGANISMOS 
Cancela, María Belén
INTRODUCCIÓN 
Se buscó aislar coliformes, principalmente Escherichia coli, a partir de 
una muestra de agua. 
La búsqueda incluía también a otros coliformes que pudieran estar 
presentes. Este grupo contempla bacterias entéricas.
Las características generales de este grupo son: 
- Gram negativos. 
- No formadores de esporas. 
- Aerobios o anaerobios facultativos. 
- La mayoría fermentadores de lactosa con producción de 
ácido y gas.
¿Por qué se utiliza el agua como muestra? 
Las bacterias coliformes se encuentra comúnmente en el agua. La 
presencia de coliformes se debe a que el agua estuvo en contacto con 
heces. 
Se esperaba que la muestra de agua contenga baja carga microbiana y 
cierta diversidad. 
Las muestras utilizadas provienen de agua de pozo y agua de zanja.
Primer día 
Con ambas muestras de agua, se realizaron dos procesos: 
● Se filtraron 100 ml→ El filtro fue colocado en un agar 
EMB. 
● Se tomaron 100 ul → Se rastrillaron en EMB agar y 
MacConkey agar con la utilización de la espátula de 
Drigalsky.
Resultados del primer día: 
● Agar EMB con filtro (agua de pozo) 
● Agar EMB con filtro (agua de zanja) 
● Agar MacConkey + 100 ul directos de la muestra. 
(agua de pozo) 
● Agar MacConkey + 100 ul directos de la muestra. 
(agua de zanja) 
● Agar EMB + 100 ul directos de la muestra. (agua 
de pozo) 
● Agar EMB + 100 ul directos de la muestra. (agua 
de zanja) 
Sólo en este medio se 
observaron colonias 
correspondientes a 
fermentadores de lactosa.
Segundo día: 
● Se observó detenidamente la morfología que presentan las colonias 
en los medios. 
Sobre las pequeñas colonias negras correspondientes a fermentadores 
de lactosa se realizó: 
● Una serie de pruebas básicas para verificar su género y presunta 
especie bacteriana: Se efectuaron las pruebas bioquímicas de 
catalasa y oxidasa.
● Tinción de gram: reacción de Gram y morfología de las bacterias. 
● Siembra por agotamiento por estrías para obtener colonias 
aisladas y poder realizar las pruebas bioquímicas pertinentes para 
la identificación del microorganismo
Resultados del segundo día: 
-MORFOLOGÍA POR TINCIÓN DE GRAM: Se observó al microscopio obteniéndose como resultado 
colonias gram negativas (ya que se tiñeron de rosa), con una morfología presuntamente correspondiente a 
enterobacterias como se buscaba ya que eran colonias bacilos sin una agrupación específica. 
PRUEBAS BIOQUÍMICAS INICIALES: 
-CATALASA: POSITIVO 
-OXIDASA: NEGATIVO 
- No se logró obtener colonias aisladas en el agar EMB.
Tercer día: 
DESVIACIÓN DEL PROTOCOLO INICIAL
Resultados tercer día: 
PRUEBAS BIOQUÍMICAS: 
CATALASA: NEGATIVO 
OXIDASA : NEGATIVO 
Tinción de gram: Las bacterias tenían una morfología que no se correspondía con la familia que 
buscábamos, eran bacilos gram positivos agrupados en cadenas y con una posible formación de 
esporas. 
Se trabajó con la muestra del otro grupo de carne que también buscaban Coliformes y que habían 
obtenido resultados acordes a lo esperado: 
CATALASA: NEGATIVA 
OXIDASA: NEGATIVA 
Tinción de Gram: Bacterias Gram negativas, sin agrupación específica con forma de bacilos.
Cuarto día: 
Se realizaron las pruebas bioquímicas en caldo de: 
-Glucosa -Arabinosa -Maltosa 
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-Ribosa -Lactosa -Ureasa 
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Y el test multiprueba: API 20E 
Nota: las pruebas en color rojo necesitan un revelado posterior a la incubación
Resultados pruebas bioquímicas: 
Tubos: 
● Sacarosa, Glucosa, Arabinosa, Ribosa, Xilosa → Positiva (medio amarillo) 
● Lactosa → Negativa (medio rojo) 
● Maltosa → No presentó crecimiento. 
