2. DEFINICIÓN
CRBSI (Catheter related blood stream infection)
Cultivo positivo (hasta 48 horas tras retiro del
catéter)
Signos y síntomas sugestivos de sepsis
Descartar otras posibles fuentes de infección.
Camins B. et.al. Infection Control and Hospital Epidemiology. 2010; 31(11): 1118-1123.
3.
4. Segunda causa más común de mortalidad y
hospitalización en pacientes hemodializados.
Incremento en costos hospitalarios
Prolongación del periodo de hospitalización
GENERALIDADES
6. Hipertensión arterial sistémica
Diabetes mellitus no insulinodependiente
Cronicidad (>3 semanas)
Periodos largos de hospitalización
FACTORES DE RIESGO
Grothe C. et.al. Revista Latino-Americana de Enfermagem. 2010; 18(1): 73-80.
7. PATOGENESIS
4 rutas principales para la colonización de un catéter
venoso central (CVC)
Extraluminal Intraluminal
Infusión Hematógena
Kallen A. et.al. Clinical Infectious Diseases. 2010; 51(3): 335-341 O´Horo J. et.al. American Journal of Nephrology 2011; 34: 415-422.
13. EDUCACIÓN, ADIESTRAMIENTO Y
SELECCIÓN DEL PERSONAL
Evaluación periódica al personal
Técnica de lavado de manos
Medidas de barrera ésteril
Gorro, máscara, bata y guantes estériles
O´Grady N. et.al. Clinical Infectious Diseases 2011; 52(9): 1087-1099.
14. PREPARACIÓN CUTÁNEO
Antiséptico (alcohol al 70%, tintura de iodo o
gluconato de clorhexidina)
Permita el secado adecuado según recomendaciones
del fabricante
O´Grady N. et.al. Clinical Infectious Diseases 2011; 52(9): 1087-1099.
15.
16. RÉGIMEN DE VENDAJE
Gasa estéril o vendaje estéril, transparente para el
recubrimiento del catéter.
Evaluar vendaje por humedad, integridad y suciedad.
No usar ungüentos o cremas antimicrobianos de forma
empírica
5~7 días
17. Prevalencia de CRBSI menor en catéter heparinizados
ANTICOAGULANTE Y TROMBOLÍTICO
Jain G. et.al. Clinical Journal of the American Society of Nephrology. 2009; 4: 1787-1790.
18. 1980
Rescate del catéter, cuando el retiro esta contraindicado
Alcohol o citrato trisódico han demostrado poco éxito en reducir CRBSI, pero
tiene el beneficio en disminuir la tasa de colonización (ruta intraluminal).
Una combinación de antibióticos sistémicos y un sello antimicrobiano es
superior a solamente antibiótico sistémico.
No recomendada para infecciones por S. aureus o productores de levadura o
patógenos gram negativos resistentes.
Sello de catéter
O´Horo J. et.al. American Journal of Nephrology 2011; 34: 415-422.
Kallen A. et.al. Clinical Infectious Diseases. 2010; 51(3): 335-341
19. DIAGNÓSTICO
Base de datos = Casos en sospecha y confirmados de CRBSI
Agente causal
Antibiograma
Posible fuente
Resultados obtenidos
Ante la sospecha
Descartar otras fuentes
Historia clínica completa
Exploración física rigurosa
Pruebas de laboratorio y gabinete
Vanholder R. et.al. Nephrology Dialysis Transplantation. 2010; 3: 234-246.
20. Fiebre
Más sensible , bajo especificidad
Inflamación o secreción purulenta alrededor del sitio de
inserción
Alta especificidad, bajo sensibilidad
Mejoría de sintomatología dentro de 24 horas después de
haber retirado el catéter sugiere pero no comprueba que el
catéter sea la fuente de infección
SIGNOS Y SINTOMAS
Mermel L. et.al Clinical Infectious Diseases 2009; 49: 1-45.
21. CULTIVO DEL CATÉTER
Cuando el catéter sea retirado por sospecha de CRBSI
No rutinaria
Crecimiento >15 unidad formadora de colonia (UFC)
de un segmento de 5cm en la punta de catéter con
técnica semicuantitativo (roll-plate) = Colonización
Mermel L. et.al Clinical Infectious Diseases 2009; 49: 1-45.
22. HEMOCULTIVO
Método cuantitativo = más certero
Previo a la iniciación de la antibioticoterapia
Preparación cutánea con alcohol, clorhexidina alcohólica
(10.5%) o tintura de iodo (10%).
Diagnóstico definitivo = crecimiento del mismo organismo
en el catéter y vena periférica.
Recomendación = colonia del catéter 3x mayor que la
colonia de la vena periférica
Mermel L. et.al Clinical Infectious Diseases 2009; 49: 1-45.
23. TRATAMIENTO
En base al base de dato de infecciones
Ajustar antibiótico según microrganismo aislado
Retiro de catéter
O´Horo J. et.al. American Journal of Nephrology 2011; 34: 415-422.
Vanholder R. et.al. Nephrology Dialysis Transplantation. 2010; 3: 234-246.
24. Dosis de antibiótico en pacientes hemodializados
Dosis empírica + resultado de cultivo pendiente
Vancomicina + cobertura empírica para bacilo gram negativo basada en dato
recolectado en la unidad.
Alternativa
Vancomicina + gentamicina
(Cefazolina puede ser usado en lugar de vancomicina en unidades con baja
prevalencia de staphylococo meticilina resistente)
Vancomicina: 20 mg/kg durante la última hora de la sesión de diálisis, y
posteriormente 500mg durante los últimos 30 min de cada sesión de diálisis
subsecuente.
Gentamicina (o tobramicina): 1mg/kg, no exceder 100mg después de cada
sesión de diálisis.
Ceftazidima: 1g I.V. después de cada sesión
Cefazolina: 20mg/kg I.V. después de cada sesión
Para infección por Candida
Un equinocandina (caspofungina 70mg I.V. dosis de impregnación seguido de
50mg I.V. diario; Micafungina 100mg I.V. diario; o anidulafungina 200mg I.V.
dosis de impregnación seguido de 100mg I.V. diario); Fluconazol (200mg diario
V.O.); o anfotericina B.
25.
26.
27.
28. REFERENCIAS
1) Al-Solaiman Y. et.al. “The spectrum of infections in catheter-
dependent hemodialysis patients” Clinical Journal of the
American Society of Nephrology. 2011; 6: 2247-2252.
2) Camins B. et.al. “A crossover intervention trial evaluating
efficacy of a chlorhexidine-impregnated sponge
(BIOPATCH®) to reduce catheter related bloodstream
infections in hemodialysis patients”. Infection Control and
Hospital Epidemiology. 2010; 31(11): 1118-1123.
3) Crespo R. et.al. “Estudio retrospectivo de las
complicaciones de los catéteres temporales para la
hemodiálisis”. Revista de la Sociedad Española de
Enfermería Nefrológicas. 2011. 14(1): 43-49.
4) Grothe C. et.al. “Incidence of bloodstream infection among
patients on hemodialysis by central venous catheter”
Revista Latino-Americana de Enfermagem. 2010; 18(1): 73-
80.
5) Jain G. et.al. “Does heparin coating improve patency or
reduce infection of tunneled dialysis catheters?” Clinical
Journal of the American Society of Nephrology. 2009; 4:
1787-1790.
6) Kallen A. et.al. “Preventing Catheter-related bloodstream
infections outside the intensive care unit: expanding
prevention to new settings”. Clinical Infectious Diseases.
2010; 51(3): 335-341
7) Mermel L. et.al. “Clinical practice guidelines for the
diagnosis and management of intravascular catheter-related
infection: 2009. Update by the Infectious Diseases Society
of America. Clinical Infectious Diseases 2009; 49: 1-45.
8) O´Grady N. et.al. “Summary of Recommendations:
Guidelines for the prevention of intravascular catheter-
related infections”. Clinical Infectious Diseases 2011; 52(9):
1087-1099.
9) O´Horo J. et.al. “Anti-infective locks for treatment of central
line-associated bloodstream infection: a systematic review
and meta-analysis”. American Journal of Nephrology 2011;
34: 415-422.
10) Vanholder R. et.al. “Catheter-related blood stream
infections (CRBSI): a European view”. Nephrology Dialysis
Transplantation. 2010; 25: 1753-1756.
11) Vanholder R. et.al. “Diagnosis, prevention and treatment of
haemodialysis catheter-related bloodstream infections
(CRBSI): a position statement of European Renal Best
Practice (ERBP)”. Nephrology Dialysis Transplantation. 2010;
3: 234-246.
Una infección se sospecha en un paciente cuando presenta fiebre, rigor u otros hallazgos sugestivos de una infección localizado. Una bacteriemia relacionado al catéter se sospecha cuando un paciente desarrolle fiebre (temperatura >37.8°C) o rigor. Como también ante la presencia, aunque de forma menos común, se hace la sospecha de una infección tras una secreción purulenta en el sitio de salida del catéter, malestar general, estado mental alterado o una hipotensión inexplicable (presión sistólica <90mmHg). Si el paciente tuviese otro acceso vascular secundario (fístula o injerto), se debe de inspeccionar el sitio quirúrgico de forma intencionada para hallar eritema, calor, edema o secreciones. De igual forma, se debe de inspeccionar el abdomen cuando el paciente porta un catéter para diálisis peritoneal.
Extraluminal: Contaminación de la superficie externa del catéter, desde el momento de inserción o después de ello.
Intraluminal: contaminación del puerto, lumen del catéter o cualquier dispositivo relacionado con la terapia sustitutiva.
Vía infusión: mediante solución contaminada.
Vía hematógena: desde un sitio a distancia.
Evitar el subclavio en pacientes hemodializados y aquellos con enfermedad renal avanzado, para evitar estenosis de la vena subclavia
Cuando no se puede asegurar una técnica aséptica (colocación del catéter en el servicio de urgencias), debemos cambiar el catéter lo antes posible (<48 horas).
Prepara una superficie cutánea limpia con un antiséptico (70% alcohol, tintura de iodo, un iodoformo o gluconato de clorhexidina) antes de la inserción de catéter venoso periférico. Prepara superficie cutánea limpia con 0.5% clorhexidina más alcohol antes de la inserción (y cambio de vendaje) de CVC y arterial periférico. Si existe una contraindición para el uso de clorhexidina, tintura de iodo, un iodoforma o 70% alochol puede ser usado como alternativa. Antisépticos deben ser permitidos a secar acorde a las recomendaciones del fabricante para colocar un catéter.8
Duración usual de tratamiento en casos no complicados es de 3 semanas. Para infección del túnel sin bacteriemia o fungemia y si se ha retirado el catéter, el tratamiento basta con 7 a 10 días. Tratamiento prolongado con antibiótico (6 semanas) debe ser administrado si fungemia o bacteriemia persiste 48~72 horas después del retiro del catéter, ya que seguramente se presentó complicaciones metastásicos graves como el caso de endocarditis. Para osteomielitis, tratamiento con antibiótico debe ser prolongado a 8 semanas.7, 10, 11