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● Citrato → Positiva (pico de flauta azul). 
● Gelatina y Ureasa → No presentó crecimiento. 
● RM → Positiva 
● VP→ Positiva 
● Nitrato → Positiva
Tubo de ensayo de 
Nitrato 
Tubo de ensayo 
de TSI
API 20 E (RESULTADOS) 
ONPG: + H2S: - GEL: + RHA: + 
ADH: - URE: - GLU: + SAC: + 
LDC: + TDA: - MAN:+ MEL: + 
ODC: + IND: - INO: + AMY: + 
CIT: + VP: + SOR: + ARA: +
Conclusión: 
● No arribamos al objetivo ya que el microorganismo 
identificado pertenece a la carne y no al agua. 
● Según los resultados obtenidos con el test multiprueba API 20 
E, se obtuvo el número 5 307 773 que corresponde a un 
microorganismo perteneciente al género Serratia.
● Dentro de dicho género contamos con dos especies posibles: 
Serratia odorifera o Serratia liquefaciens. 
● Pruebas claves para la elección de especie: 
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● Al dar negativa la prueba de indol y positiva la prueba de 
ramnosa se trata de la especie Ser. liquefaciens con un 2% 
de certeza.
Género Serratia: 
● En dicho género hay 9 especies, dentro de ellas Ser. 
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● Se encuentran en alimentos, suelos, aguas 
estancadas, en animales y en vegetales. 
● En el caso de encontrarse en animales, habitan en el 
intestino pero no producen patología. Sin embargo, 
pueden afectar a otros tejidos en los que producen 
inflamación purulenta.
MUCHAS GRACIAS 
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Cancela, María Belén 
mbcancela@unq.com.ar

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Ensayo de aislamiento de microorganismo

  • 1. INFORME AISLAMIENTO E IDENTIFICACIÓN DE MICROORGANISMOS Cancela, María Belén
  • 2. INTRODUCCIÓN Se buscó aislar coliformes, principalmente Escherichia coli, a partir de una muestra de agua. La búsqueda incluía también a otros coliformes que pudieran estar presentes. Este grupo contempla bacterias entéricas.
  • 3. Las características generales de este grupo son: - Gram negativos. - No formadores de esporas. - Aerobios o anaerobios facultativos. - La mayoría fermentadores de lactosa con producción de ácido y gas.
  • 4. ¿Por qué se utiliza el agua como muestra? Las bacterias coliformes se encuentra comúnmente en el agua. La presencia de coliformes se debe a que el agua estuvo en contacto con heces. Se esperaba que la muestra de agua contenga baja carga microbiana y cierta diversidad. Las muestras utilizadas provienen de agua de pozo y agua de zanja.
  • 5.
  • 6.
  • 7. Primer día Con ambas muestras de agua, se realizaron dos procesos: ● Se filtraron 100 ml→ El filtro fue colocado en un agar EMB. ● Se tomaron 100 ul → Se rastrillaron en EMB agar y MacConkey agar con la utilización de la espátula de Drigalsky.
  • 8. Resultados del primer día: ● Agar EMB con filtro (agua de pozo) ● Agar EMB con filtro (agua de zanja) ● Agar MacConkey + 100 ul directos de la muestra. (agua de pozo) ● Agar MacConkey + 100 ul directos de la muestra. (agua de zanja) ● Agar EMB + 100 ul directos de la muestra. (agua de pozo) ● Agar EMB + 100 ul directos de la muestra. (agua de zanja) Sólo en este medio se observaron colonias correspondientes a fermentadores de lactosa.
  • 9. Segundo día: ● Se observó detenidamente la morfología que presentan las colonias en los medios. Sobre las pequeñas colonias negras correspondientes a fermentadores de lactosa se realizó: ● Una serie de pruebas básicas para verificar su género y presunta especie bacteriana: Se efectuaron las pruebas bioquímicas de catalasa y oxidasa.
  • 10. ● Tinción de gram: reacción de Gram y morfología de las bacterias. ● Siembra por agotamiento por estrías para obtener colonias aisladas y poder realizar las pruebas bioquímicas pertinentes para la identificación del microorganismo
  • 11. Resultados del segundo día: -MORFOLOGÍA POR TINCIÓN DE GRAM: Se observó al microscopio obteniéndose como resultado colonias gram negativas (ya que se tiñeron de rosa), con una morfología presuntamente correspondiente a enterobacterias como se buscaba ya que eran colonias bacilos sin una agrupación específica. PRUEBAS BIOQUÍMICAS INICIALES: -CATALASA: POSITIVO -OXIDASA: NEGATIVO - No se logró obtener colonias aisladas en el agar EMB.
  • 12. Tercer día: DESVIACIÓN DEL PROTOCOLO INICIAL
  • 13. Resultados tercer día: PRUEBAS BIOQUÍMICAS: CATALASA: NEGATIVO OXIDASA : NEGATIVO Tinción de gram: Las bacterias tenían una morfología que no se correspondía con la familia que buscábamos, eran bacilos gram positivos agrupados en cadenas y con una posible formación de esporas. Se trabajó con la muestra del otro grupo de carne que también buscaban Coliformes y que habían obtenido resultados acordes a lo esperado: CATALASA: NEGATIVA OXIDASA: NEGATIVA Tinción de Gram: Bacterias Gram negativas, sin agrupación específica con forma de bacilos.
  • 14. Cuarto día: Se realizaron las pruebas bioquímicas en caldo de: -Glucosa -Arabinosa -Maltosa -Sacarosa -Xilosa -Gelatina -Ribosa -Lactosa -Ureasa -TSI -Citrato -Nitrato -RM/VP Y el test multiprueba: API 20E Nota: las pruebas en color rojo necesitan un revelado posterior a la incubación
  • 15. Resultados pruebas bioquímicas: Tubos: ● Sacarosa, Glucosa, Arabinosa, Ribosa, Xilosa → Positiva (medio amarillo) ● Lactosa → Negativa (medio rojo) ● Maltosa → No presentó crecimiento. ● TSI → Ácido-ácido con producción de gas (amarillo-amarillo) ● Citrato → Positiva (pico de flauta azul). ● Gelatina y Ureasa → No presentó crecimiento. ● RM → Positiva ● VP→ Positiva ● Nitrato → Positiva
  • 16. Tubo de ensayo de Nitrato Tubo de ensayo de TSI
  • 17. API 20 E (RESULTADOS) ONPG: + H2S: - GEL: + RHA: + ADH: - URE: - GLU: + SAC: + LDC: + TDA: - MAN:+ MEL: + ODC: + IND: - INO: + AMY: + CIT: + VP: + SOR: + ARA: +
  • 18.
  • 19. Conclusión: ● No arribamos al objetivo ya que el microorganismo identificado pertenece a la carne y no al agua. ● Según los resultados obtenidos con el test multiprueba API 20 E, se obtuvo el número 5 307 773 que corresponde a un microorganismo perteneciente al género Serratia.
  • 20. ● Dentro de dicho género contamos con dos especies posibles: Serratia odorifera o Serratia liquefaciens. ● Pruebas claves para la elección de especie: ■ Ser. odorifera → Indol 99% ■ Ser. liquefaciens → RHA 2% ● Al dar negativa la prueba de indol y positiva la prueba de ramnosa se trata de la especie Ser. liquefaciens con un 2% de certeza.
  • 21. Género Serratia: ● En dicho género hay 9 especies, dentro de ellas Ser. odorifera y Ser. liquefaciens. ● Son bacilos móviles gram negativos. ● Son aerobios o anaerobios facultativos.
  • 22. ● Se encuentran en alimentos, suelos, aguas estancadas, en animales y en vegetales. ● En el caso de encontrarse en animales, habitan en el intestino pero no producen patología. Sin embargo, pueden afectar a otros tejidos en los que producen inflamación purulenta.
  • 23.
  • 24. MUCHAS GRACIAS POR SU ATENCIÓN Cancela, María Belén mbcancela@unq.com.ar